Актуальность энтеробиоза и лямблиоза

Обновлено: 15.04.2024

Проанализирована клинико-эпидемиологическая ситуация по лямблиозу у детей раннего возраста. Лямблиоз регистрировался чаще у детей из организованных коллективов. Причиной заболевания служили несоблюдение правил личной гигиены, ониго- и геофагия. Клинически

The clinical and epidemiological situation of giardiasis (lambliosis) in children of early age was analyzed. Giardiasis was registered more often in children from organized groups. The cause of the disease was non-adherence to the rules of personal hygiene, ongo- and geophagy. Clinically, giardiasis (lambliosis) was manifested by abdominal pain, decreased appetite, nausea and sleep disturbances, and by reactive changes in the pancreas. A positive double laboratory study after treatment may indicate a chronic course of the disease.

В Астраханской области и ряде регионов юга России в последние годы все чаще стали отмечаться случаи различных бактериальных, вирусных и паразитарных инфекций: чумы, туляремии, лихорадок — Ку, Крым-Конго, Западного Нила, малярии, дирофиляриоза и ряда других инфекций. Некоторые из этих инфекций регистрируются и на территории Астраханской области [1–3, 5–11].

Одним из таких паразитозов, которому в последнее время уделяется пристальное внимание, является лямблиоз.

Лямблиоз (жиардиаз) — паразитарная инвазия, вызываемая одноклеточным паразитом Lamblia intestinalis, протекающая как бессимптомно в виде носительства, так и в виде манифестных форм с явлениями энтерита, холепатии и астении, часто принимающая хроническое рецидивирующее течение [14].

По данным Всемирной организации здравоохранения, лямблиозом страдают примерно 20–25% детей в мире. Лямблии занимают 3-е место по распространенности после энтеробиоза и аскаридоза. Заболеваемость лямблиозом зависит от социально-экономического уровня стран. В развитых странах она встречалась с частотой 2–7%, в развивающихся — достигает 40% [4].

Лямблиоз является серьезной проблемой современной педиатрии. Актуальность ее обусловлена как высокой распространенностью этого вида простейших, так и полиморфизмом клинических проявлений, сложностью диагностики и неоднозначными подходами к лечению [13].

Клинические проявления лямблиоза регистрируются во всем мире почти у 500 млн больных в год. Среди детей пораженность лямблиями составляет от 27–70%, причем наибольший процент приходится на детей младшего возраста [12].

Целью настоящего исследования было проанализировать клинико-эпидемиологическую ситуацию по лямблиозу у детей раннего возраста.

Материалы и методы исследования

Результаты исследования

Из всего числа обследованных детей более половины — 68,4% составляли дети из организованных коллективов (посещение детских садов или школ). Другая часть (31,6%) — дети из неорганизованных коллективов (нахождение дома с родителями или членами семьи). Возраст всех обследуемых детей колебался от 9 месяцев до 7 лет. Так, на долю детей в возрасте от 9 месяцев до 3 лет приходилось 35,1%, на долю детей в возрасте от 3 до 7 лет — 64,9%.

По половому признаку показатели практически одинаковые: 50,9% составляли мальчики и 49,1% — девочки.

Большая часть детей, обратившихся за медицинской помощью, проживали в различных районах г. Астрахани — 94,7%. В редких случаях (5,3%) — дети проживали в районах Астраханской области, в т. ч. в Камызкском, Приволжском и Красноярском районах (по 1 ребенку из каждого района).

Причины обследования на лямблиоз были разнообразные. В большинстве случаев дети обращались за медицинской помощью в связи с наличием у них разнообразных жалоб — 64,9%. В редких случаях (15,8%) — лямблиоз был выставлен на основании медицинских осмотров и только в одном случае (1,8%) диагноз был поставлен ребенку, контактному по члену семьи.

При сборе эпидемиологического анамнеза было выяснено, что большая часть детей (47,4%) не соблюдала правила личной гигиены, т. е. не моет руки перед едой и после посещения улицы. Почти половина детей указала, что дома имеются домашние животные (кошки или собаки), с которыми они постоянно имели тесный контакт, в т. ч. 26,3% — имели тесный контакт с домашними кошками, а 12,3% детей — с собаками. Другая часть детей (24,6%) имели привычку грызть ногти и сосать пальцы рук. Привычку есть землю (геофагия) отмечали 21,1% детей.

У 17,5% детей, со слов родителей, вредные привычки отсутствовали.

Клинические проявления отмечались у 87,7% детей. Так, в частности, большинство обратившихся детей предъявляли жалобы на боль в эпигастральной области — 57,9%, снижение аппетита — 38,6%, жидкий стул — 28,1%. В редких случаях у детей отмечались жалобы на плохой сон — 21,1%, тошноту и различные аллергические реакции в виде крапивницы — по 19,3%. В единичных случаях у детей отмечались жалобы на рвоту — 10,5%, незначительное повышение температуры до субфебрильных цифр — 7% и выпадение волос — 3,5%. У 12,3% детей жалобы отсутствовали.

Всем детям, обратившимся за медицинской помощью, проводилось ультразвуковое исследование органов брюшной полости. Так, в большинстве случаев у детей отмечались реактивные изменения со стороны поджелудочной железы– 56,1%. У трети больных — по 26,3% отмечались реактивные изменения со стороны печени и признаки дискинезии желчевыводящих путей. В редких случаях отмечался мезаденит — 8,8%, спленомегалия — 7% и полиаденопатия — 3,5%. У 26,3% детей данные ультразвукового исследования без патологии.

Кроме ультразвукового исследования всем детям перед началом медикаментозного лечения проводили общий анализ крови. Так, в большинстве случаев (82,5%) результаты исследования без изменений. В редких случаях отмечалась эозинофилия — 8,8%, лейкоцитоз — 5,3% и анемия — в 3,5% случаев.

В качестве медикаментозного лечения назначались противолямблиозные препараты: альбендазол и Макмирор. Так, большая часть детей — 56,1% в качестве лечения получали препарат Макмирор из расчета 15–30 мг/кг массы тела в 2–3 приема в течение 7 дней для детей старше двух лет. Другая часть детей — 43,9% получали препарат альбендазол. Препарат назначался по 12 мг/кг массы тела 1 раз в день после еды для детей старше двух лет в течение 6 суток.

После проведенного медикаментозного лечения дважды проводилось контрольное исследование биоматериала. Так, в большинстве случаев — 78,9% симптомы заболевания полностью купировались, в 15,8% — симптомы заболевания купировались частично и только в 5,3% случаев (3 ребенка) симптомы не купировались вообще.

Результаты копроовоскопического исследования после проведенного лечения: в 98,2% — результат отрицательный, в 1,8% — положительный.

Выводы

Лямблиоз регистрировался чаще у детей из организованных коллективов.
Причиной заболевания чаще всего служили несоблюдение правил личной гигиены, ониго- и геофагия.
Клинически лямблиоз проявлялся болью в животе, снижением аппетита, тошнотой и нарушением сна, а также реактивными изменениями со стороны поджелудочной железы.
Положительное двукратное лабораторное исследование после проведенного лечения может свидетельствовать о хроническом течении заболевания.

Литература

Р. С. Аракельян* , 1 , кандидат медицинских наук
Е. И. Окунская**
Н. А. Сергеева***
О. В. Коннова*, кандидат филологических наук
Х. М. Галимзянов*, доктор медицинских наук, профессор, академик РАЕН
В. С. Шишкина*
А. А. Обухова****

* ФГБОУ ВО Астраханский ГМУ МЗ РФ, Астрахань
** ГБУЗ АО ДГП № 3, Астрахань
*** ГБУЗ АО ДГП № 5, Астрахань
****ФГБОУ ВО СПбГПМУ МЗ РФ, Санкт-Петербург

Лямблиоз у детей раннего возраста Р. С. Аракельян, Е. И. Окунская, Н. А. Сергеева, О. В. Коннова, Х. М. Галимзянов, В. С. Шишкина, А. А. Обухова
Для цитирования: Лечащий врач № 6/2018; Номера страниц в выпуске: 62-63
Теги: паразитарная инвазия, боль в животе, эпидемиология, клиническая картина

Для цитирования: Захарова И.Н., Авдюхина Т.И., Дмитриева Ю.А. и др. Лямблиоз у детей. РМЖ. 2013;24:1161.

Литература
1. Baldursson S., Karanis P. Waterborne transmission of protozoan parasites: review of worldwide outbreaks - an update 2004-2010 // Water Res. 2011. Vol. 15; 45(20). P. 6603–6614.
2. Julio C., Vilares A., Oleastro M. et al. Prevalence and risk factors for Giardia duodenalis infection among children: A case study in Portugal. Parasites & Vectors, 2012. Vol. 5. P. 22.
3. Supaluk Popruk, Kanthinich Thima, Ruenruetai Udonsom et al. Does silent Giardia infection need any attention? // Open Tropic. Med. Journal. 2011. Vol. 4. P. 26–32.
4. Ioan C.C., Ursu C. Giardiasis: controversy subject and prevention requirements. Agronomy Series of Scientific Research, Lucrari Stiintifice Seria Agronomie, University of Agricultural Sciences & Veterinary Medicine of Iasi. 2012. Vol. 55 (2). P. 393–396.
5. Jerlstrom-Hultqvist J., Franzen O., Johan Ankarklev et al. Genome analysis and comparative genomics of a Giardia intestinalis assemblage E isolate // BMC Genomics. 2010. Vol. 11:543. P. 1–15.
6. Benere E., Van Assche T., Cos P., Maes L. Variation in growth and drug susceptibility among Giardia duodenalis assemblages A, B and E in axenic in vitro culture and in the gerbil model // Parasitol. 2011. Vol. 138. P. 1354–1361.
7. Ignatius R., Bosco Gahutu J., Klotz C. et al. High Prevalence of Giardia duodenalis Assemblage B: Infection and Association with Underweight in Rwandan Children, PLOS // Neglected tropical disease. 2012. Vol. 6, Issue 6. e1677.
8. Koh WH, Geurden T, Paget T. et al Giardia duodenalis assemblage-specific induction of apoptosis and tight junction disruption in human intestinal epithelial cells: effects of mixed infections. J Parasitol. 2013 Apr; 99(2): 353-358;
9. Khitam M., Myron M. Levine A Systematic Review and Meta-analysis of the association between Giardia lamblia and endemic pediatric diarrhea in developing countries. Clinical infectious disease // Global enteric multicenter study (GEMS). 2012. Vol. 55, (Suppl. 4). P. 271–276.
10. Rivero F.D. et al. Disruption of antigenic variation is crucial for effective parasite vaccine // Nature med. 2010. Vol. 16, № 5.
11. Jerlstrom-Hultqvist J., Franzen O., Johan Ankarklev et al. Genome analysis and comparative genomics of a Giardia intestinalis assemblage E isolate // BMC Genomics. 2010. Vol. 11:543. P. 1–15.
12. Roxstrom-Lindquist K. et al. Giardia immunity – an update // Trends in Parasitol. 2006. Vol. 22, № 1. Р. 26–31.
13. Hawrelak J. Giardiasis: pathophysiology and management // Alternat. Med. Review. 2003. Vol. 8, № 2. P. 129–141.
14. Berrilli F. et al. Interactions between parasites and microbial communities in the human gut // Frontiers in сellular and infection microbiology. 2012. Vol. 2, № 141. P 1–6.
15. Torres M.F., Uetanabaro A.P., Costa A.F. et al. Influence of bacteria from the duodenal microbiota of patients with symptomatic giardiasis on the pathogenicity of Giardia duodenalis in gnotoxenic mice // J. Med. Microbiol. 2000. Vol. 49(3). P. 209–215.
16. Singer S.M., Nash T.E. The Role of Normal Flora in Giardia lamblia Infections in Mice // J. Infectious Diseases. 2000. Vol.181. P.1510–1512.
17. Nisha Goyal, Ram Prakash Tiwari and Geeta Shukla. Lactobacillus rhamnosus GG as an Effective Probiotic for Murine Giardiasis Interdisciplinary Perspectives on Infectious Diseases. Vol. 2011, ID 795219. P 1–4.
18. Perez P. et al. Inhibition of giardia intestinalis by extracellular factors from lactobacilli: an in vitro study // Applied and environmental microbiology. 2001. P. 5037–5042.
19. Humen M.A. et al. Lactobacillus johnsoni i La1 antagonizes giardia intestinalis in vivo // Infection and immunity. 2005. Vol. 73, № 2. P. 1265–1269.
20. Dutta A.K., Phadke M.A., Bagade A.C. et al. A randomised multicentre study to compare the safety and efficacy of albendazole and metronidazole in the treatment of giardiasis in children // Ind. J. Pediatr. 1994. Vol. 61(6). P. 689–693.
21. Hall A., Nahar Q.Trans R Albendazole as a treatment for infections with Giardia duodenalis in children in Bangladesh // Soc. Trop. Med. Hyg. 1993. Vol. 87(1). P. 84–86.
22. Lemee V., Zaharia I. et al. // J. Antimicrob. Chemother. 2000. Vol. 46. P. 819–821.
23. Shahram Solaymani-Mohammadi, Jeanine M. Genkinger, Christopher A. Loffredo et al. A Meta-analysis of the Effectiveness of Albendazole Compared with Metronidazole as Treatments for Infections with Giardia duodenalis. PLOS // Neglected tropical disease. 2010. Vol . 4 , Issue 5. e 562.

Для цитирования: Агафонова Е.В., Тюрин Ю.А., Долбин Д.А., Куликов С.Н. Современные аспекты диагностики лямблиоза у человека. РМЖ. 2008;17:1120.

Актуальность проблемы Лямблиоз – достаточно распространенное заболевание в мире [1], в Российской Федерации регистрируется более 130 тысяч случаев лямблиоза в год. Из них 70% составляют дети в возрасте до 14 лет [2]. Эта цифра может колебаться в большую или меньшую сторону в зависимости от санитарно–бытовых условий, возможностей диагностики и настороженности врачей по поводу данной паразитарной инвазии [3]. Актуальность лямблиоза определяется также и тем, что его клинические проявления часто маскируются различными вариантами гастроэнтерологической патологии, синдромами избыточного роста кишечной флоры, мальабсорбции, поливитаминной недостаточности, а также развитием аллергических заболеваний – рецидивирующей крапивницей, атопическим дерматитом, гастроинтестинальной формой пищевой аллергии, которые без адекватной противолямблиозной терапии приобретают рецидивирующее течение [3,4]. Данное заболевание может отягощать сопутствующие заболевания желудочно–кишечного тракта, приводя к развитию синдрома мальабсорбции и длительной диареи [1,5]. Наиболее подвержены заболеванию дети. В России у детей в возрасте до 2 лет в организованных коллективах пораженность лямблиозом составляет 34,5%, а в 3–4 года – до 70%, в среднем у детей младшего возраста в организованных коллективах лямблиоз выявляют в 9,3% случаев и в 0,9% – у воспитываемых в домашних условиях [6]. Наиболее эндемичным регионом по лямблиозу в мире является Экваториальная Африка [7]. В этих регионах у детей инфицированность лямблиями впервые регистрируется после 3–4 месяцев по появлению в крови специфических IgМ–антител, а в возрасте 8 месяцев примерно у 80% детей выявляются диагностические титры специфических противолямблиозных IgM–антител [8]. Передача инфекции чаще реализуется водным путем, реже – через продукты питания. Диагностика лямблиоза является трудной задачей: у некоторых больных с длительнотекущим лямблиозом антитела в сыворотке крови могут отсутствовать, что свидетельствует о неэффективности механизмов гуморальной защиты [9]. Антитела часто отсутствуют у страдающих лямблиозом детей с лимфатическим типом конституции; распространение практики постановки диагноза лямблиоза без проведения копрологического исследования нельзя считать оправданным.

Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания и гельминтозы. Экспертная оценка ВОЗ свидетельствует, что более 4,5 млрд человек в мире поражено возбудителями этой группы болезней [1]. Из них 2 млрд человек инфицированы Ascaris lumbricoides [2]. Ежегодно в мире аскаридозом заражаются около 650 млн человек, энтеробиозом — 460 млн [3]. По оценкам специалистов, ежегодно число заболевающих паразитарными болезнями в России превышает 20 млн человек и имеет тенденцию к увеличению [4]. По мнению ряда авторов, в последнее время под воздействием различных факторов происходит изменение картины паразитарных заболеваний, проявляющееся в неспецифичности проявлений глистно-протозойных инвазий у детей [5], в бессимптомном течении паразитарных заболеваний [6, 7, 8], в формировании у паразитов клеточных структур, способных изменять иммунный ответ хозяина на присутствие в организме паразита [9, 10, 11]. Особенностью большинства паразитарных болезней является хроническое течение, не сопровождающееся развитием острых симптомов.

Из числа протозойных инвазий наиболее массовой является лямблиоз. До сих пор проблемой является разработка эффективных лечебных мероприятий в отношении хронически рецидивирующего лямблиоза у детей. Устойчивость к противопаразитарным препаратам может быть обусловлена антигенными различиями видов лямблий с разной восприимчивостью к разным противопаразитарным препаратам [12, 13]. Наиболее массовыми гельминтозами в России являются нематодозы, возбудителями которых служат круглые гельминты: острицы, аскариды и др. [14]. Одной из актуальных задач в борьбе с паразитарными инвазиями на сегодняшний день является разработка эффективных, безопасных, недорогих методов лечения гельминтно-протозойной инвазии у детей. Лечение паразитарных инвазий эффективно при проведении комплексного подхода под контролем исследования кала, т. к. целью лечения является эрадикация паразита из кишечника [15, 16, 17]. Однако применение медикаментов широкого спектра действия не обеспечивает полного излечения при однократном курсе терапии и у ряда больных вызывает побочные эффекты аллергического, диспепсического и неврологического характера.

Учитывая сложности в диагностике паразитарных инвазий у детей, актуальной является проблема поиска новых, чувствительных, экономически эффективных и доступных методов диагностики. Полимеразная цепная реакция [ПЦР] [18, 19] нашла широкую область применения в паразитологии, ДНК-технологии имеют большое значение во многих областях паразитологии включая идентификацию и систематизацию паразитов, анализ генетической структуры, генной организации, изучение лекарственной устойчивости [20, 21, 22]). Метод ПЦР позволяет прямо обнаружить инфекционный агент или генетическую мутацию в любой биологической среде организма (слюна, мокрота, кровь, моча, кал).

Современные взгляды зарубежных и отечественных ученых на взаимоотношения паразит–хозяин с позиции колебательных и волновых процессов, присущих всем живым организмам, позволили разработать новый подход к диагностике различных заболеваний, в том числе и паразитарных. Одним из таких методов является вегетативный резонансный тест (ВРТ), позволяющий определить наличие паразитов в организме человека на разных стадиях развития: яйца, личинки, взрослых особей. Маркерами для диагностики являются резонансные электромагнитные частоты, характеризующие индивидуальный спектр электромагнитного излучения паразитов [23, 24]. Метод является гигиеническим, неинвазивным, безболезненным, что особенно важно для детей. ВРТ официально разрешен и рекомендован к медицинскому применению Министерством здравоохранения Российской Федерации (Методические рекомендации № 98/232, 99/96, 2000/74) [25].

Цель нашего исследования — совершенствование диагностики и лечения паразитозов у детей на современном этапе.

Материалы и методы исследования

В основу работы положены результаты обследования 540 детей в возрасте от 2 месяцев до 17 лет с различными гастродуоденальными заболеваниями: хроническим гастродуоденитом (53,5%), функциональным расстройством желудка (8,2%), дискинезиями желчевыводящих путей (30%). Среди сопутствующих заболеваний были диагностированы: аномалии желчного пузыря (4,8%), аллергические заболевания (10%), последствия перинатальной патологии ЦНС (7,7%), хронический иерсиниоз (1,8%), заболевания ЛОР-органов (1,8%).

Для постановки диагноза использовался тщательный сбор анамнеза, анализ жалоб, объективный осмотр, проведение необходимых лабораторных и инструментальных исследований (копроовоскопический метод диагностики, исследование кала с консервантом Барроуза, ПЦР-диагностика кала, вегетативно-резонансное тестирование).

Результаты исследования и их обсуждение

По возрасту дети были распределены на четыре группы: группа I — дети от 2 месяцев до 3 лет, группа II — от 3 до 7 лет, группа III — от 7 до 12 лет, группа IV — от 12 до 17 лет. Кроме того, в зависимости от наличия или отсутствия подтвержденной гельминтно-протозойной инвазии каждая группа была разделена на две подгруппы: А — без паразитарной инвазии, В — с подтвержденной паразитарной инвазией.

Среди обследованных детей преобладали жалобы на отрыжку, тошноту, рвоту, снижение аппетита, боли в животе в околопупочной области, неустойчивый стул (табл. 1).

Обследованные дети с подтвержденной паразитарной инвазией имели три вида моноинвазий (лямблиоз, аскаридоз, энтеробиоз) и четыре вида сочетанной глистно-протозойной инвазии (лямблиоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз, аскаридоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз). Характеристика жалоб и объективного осмотра детей в зависимости от вида паразитарной инвазии представлена в табл. 3. Как видно из таблицы, лишь головная боль и болезненность в околопупочной области при объективном осмотре достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами инвазий. Кроме того, нарушение сна достоверно (р < 0,05) чаще отмечалось у детей с моноинвазией аскаридами, а боли в околопупочной области достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами глистно-протозойной инвазии. Различия между группами паразитарных инвазий в преобладании тех или иных диспептических жалоб не достигали уровня значимости.

В нашем исследовании мы изучали диагностическую значимость различных методов диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей.

При диагностике лямблиоза при копроовоскопии 540 мазков цисты лямблий были обнаружены менее чем в 1% случаев. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей. Методом ПЦР кала лямблии были обнаружены у 28,83% обследованных детей. Методом ВРТ обследованы 136 детей, лямблии обнаружены у 31,62% детей (рис. 1).

Наиболее ценным диагностическим методом при исследовании на лямблиоз оказался метод исследования кала с консервантом Барроуза, данный метод был принят нами в качестве стандарта. Диагностические характеристики других методов диагностики определяли относительно стандарта с помощью четырехпольной таблицы. Для оценки эффективности диагностических тестов рассчитывали следующие показатели: чувствительность (Se), специфичность (Sp), точность (test eff.), прогностическая ценность отрицательного результата теста (–PV), прогностическая ценность положительного результата теста (+PV).

Как известно, от значений чувствительности и специфичности зависит прогностическая ценность (посттестовая вероятность) положительного и отрицательного результатов теста. Чем чувствительнее тест, тем выше прогностическая ценность его отрицательного результата (т. е. возрастает уверенность врача в том, что отрицательные результаты теста отвергают наличие заболевания). Чем специфичнее тест, тем выше прогностическая ценность его положительного результата (то есть врач может с большей уверенностью считать, что положительные результаты теста подтверждают предполагаемый диагноз).

Как видно из табл. 3, методы ПЦР и ВРТ обладают хорошими диагностическими показателями и высокими показателями точности теста (для ПЦР — 82,42%, для ВРТ — 69,92%). Копроскопический метод диагностики характеризовался чрезвычайно низкими диагностическими показателями (все показатели менее 1%), что ставит под сомнение целесообразность его использования для диагностики лямблиоза у детей.

При диагностике аскаридоза мы исследовали кал на яйца глист микроскопическим методом у 540 детей, аскариды обнаружены в 2,04% исследований. Методом ПЦР кала обследовано 434 ребенка, аскариды обнаружены у 1,15% детей, а методом ВРТ обследовано 135 детей, аскариды обнаружены у 7,14% детей (рис. 2).

В качестве стандарта в диагностике аскаридоза в нашем исследовании использовали ПЦР-диагностику кала.

Как известно, не существует абсолютно чувствительных и абсолютно специфичных тестов. Стопроцентные показатели получены, вероятно, из-за того, что в исследовании принимало участие относительно небольшое количество инфицированных аскаридами пациентов (табл. 4). Вероятно, с этим связаны и низкие показатели прогностической ценности положительного результата теста (12,5%). Тем не менее, полученные нами данные позволяют сделать вывод о высокой информативности ВРТ-диагностики аскаридоза у детей (чувствительность теста — 100%, специфичность — 93,96%). При оценке диагностических показателей копроскопического метода диагностики все показатели оказались менее 1%, что не позволяет рекомендовать копроскопический метод для диагностики аскаридоза у детей.

При диагностике энтеробиоза проводились однократные соскобы у 540 детей, острицы диагностированы у 0,2% детей. При исследовании кала на яйца глист у всех обследованных детей, острицы были обнаружены также у 0,2% детей. При проведении ПЦР-диагностики кала у 434 пациентов, острицы обнаружены у 9,68% детей, при вегетативно-резонансном тестировании (обследовано 135 детей) — у 12,59% (рис. 3).

В нашем исследовании стандартом в диагностике энтеробиоза являлась ПЦР-диагностика кала.

Как видно из табл. 5, копроскопический метод диагностики энтеробиоза и однократные соскобы на энтеробиоз не имеют диагностической значимости в диагностике энтеробиоза у детей. Вместе с тем метод ВРТ обладает высокой специфичностью (93,2%) и точностью теста (88,88%) в диагностике энтеробиоза.

При лечении лямблиоза процент успешной эрадикации паразита при использовании метронидазола (20 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) составил 58%, макмирора (15 мг/кг/сут в 2 приема 10 дней) — 53%, албендазола (200 мг/сут в 2 приема 7 дней) — 50%, фуразолидона (10 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) — 20%.

При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей были назначены биорезонансные препараты (Танаксол с Пара-уолнат-плас или инверсионный нозод лямблий — предварительно протестированные гомеопатические препараты) с положительным эффектом. Эрадикация простейших при использовании Танаксола с Пара-уолнат-плас оказалась успешной в 47,5% случаев. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза инверсионным нозодом лямблий эффективность терапии была еще выше и составила 71,95% (различия между эффективностью данных методов лечения были достоверными (p < 0,01%)).

При лечении аскаридоза — у 4 детей применялся Вермокс (мебендазол) (для детей от 2 до 10 лет 0,05 г/сут в 3 приема, детям старше 10 лет — 0,1 г в сутки в 3 приема во время еды. Курс лечения 3 дня), у 1 ребенка — Пирантел (12,5 мг/кг однократно), при лечении энтеробиоза 22 ребенка получали Вермокс, 20 детей — Пирантел. Данные препараты оказались эффективными у всех детей с нематодозами. Пациенты с сочетанной паразитарной инвазией получали терапию препаратом Немозол (альбендазол) в случае сочетанной гельминтно-протозойной инвазии (лямблиоз/аскаридоз, лямблиоз/энтеробиоз) в дозе 15 мг/кг/сут в 1 прием 10 дней; при сочетанной инвазии аскаридоз/энтеробиоз Немозол назначался в дозе 400 мг внутрь однократно.

Выводы

Для детей с паразитарной инвазией наиболее характерными клиническими проявлениями являются жалобы на тошноту и боли в околопупочной области. Головная боль и болезненность в околопупочной области достоверно более характерны для детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз. Нарушение сна достоверно чаще отмечается у детей с моноинвазией аскаридозом, а боли в околопупочной области — у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз.

Число эозинофилов в периферической крови у обследованных детей во всех возрастных группах было в пределах нормы и существенно не отличалось у детей с подтвержденной гельминтно-протозойной инвазией и у детей без паразитарной инвазии.

Метод копроовоскопии без использования консерванта для диагностики лямблиоза малоинформативен, что не позволяет использовать его в широкой практике. Наиболее информативными в диагностике лямблиоза оказались метод исследования кала с консервантом Барроуза и метод ВРТ. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей, методом ВРТ лямблии обнаружены у 31,62% детей.

ВРТ является неинвазивным, высокоинформативным, удобным и недорогим методом диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей. В диагностике энтеробиоза и аскаридоза метод ВРТ имел высокую диагностическую значимость наряду с методом ПЦР.

Стандартное медикаментозное лечение лямблиоза было эффективным лишь у 20–58% детей. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей максимальной эффективностью обладал инверсионный нозод лямблий (71,95%).

Литература

Savioli L., Gabrielli A. F., Ramsan M. et al. Soil-transmitted helminths and haemoglobin status among Afghan children in World Food Programme assisted schools // J. Helminthol. 2005. Vol. 79 (4). P. 381–384.

Chan M. S. The global burden of intestinal nematode infections — fifty years on // Parasitol. Today 1997. Vol. 13 (11). P. 438–443.

Онищенко Г. Г. О мерах по усилению профилактики паразитарных болезней в России // Медицинская паразитология. 2003. № 3. С. 3–7.

Озерецовская Н. Н., Зальнова Н. С., Тумольская Н. И. Клиника и лечение гельминтозов. М.: Медицина.1985. 183 с.

Horowicz M., Korman S., Shapiro M. et al. Asymptomatic Giardiasis in children // Pediatr. Inf. Dis. 1989. Vol. 87. P. 733–779.

Morrow A. L., Reves R. R., West M. S. et al. Protection against infection with Giardia lamblia by breast-feeding in a cohort of Mexican infants // J. Pediatr. 1992. Vol. 121. P. 363–370.

Pickering L. K., Engelkirk P. G. Giardia lamblia // Pediatr. Clin. Nort. Am. 1988. Vol. 35. P. 565–577.

Kulakova L., Singer S. M., Conrad J., Nach T. E. Epigenetic mechanisms are involved in the control of Giardia lamblia antigenic variation // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 61 (6). 1533–1542.

Nash T. E. Antigenic variation in Giardia lamblia and the host’s immune response // Philos. Trans. R. Soc. London Ser. B. 1997. Vol. 352. P. 1369–1375.

Sun C. H., McCaffery J. M., Reiner D. S., Gillin F. D. Mining the Giardia lamblia genome for new cyst wall proteins // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278 (24). P. 21701–21708.

Carnaby S., Ketelaris P. H., Neem A., Farthing M. J. G. Genotypic heterogeneity within Giardia lamblia isolates demonstrated by M13 DNA fingerprinting // Infect. Immun. 1994. Vol. 62. P. 1875–1880.

Majewska A. C., Kasprzak W., De Jonckheere J. F., Kaczmarek E. Heterogeneity in the sensitivity of stocks and clones of Giardia to metronidazole and ornidazole // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1991. Vol. 85. P. 67–69.

Тимченко В. Н., Леванович В. В., Абдукаева Н. С., Васильев В. В., Михайлов И. Б. Паразитарные инвазии в практике детского врача. СПб. ЭЛБИ 2005. С. 60–68.

Озерецовская Н. Н. Современные проблемы терапии гельминтозов // Мед. паразитология. 1975. 33. С. 271–276.

Lohiya G. S., Tan-Figueroa L. et al. Epidemiology and control of enterobiasis in a developmental center // West. J. Med. 2000. Vol. 172 (5). P. 305–308.

Saiki R. K., Scharf S., Faloona F., Mullis K. B. et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia // Science. 1985. Vol. 230 (4732). P. 1350–1354.

Mullis K., Faloona F., Scharf S. et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction // Cold. Spring. Harb. Symp. Quant. Biol. 1986. Vol. 51. P. 263–273.

Zhu X., Chilton N. B., Jacobs D. E. et al. Characterisation of Ascaris from human and pig hosts by nuclear ribosomal DNA sequences // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (3). P. 469–478.

Gasser R. B., Rossi L., Zhu X. Identification of Nematodirus species (Nematoda: Molineidae) from wild ruminants in Italy using ribosomal DNA markers // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (11). P. 1809–1817.

Zhang L., Gasser R. B., Zhu X., McManus D. P. Screening for different genotypes of Echinococcus granulosus within China and Argentina by single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1999. Vol. 93 (3). P. 329–334.

Электропунктурный вегетативный резонансный тест. Под ред. А. М. Василенко, Ю. В. Готовскиго, Е. Е. Мейзерова, Н. А. Королевой, В. С. Каторгина. Метод. реком. № 99/96. М.: МЗ РФ, ИПЦ ТМГФ, 2000. 27 с.

В. А. Александрова, доктор медицинских наук, профессор
В. Е. Одинцева

СПб МАПО, Санкт-Петербург

Читайте также: