Алгоритм забора крови при брюшном тифе

Обновлено: 18.04.2024

Технологический протокол по регламенту забора проб капиллярной крови в клинико-диагностических лабораториях подготовлены для унификации работы лаборантов в целях обеспечения инфекционной безопасности медицинских технологий, как для пациента, так и для персонала.

Подлежат ежегодному пересмотру.

Рецензенты: д.м.н., проф. Е.В.Лишов, к.м.н. Л.С. Глазовская

Раздел 1. Требования, предъявляемые к размещению кабинета для забора проб капиллярной крови в клинико-диагностической лаборатории
Раздел 2. Защитная одежда
Раздел 3. Подготовка кабинета к работе
Раздел 4. Обработка рук
Раздел 5. Подготовка рабочего места
Раздел 6. Технология забора капиллярной крови
Раздел 7. Технология забора капиллярной крови с помощью одноразовых стерильных пробирок на примере систем MiniCollect® или Microvette®
Раздел 8. Требования к организации забора крови в отделениях стационара
Раздел 9. Требования к обработке и стерилизации лабораторного инструментария, посуды, мягкого материала
Раздел 10. Уборка кабинета в конце рабочего дня
Раздел 11. Генеральная уборка по типу заключительной дезинфекции
Раздел 12. Защита персонала от инфицирования
Нормативные документы:

Требования,
предъявляемые к размещению кабинета для забора проб капиллярной крови в клинико-диагностической лаборатории

Расположение кабинета для забора проб капиллярной крови в лаборатории должно обеспечивать поточность поступающего на исследование материала и условий для выполнения правил санитарно-противоэпидемического режима.

Стены кабинета должны быть облицованы плиткой до потолка или покрыты влагостойкой краской. Потолок должен быть также покрыт влагостойкой краской. Допускается применение подвесных потолков при условии, что будут использованы конструкции и материалы, обеспечивающие герметичность, гладкость поверхности и возможность проведения их влажной очистки и дезинфекции.

Для покрытия полов должны быть использованы влагонепроницаемые материалы (линолеум, плитка и др. материалы). При использовании линолеумных покрытий края линолеума у стен должны быть плотно закреплены между стеной и полом, подведены под плинтуса. Швы примыкающих друг к другу листов линолеума должны быть тщательно пропаяны.

Кабинет для забора капиллярной крови должен быть оборудован:

секционной мойкой с подводкой горячей и холодной воды;

краном с локтевым или кистевым управлением;

дозаторами (локтевыми) с жидким (антисептическим) мылом и раствором антисептика;

устройством для салфеток;

емкостями для утилизации отходов в соответствии с требования биологической безопасности;

приточно-вытяжной вентиляцией с механическим побуждением и естественной вентиляцией через форточки, фрамуги и т.д., оборудованными системой фиксации;

системой кондиционирования воздуха.

Поверхности отопительных приборов должны иметь гладкую поверхность, устойчивую к ежедневному воздействию моющих и дезинфицирующих растворов, допускающую легкую очистку, исключающую адсорбирование пыли и скопление микроорганизмов. Отопительные приборы следует размещать у наружных стен под окнами, без ограждений.

Помещение кабинета должно иметь естественное, общее и локальное искусственное освещение. Искусственное освещение может осуществляться как люминесцентными, так и лампами накаливания. Светильники общего освещения кабинета должны быть со сплошными (закрытыми) рассеивателями. Рабочее место должно иметь дополнительное искусственное освещение.

Кабинет должен иметь:

стол с выдвижным ящиком для дезинфицирующих средств.

Мебель должна иметь влагостойкие поверхности, подлежащие дезинфекции.

В асептической зоне располагают медицинский шкаф со стерильными материалами, химическими препаратами. Стерильные материалы в упаковке должны храниться на отдельной полке. Укладки со стерильным материалом и подготовленные для стерилизации укладки хранят в разных отделениях шкафа.

В рабочей зоне выполняются все манипуляции пациенту и заполняется медицинская документация. В этой зоне располагаются рабочий и манипуляционный столы. На манипуляционном столе размещаются штативы с пробирками для крови. Все медицинские документы располагаются на рабочем столе.

Раздел 2.
Защитная одежда

* Хлопчатобумажная сорочка или костюм: рубашка и брюки;

* шапочка или косынка;

* обувь, подлежащая мытью и дезинфекции;

Порядок снятия перчаток.

* сделать отворот на левой перчатке пальцами правой руки, касаясь только наружной стороны;

* снять перчатку с левой руки, выворачивая ее на изнанку и держа за отворот. Держите ее в правой руке;

* взять правую перчатку левой рукой за отворот с внутренней стороны;

* снять перчатку с правой руки, выворачивая ее на изнанку: левая перчатка оказалась внутри правой;

* поместить перчатки в дезинфицирующий раствор (раствор для обеззараживания по режиму вирусных гепатитов);

Порядок снятия халата.

* снять халат вначале с одной руки, касаясь только нижней части рукавов4

* снять халат со второй руки, прикасаясь к нему изнутри и выворачивая его наизнанку;

* смена халата производится ежедневно или чаще, если это необходимо.

Порядок снятия маски.

* снять маску, прикасаясь только к завязкам;

* поместить маску в емкость с крышкой для последующей дезинфекции кипячением;

* маску меняют каждые 4 часа.

Защитные очки и лицевую маску тщательно моют теплой водой с мылом в конце рабочего дня и протирают насухо стерильной салфеткой. Хранят в шкафу на полке вместе с аптечкой первой помощи.

Раздел 3.
Подготовка кабинета к работе

* антисептиков и жидкого мыла для рук в дозаторах;

* бумажных салфеток для рук;

* необходимого количества упаковок стерильных, одноразовых скарификаторов, шариков, капилляров, предметных часовых стекол или одноразовых пробирок;

* комплектности аптечки для аварийных ситуаций;

* пробирок, капилляров, предметных стекол, штативов для подготовки проб крови для исследования;

пополнить все недостающее;

взять большую марлевую салфетку;

протереть рабочие горизонтальные поверхности;

если кабинет оборудован бактерицидным облучателем рециркуляционного типа – включить облучатель.

Раздел 4.
Обработка рук

* Снять кольца, перстни и другие украшения, так как они затрудняют эффективное удаление микроорганизмов; открыть кран;

* с помощью дозатора налить в ладонь жидкое мыло;

* под умеренной струей комфортно теплой воды энергично намылить руки жидким мылом из разового дозатора;

* тереть ладонью о ладонь;

* тереть правой ладонью по тыльной стороне левой руки;

* тереть левой ладонью по тыльной стороне правой руки;

* сложив ладони, тереть внутренние поверхности пальцев движениями вверх и вниз;

* тереть тыльной стороной пальцев по ладони другой руки;

* тереть пальцы круговыми движениями;

* поочередно круговыми движениями тереть ладони сжатыми пальцами;

Каждое движение следует повторять 5 раз!

* высушить руки двумя бумажными салфетками;

* закрыть кран локтем или запястьем

Внимание!

Запрещается закрывать кран руками!

Раздел 5.
Подготовка рабочего места

Вымыть руки (раздел 4);

Раздел 6.
Технология забора капиллярной крови

Подготовить на манипуляционном столе набор для забора крови из пальца, проверив целостность упаковок и дату стерилизации: индивидуальное стерильное предметное часовое стекло или пробирку одноразового использования, чистое предметное стекло для приготовления мазка крови, грушу, перчатки.

на рабочем столе оформить сопроводительные документы;

помочь пациенту найти удобное положение;

разъяснить пациенту суть предстоящей процедуры, создавая атмосферу доверия, предоставляя возможность задать вопросы;

вымыть руки (раздел 4);

обработать руки спиртовым антисептиком;

надеть чистые перчатки;

обработать подушечку пальца стерильным ватным шариком, смоченным спиртовым антисептиком;

вскрыть одноразовый скарификатор и сделать прокол на подушечке безымянного пальца. Укол лучше производить
сбоку, где более густая капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в
зависимости от толщины кожи;

произвести забор крови из пальца с использованием стерильных капилляров или одноразовых пробирок;

Внимание! Кровь забирается только самотеком!

Кровь из ранки должна вытекать
свободно, т.к. при сильном надавливании на палец возможно примешивание тканевой жидкости, что приводит к искажению результата.

закрыть место прокола стерильным ватным шариком, смоченным спиртовым антисептиком и отпустить пациента;

произвести необходимые манипуляции по подготовке крови для клинического исследования;

Внимание! Груша используется только для подготовки пробы крови к клинико-диагностическому исследованию!

провести обработку рабочей поверхности манипуляционного стола с использованием дезинфицирующего препарата в концентрации, предусмотренной для инактивации вирусов гемоконтактных гепатитов;

Внимание! Перчатки используются однократно!

Внимание! Перед забором крови следующему пациенту мытьё рук водопроводной водой с мылом не обязательно!

Обязательна обработка рук спиртовым антисептиком перед надеванием перчаток!

Раздел 7.
Технология забора капиллярной крови с помощью одноразовых стерильных пробирок на примере систем MiniCollect® или Microvette®

Системы состоят из двух основных компонентов:

пробирки объемом от 0,25мл до 1,0 мл с герметичной клапанной крышкой. В зависимости от назначения пробирка содержит реагент в необходимом количестве;

капилляры из пластика с различными наполнителями или универсальная воронка из полипропилена.

Процедура взятия капиллярной крови:

обработать руки спиртовым антисептиком;

надеть чистые перчатки;

вставить в крышку пробирки воронку или капилляр;

обработать подушечку пальца стерильным ватным шариком, смоченным спиртовым антисептиком;

собрать кровь в пробирку воронкой или через капилляр под действием капиллярного эффекта;

Взятие крови

Внимание! Крышку с пробирки не снимать!

пробирку аккуратно перевернуть вокруг своей оси для лучшего смешивания с реагентом;

поместить пробирку с кровью в штатив;

Раздел 8.
Требования к организации забора крови в отделениях стационара

Для забора крови в отделении лаборант должен подготовить контейнер для транспортирования, в котором выделяются 3 отделения – чистое, рабочее и грязное:

в чистом отделении размещается необходимое количество стерильных укладок с ватными шариками, капиллярами, предметными часовыми стеклами или одноразовыми пробирками, чистыми перчатками.

в рабочем отделении располагают чистые предметные стекла; груши; штативы с пробирками для определения СОЭ, содержания гемоглобина; мазки крови и т.д.

Забор крови в отделении должно проводиться на специально отведенном манипуляционном столе. Поверхность манипуляционного стола должна иметь влагостойкое покрытие. Около рабочего места лаборанта должна размещаться раковина для мытья рук с локтевым или кистевым управлением.

Технология забора капиллярной крови проводится в соответствии с разделом 6.

При заборе капиллярной крови у постели больного рабочее место лаборанта должно быть оснащено передвижным манипуляционным столом:

на верхней полке передвижного манипуляционного стола разместить необходимое количество стерильных укладок с капиллярами, микропипетками, ватными шариками, стерильными предметными часовыми стеклами или одноразовыми пробирками, емкость с антисептиком, чистые перчатки и груши, одноразовые влагонепроницаемые салфетки;

Технология забора капиллярной крови проводится в соответствии с разделом 6.

Рука больного перед процедурой укладывается на влагонепроницаемую одноразовую салфетку.

Раздел 9.
Требования к обработке и стерилизации лабораторного инструментария, посуды, мягкого материала

Лабораторные инструменты, капилляры, скарификаторы, предметные стекла, меланжеры, счетные камеры, резиновые груши, баллоны, лабораторная посуда и др. после каждого исследования должны подвергаться дезинфекции в соответствии с режимом для инактивации вирусов гемоконтактных гепатитов дезинфицирующими средствами, разрешенными в установленном порядке в Российской Федерации;

Емкости с растворами дезинфицирующих, моющих и стерилизующих средств должны быть снабжены крышками, иметь четкие надписи с указанием средства, его концентрации, назначения, даты приготовления.

Одноразовый лабораторный инструментарий после использования подвергается дезинфекции с последующей утилизацией в установленном порядке. Повторное использование одноразовых изделий категорически запрещено;

Контроль качества предстерилизационной очистки проводится ежедневно лаборантом. Старший лаборант клинико-диагностической лаборатории проводит самоконтроль 1 раз в неделю с записью результатов в журнале согласно установленной формы. Для контроля качества предстерилизационной очистки используются азопирамовая (на скрытую кровь) и фенолфталеиновая (на наличие остатков моющего средства) пробы.

После дезинфекции и предстерилизационной очистки предметные часовые стекла, капилляры:

упаковываются по 1 шт. в крепированную бумагу или по 5 шт. в пластиковые (полиамидные) или бумажные пакеты для воздушных стерилизаторов;

наклеиваются индикаторные полоски;

упаковки стерилизуются в воздушных стерилизаторах при 180 0 С 60 минут или при 160 0 С 150 минут.

Приготовленные ватные шарики нужных размеров:

упаковываются в необходимом количестве в упаковочные пакеты или бязь;

приготовленные пакеты упаковываются в упаковочную бумагу;

наклеиваются или вкладываются индикаторные полоски;

пакеты стерилизуются в паровых стерилизаторах при 132 0 С 20 минут.

Бактериологический контроль качества стерилизации мягкого материала и предметных часовых стекол проводится не реже 1 раза в месяц.

Раздел 10.
Уборка кабинета в конце рабочего дня

взять большую салфетку;

применению формой дезинфектанта;

протереть рабочие горизонтальные поверхности

вылить использованный дезинфицирующий раствор;

утилизировать дезинфицированные скарификаторы по принятой в учреждении схеме;

в ведро для мытья полов набрать воды, добавить небольшое количество моющего средства;

прополоскать и отжать ветошь, вылить раствор в канализацию;

убрать ведро и ветошь в помещение, предназначенное для ее хранения;

снять халат и сбросить его в корзину с грязным бельем;

включить бактерицидный облучатель (время экспозиции зависит от типа облучателя).

после окончания экспозиции бактерицидного облучения выключить облучатель;

Раздел 11.
Генеральная уборка по типу заключительной дезинфекции.

* Заключительная дезинфекция кабинета проводится 1 раз в неделю;

* надеть рабочий халат;

* освободить поверхности рабочего и манипуляционного столов;

* освободить шкаф и ящики столов, оставив их открытыми или выдвинутыми;

* надеть защитные очки, перчатки, респиратор;

* приготовить в емкости гидропульта дезинфицирующий раствор;

* с помощью гидропульта нанести на стены, окна, двери, внутренние поверхности шкафа, тумбочек, столов и другие поверхности дезинфицирующий раствор в концентрации, предусмотренной для инактивации вирусов гемоконтатных гепатитов из расчета 0.2л на 1 м2. Если не используется гидропульт, то стены и потолок моют с помощью телескопической швабры;

* покинув помещение, плотно закрыть дверь;

* выдержать время экспозиции дезинфектанта;

* вымыть стены на полную высоту и поверхности подоконника, шкафа, столов, холодильника, кушетки, тумбочки, стульев, пригласить электрика и протереть плафоны;

* прополоскать тщательно отжать ветошь;

* вылить остатки моющего раствора в канализацию;

* убрать ведро и ветошь в помещение, предназначенное для ее хранения;

* включить бактерицидный облучатель (время экспозиции зависит от типа облучателя).

* после окончания экспозиции бактерицидного облучения проветрить помещение;

* после окончания экспозиции бактерицидного облучения выключить облучатель.

Раздел 12.
Защита персонала от инфицирования.

Состав аптечки первой помощи при аварийной ситуации:

* 5% спиртовая настойка йода;

* 20 % раствор сульфацила-натрия;

* навески марганцевокислого калия для приготовления 0,05% раствора (50 мг на 100 мл воды);

* бинт, лейкопластырь, напальчники, перчатки.

При повреждении емкости, разливе биологических субстратов:

* использовать защитную одежду: перчатки, фартук, маску или щиток;

* ограничить место аварии ветошью и залить его дезинфицирующим раствором (0,1% раствором Жавелиона; 6% перекисью водорода и т.д.) на 1 час;

* через час собрать разбитую емкость с помощью совка, выбросить, поверхности вымыть водой;

* перчатки повторному использованию не подлежат.

При повреждении кожных покровов инструментами, загрязненными биологическими жидкостями пациента:

* выдавить кровь из ранки,

* обработать 700 спиртом,

* вымыть руки под проточной водой с двукратным намыливанием,

* обработать ранку 5% настойкой йода.

При попадании биологических жидкостей пациентов на слизистую глаз:

* промыть под проточной водой,

* закапать 20 % раствор сульфацила-натрия или промыть 0,05% раствором марганцевокислого калия (разведение 1 : 10000);

Внимание! Категорически запрещается тереть слизистые оболочки, загрязненные кровью или другими биологическими жидкостями.

При попадании биологических жидкостей пациентов на слизистую носа:

* промыть под проточной водой,

* промыть 0,05% раствором марганцевокислого калия;

* При попадании биологических жидкостей пациентов на неповрежденную кожу:

* обработать кожу 700 спиртом,

* вымыть руки под проточной водой с двукратным намыливанием,

* повторно обработать 700 спиртом,

При попадании биологических жидкостей пациентов на слизистую рта:

* прополоскать 0,05% раствором марганцевокислого калия или 700 спиртом;

В случае повреждения пробирки с кровью во время работы центрифуги:

* крышку открывать медленно, только через 40 минут после полной остановки,

* все центрифужные стаканы и разбитое стекло поместить в дезинфицирующий раствор на 1 час (3% раствором хлорамина, 0,1% раствором Жавелиона, 6% перекисью водорода и т.д.),

* внутреннюю и наружную поверхность центрифуги и крышки обработать дезинфицирующим раствором двукратным протиранием с интервалом в 15 минут.

Нормативные документы:

Объяснить пациенту цель и ход процедуры, получить согласие пациента.

Оформить направление в бактериологическую лабораторию.

Вымыть и осушить руки.

Надеть спецодежду, перчатки.

Проверить срок годности и герметичность упаковки шприца.

Вскрыть и собрать шприц по алгоритму.

Положить шприц в стерильный лоток.

Помочь пациенту принять удобное положение (лёжа или сидя).

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

Подложить под локоть пациента клеёнку, валик. Наложить жгут на плечо (подложив рукав одежды или салфетку) выше локтевого сгиба.

Попросить пациента несколько раз сжать и разжать кулак. Попросить пациента зажать кулак.

Обработать широко спиртом кожу локтевого сгиба. Обработать йодонатом, а затем спиртом кожу непосредственно в области венепункции.

Взять шприц и выполнить венепункцию (зафиксировав вену левой рукой, правой пропунктировать вену).

Оттянуть поршень шприца на себя и набрать 5-10 мл (в зависимости от возраста), а если взятие крови проводится через 2-3 недели от начала заболевания, то забрать 10-20 мл крови.

Снять жгут с плеча, приложить ватный тампон, смоченный спиртом в область инъекции и извлечь иглу из вены. Попросить пациента согнуть руку в локтевом сгибе на 5-7 минут.

Поместить шприц с кровью на стерильный лоток.

При использовании флакона с ватно-марлевой пробкой:

Снять пробку с колпачком с флакона со средой. Обжечь горлышко флакона над пламенем спиртовки.

Взять шприц с кровью, снять иглу в лоток для сброса и обжечь канюлю шприца над пламенем спиртовки.

Выпустить кровь из шприца во флакон по стенке (медленно!) на расстоянии 5 – 6 см над пламенем спиртовки.

Положить шприц в лоток для сброса.

Обжечь горлышко флакона над пламенем спиртовки. Закрыть флакон пробкой и бумажным колпачком. Закрыть спиртовку.

Поместить флакон и направление в контейнер и доставить в бактериологическую лабораторию.

При использовании флакона с резиновой пробкой:

9. Снять с флакона верхнюю защитную крышку (бумажную);

10. Протереть крышку 70% спиртом;

Проверить срок годности и герметичность иглы и вскрыть ее;

На шприце с кровью сменить иглу на стерильную;

Проколоть крышку и медленно ввести во флакон необходимое количество крови;

Протереть крышку 70% спиртом и надеть защитную крышку.

ПОМНИ! Доставить материал в бактериологическую лабораторию необходимо без промедления! При невозможности немедленной доставки – поместить флакон в термостат при Т = 36 – 37 0 С.

ЗАВЕРШЕНИЕ:

Положить в отдельные ёмкости с 5% раствором хлорамина использованные ватные шарики, шприц, провести нулевую и собственно дезинфекцию.

Снять перчатки, положить в ёмкость с 5% раствором хлорамина, провести нулевую и собственно дезинфекцию.

Показания: подозрение на брюшной тиф, минингококковую инфекцию (менингококкцемию).

Противопоказания: нет.

Подготовить:

1. Одноразовый шприц с иглой с большим просветом.

2.Флакон с питательной средой.

3.Стерильные марлевые шарики, смоченные в 70% этиловом спирте.

4.Спиртовка или тампон, смоченный спиртом.

11.Ёмкость с дезинфицирующим раствором.

12.Лоток для использованного материала.

Подготовка пациента:

1.Установить доверительные отношения с пациентом.

2.Объяснить пациенту цель и ход процедуры, получить согласие.

3.Помочь пациенту занять удобное положение (сидя или лёжа).

4.Под локоть пациента подложить клеёнчатую подушку, обёрнутую стерильной салфеткой.

Техника выполнения:

1.Обработать руки на гигиеническом уровне, надеть стерильные перчатки.

2.Подготовить стерильный лоток со стерильной салфеткой, стерильной иглой для венепункции и шприцом

3.Осмотреть и пропальпировать вену.

4.Исследовать пульс на лучевой артерии.

5.Наложить жгут на плечо пациента, обёрнутое стерильной пелёнкой.

6.Повторно исследовать пульс.

8.Дважды обработать кожу внутренней поверхности локтевого сгиба спиртом в направлении от периферии к центру (сначала большую поверхность, затем только место венепункции).

9.В правую руку взять иглу со шприцом попросить пациента зажать кулак.

11.Большим пальцем левой руки зафиксировать вену, правой рукой выполнить венепункцию. Забрать

кровь в количестве 5-10-15 мл.

12. Попросить пациента разжать кулак, снять жгут и приложив к месту венепункции стерильный марлевый шарик, смоченный спиртом, извлечь иглу со шприцом.

13.Попросить пациента согнуть руку в локтевом суставе или наложить давящую повязку.

14.Снять иглу со шприца стерильным пинцетом.

15. Взять флакон с питательной средой, снять пробку. Горлышко флакона обжечь над горящей спиртовкой или зажжённым марлевым шариком, смоченным спиртом.

16. Кровь вылить во флакон с жидкой питательной средой (желчный, сахарный бульон). Соотношение крови и питательной среды должно быть 1:10.

(5 мл крови и 50 мл среды)

17. После завершения посева горлышко флакона вновь обжечь над пламенем спиртовки и закрыть пробкой.

1.Пациента проводить в палату.

2. Собранный материал доставить в лабораторию без промедления и поместить в термостат.

Возможные осложнения: гематома, инфицирование, нарушение стерильности пробы

1. Забор крови необходимо осуществлять в первые дни от начала заболевания до начала антибактериальной терапии, на фоне лихорадки.

2. Если посев производится в вечернее или ночное время, когда лаборатория не работает, флакон поставить в термостат, имеющийся в отделении или приемном покое.

3.Утилизация игл и шприцов проводится в соответствии со стандартом.

-поинтересоваться у пациента его самочувствием, успокоить пациента, если он испытывает страх перед манипуляцией.

-рассказать пациенту, для какого исследования проводится забор крови.

-объяснить пациенту, что при выполнении процедуры в другом положении возможно осложнение – обморок.

-пояснить, что данное положение руки облегчит прокалывание вены.

- посев производится в условиях стерильности. Медицинский работник надевает стерильные халат, шапочку, маску непосредственно перед посевом.

-объяснить, что это необходимо для выбора наилучшего места для венепункции.

-объяснить пациенту, что это способствует наполнению вены и облегчит введение иглы.

-предупредить пациента об уколе и попросить его отвернуться при боязни вида крови и сообщить медсестре о появлении головокружения, тошноты и других симптомов.

- Объем взятой крови зависит от возраста и от даты от начала заболевания.

-наблюдать за реакцией пациента во время забора крови.

-объяснить пациенту, что это снизит риск заноса инфекции.

-пояснить, что давящая повязка уменьшит кровопотерю из вены и снизит риск образования гематомы.

- это необходимо для сохранения стерильности при посеве крови на гемокультуру.

Производится при тифо-паратифозных заболеваниях, сепсисе, менингококковой инфекции или других инфекциях, сопровождающихся лихорадкой, причем на протяжении всего лихорадочного периода болезни, но лучше в начальном периоде или в разгаре болезни (при выраженной бактериемии). Для исследования берут кровь из вены локтевого сгиба, у маленьких детей кровь берут в меньшем количестве из мочки уха, пятки, пальца. Пробы крови отбирают после тщательной обработки кожи с соблюдением правил асептики, одноразовым стерильным шприцем. Посев на питательные среды стерильного материала (кровь или другие, содержащие микробов жидкости у здоровых лиц) также лучше делать у постели больного, либо помещать в стерильную посуду, содержащую вещества, препятствующие свертыванию крови 0,3% раствора цитрата натрия, 0,1% раствор оксалата натрия). Обычно берут 5-10мл крови и засевают во флакон, содержащий 50-100 мл среды. Для этого используют для флакона с питательной средой (один для аэробов, другой для анаэробов). Посев крови производится на жидкие питательные среды – 10% желчный бульон, 1% сахарный бульон, двухфазную среду, а также жидкие и полужидкие среды для культивирования анаэробов в разведении 1:10. Флаконы с питательной средой получают в лаборатории, переливание крови из шприца во флакон необходимо производить над пламенем спиртовки, предварительно сняв иглу. Флакон с посевом направляется в лабораторию, а в вечернее и ночное время помещают в термостат. Студенту важно помнить, что тем раньше от начала заболевания производится посев. Тем больше шансов получить положительный результат. И, наоборот, чем позже взята кровь, тем меньшее количество возбудителя в ней находится и положительные результаты получаются реже. А при нормальной температуре – совсем редко. Следует знать, что для повышения числа положительных результатов гемокультуры рекомендуется, при отсутствии противопоказаний, за 15-20 минут для взятия крови ввести подкожно 1мл 0,1% раствора адреналина, что способствует сокращению селезенки и выходу в кровяное русло возбудителей (например, при тифозно-паратифозных заболеваниях) Предварительный результат посева при тифо-паратифозных заболеваниях получают через 2-3 дня, а окончательный – через 7-10 дней. Следует помнить, что увеличение кратности посевов крови (три дня подряд на подъеме температуры) значительно повышают частоту выделения микробов из крови. У леченных больных кровь для посева следует брать 5-6 раз.

Люмбальную пункцию проводит врач.

Медицинская сестра осуществляет: - подготовку инструментов; - подготовку больного; - помощь врачу при проведении манипуляции; - обеспечение правильного ухода за больным после проведения пункции.

Цель проведения люмбальной пункции – лечебная и диагностическая.

Оснащение. Стерильные ватные шарики, пинцет, 3% спиртовой раствор йода (йодинола), шприц 2,0 мл или 5,0 мл, две иглы, 0,5% раствор новокаина, игла для спинномозговой пункции с мандреном, стерильные пробирки, спирт, стерильные салфетки, лейкопластырь, стерильные резиновые перчатки, бланки направлений в клиническую и бактериологическую лабораторию.

1. Больного поместить в положение сидя, нагнувшись вперед, или лежа на боку с приведенными к животу коленями.

2. Обеззаразить руки, одеть стерильные резиновые перчатки.

3. Место пункции (точка между четвертым и пятым поясничными позвонками) и близлежащую площадь обработать спиртовым раствором йода (йодинолом).

4. Провести анестезию кожи новокаином.

5. Провести люмбальную пункцию: иглу с мандреном ввести в точку между остистыми отростками четвертого и пятого поясничных позвонков.

6. Снять мандрен (из иглы струйно или капельно должна вытекать жидкость) и подставить стерильную пробирку. Собрать необходимое количество жидкости на исследование.

7. Вставить в иглу мандрен и осторожно извлечь иглу.

8. Обработать место прокола и наложить стерильную повязку.

Примечание: - транспортировка больного в палату осуществляется в горизонтальном положении, лежа на животе, на каталке; - первые 2-3 часа больной должен лежать на животе без подушки; - строгий постельный режим обязателен в течение суток.

Е.Б. Лукоянычева–заведующая иммунологической лабораторией ГУЗ КОКБ.

Правила забора биологического материала для иммунологических исследований: Методические рекомендации / Авт.-составитель О.М.Луппова.- Кемерово: ГУЗ КОКБ ,2008.-25 стр.

Введение 4
Раздел 1. Общие правила забора биологического материала и оформления сопроводительных документов
Раздел 2.Технология забора крови из периферической вены для лабораторного исследования
Раздел 3.Правила взятия венозной крови с помощью закрытой системы (вакуумного шприца-контейнера)
Раздел 4.
Транспортировка образцов крови
Раздел 5.
Требование к маркировке пробирок
Раздел 6
Образец оформления пробирок и заполнения сопроводительных документов
Приложение № 1
Забор крови на иммунограмму
Приложение №2.
Забор крови на циркулирующий иммунный комплекс
Приложение №.3
Забор крови на криоглобулины
Приложение №.4
Забор крови на группу крови и резус принадлежность
Приложение №5.
Забор крови на реакцию Кумбса
Приложение №6
Забор крови на гемоконтактные гепатиты В и С (HBsAg, анти – HCV)
Приложение №7.
Забор крови на развернутый комплекс маркеров гепатитов
Приложение №8.
Забор крови на клещевой энцефалит, боррелиоз
Приложение №9.
Забор крови на антитела к антигенам описторхисов, лямблий, хеликобактеру
Приложение №10.
Забор крови на цитомегаловирус, токсоплазмоз, герпес
Приложение №.11
Забор крови на а/т к тироидной пероксидазе
Приложение №12
Забор крови на ВИЧ 23
Приложение № 4(образец заполнения)
Список литературы

Данное методическое пособие предназначено для медицинских сестер Кемеровской областной клинической больницы.

Методическое пособие поможет правильно произвести забор биологического материала и оформить сопроводительные документы.

Правильно произведенный забор биологического материала и правильно оформленные направления исключат ошибку на преаналитическом этапе исследования.

Формы сопроводительных документов составлены так, чтобы сократить время медицинской сестры, затрачиваемое на оформление направлений.

Необходимо, чтобы образцы крови были правильно взяты и вовремя доставлены в лабораторию. Нарушения, допущенные на преаналитическом этапе, могут повлиять на результат исследования и его дальнейшую интерпретацию.

Раздел 1.
Общие правила забора биологического материала и оформления сопроводительных документов

Перед забором крови пациенту следует сообщить:

1. На какой вид исследования будет проводиться забор крови.

2. Требования необходимые для данного исследования.

Порядок забора венозной крови

1. Исследование проводится утром натощак, последний прием пищи за 12 часов до взятия крови.

2. Исключение приема алкоголя не менее чем за 24 часа до взятия крови.

3. Утренний прием лекарственных препаратов, лечебно-диагностических процедур (массаж, ЭКГ, физиотерапевческое лечение и др.) проводится после взятия крови.

5. Пациент перед процедурой должен находиться в покое, сидеть или лежать не менее 5 минут.

6. Продолжительность пережатия сосудов жгутом должна составлять не более 1 минуты.

7. Нельзя просить работать пациента кулаком и массировать предплечье по ходу вен.

Раздел 2
Технология забора крови из периферической вены для лабораторного исследования

подготовить на манипуляционном столе стандартный набор для забора крови из периферической вены, проверив целостность упаковок и сроки годности:

1. лоток для использованных материалов;

2. пробирки для крови;

3. упаковка с 2-мя стерильными салфетками (5х5см) или 4-5 шариками;

5. кожный спиртовой антисептик во флаконе с дозатором;

сделать необходимые надписи на пробирках;

оформить сопроводительные документы в лабораторию;

обеспечить удобное освещение;

помочь пациенту найти удобное положение;

обработать руки спиртовым антисептиком;

вскрыть упаковки со стерильными материалами;

руку больного уложить в положении максимального разгибания, для чего под руку следует положить валик, имеющий влагостойкое покрытие.

наложить жгут на 10 - 15 см выше выбранной зоны, не нарушая ток крови;

выбрать вену для венепункции;

обработать место венепункции кожным антисептиком и дать высохнуть самостоятельно;

Не пальпируйте вену повторно!

надеть на стерильный шприц иглу;

снять с иглы защитный колпачок;

пальцами левой руки фиксировать кожу над веной;

ввести под кожу иглу срезом вверх под углом 30-40 0 ;

установить иглу параллельно вене и быстрым движением проколоть ее стенку;

иглу продвинуть немного вверх по длине вены;

набрать необходимое количество крови в шприц

- запрещается забор крови свободным кровотоком из иглы в пробирку, а также присоединение к игле нового шприца;

- для безопасного забора крови предпочтительно использовать вакуумный шприц-контейнер.

иглу извлечь из вены;

прижать место венепункции стерильной салфеткой на 2-3 минуты;

осторожно, предупреждая разбрызгивание крови, вылить содержимое шприца через иглу в одну или несколько пробирок.

Раздел 3
Правила взятия венозной крови с помощью закрытой системы (вакуумного шприца-контейнера)

Закрытые системы взятия венозной крови представляют собой новое поколение вакуумных шприцев - контейнеров с реактивами. Их использование имеет следующие преимущества перед традиционными способами:

полностью исключается контакт медперсонала с кровью на всех этапах взятия крови и ее транспортировки;

особо прочный пластик закрытых систем позволяет осуществить безопасную доставку крови на любые расстояния;

благодаря наличию широкого спектра пробирок с заранее добавленными реагентами для различных видов анализов (ЭДТА для гематологии, цитрат натрия для коагулогии, активатор свертывания для получения сыворотки), значительно облегчается работа медсестер и лаборатории. Международная цветовая маркировка предотвращает их не правильное применение;

уменьшается количество ошибочных анализов, связанных с неправильным взятием проб крови и неверным соотношением реагентов.

закручивающаяся крышка предотвращает "аэрозольный эффект" при открывании;

1. Надеть иглу на контейнер и закрепить легким поворотом по часовой стрелке. Провести пункцию вены.

1. Провести пункцию вены иглой. Благодаря защитной мембране кровь из иглы не вытекает.

2. Медленно оттягивая поршень, наполнить контейнер кровью. После заполнения кровью контейнер вместе с иглой вынуть из вены. Поршень зафиксировать в конечном положении до характерного щелчка. В случае взятия нескольких образцов крови, контейнер отсоединить. Иглу оставить в вене и на нее надеть следующий контейнер.

2. Создать вакуум в контейнере.
Для этого отвести поршень в конечное положение (до характерного щелчка) и отломить его

3. По окончании взятия крови, шток поршня обломить. Вы получаете транспортный контейнер с кровью и антикоагулянтом или готовую пробирку для сепарации сыворотки.

3. Насадить контейнер на иглу. Взятие крови осуществляется под действием вакуума. В этом случае вы также получаете транспортный контейнер с кровью и антикоагулянтом или готовую пробирку для сепарации сыворотки.

Транспортировка образцов крови

При транспортировке образца внутри лечебно-диагностического учреждения, пробирки с кровью должны находиться в контейнере, который в случае повреждения пробирки будет предотвращать разлитие крови.

Порядок доставки крови в лаборатории

Штативы с кровью поместить в герметичный контейнер;

наружные части контейнера двукратно с интервалом в 15 минут протереть дезинфицирующим средством (концентрация по режиму для вирусных гепатитов);

доставить контейнер в лабораторию;

вынимать образцы крови из контейнера только в перчатках!

после возвращения из лаборатории контейнер вновь двукратно с интервалом в 15 минут протереть дезинфицирующим средством (концентрация по режиму, предусмотренному для гемоконтактных вирусных гепатитов).

Требование к маркировке пробирок.

Маркировку пробирок и заполнение сопроводительных документов следует проводить аккуратно и четко.

Фамилию, имя, отчество пациента писать четко и разборчиво.

В направлении заполнять все графы.

Не допускается, чтобы этикетка на пробирке была размыта, порвана или плохо приклеена.

Читайте также: