Что такое яйца гельминтов в сточных водах

Обновлено: 22.04.2024

Для цитирования:
Долбин Д. А., Хайруллин Р. З. Устойчивость яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды (обзор литературы) // Российский паразитологический журнал. – М., 2017. – Т.39.- Вып.1 . – С.

For citation: Dolbin D. A., Khayrullin R. Z. Resistance of helminth eggs to unfavorable physical, chemical and biological factors of the environment . (Literature review) // Russian Journal of Parasitology, 2017, V. , Iss. , pp.

Устойчивость яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды

Долбин Д. А., Хайруллин Р. З.

Цель исследования – сделать анализ литературных источников по устойчивости яиц некоторых видов гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды.

Материалы и методы. Проанализированы литературные источники по изучению устойчивости яиц некоторых видов гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды.

С целью уничтожения яиц свиной аскариды был предложен метод очистки сточных вод с применением фитопланктона Clorella vulgaris и Scenedesmys obliguus. Очищенная в биопрудах сточная жидкость полностью очищается от яиц гельминтов. Установлено губительное влияние на яйца гельминтов ризосферы бархатцев, календулы, ячменя, проса. Различные простейшие организмы также оказывают влияние на выживаемость яиц гельминтов. Так, Amoeba verrucosa способна захватывать яйца аскарид и свободные личинки, вышедшие из яиц. Хищные инфузории Bursaria truncatula, Stylonichia mytilus и Stentor sp. поглощают яйца аскарид, корацидиев широкого лентеца и мирацидиев печеночной двуустки и полностью переваривают их в течение 24–72 ч. В элиминации яиц гельминтов принимают участие олигохеты, ресничные черви, водные насекомые, ракообразные и моллюски.

Ключевые слова: яйца, гельминты, устойчивость, элиминация, факторы окружающей среды, методы борьбы.

Качественная очистка помещений от навоза, помета обеспечивает удаление основной массы инвазионного начала. Однако, накапливающиеся постепенно яйца, личинки гельминтов, ооцисты и цисты простейших на полах, стенах, возле кормушек способны длительное время сохранять жизнеспособность, достигая инвазионной стадии и вызывая заражение животных.

Несмотря на необходимость проведения указанного мероприятия, чаще всего им пренебрегают. В значительной степени это обусловлено отсутствием или недостатком дезинвазионных средств. Вместе с тем в литературе сформулирована следующая концепция: основу профилактики паразитозов животных составляют интегрированные мероприятия, включающие применение биологических, технологических, экологических, санитарных, а также иммунобиологических, генетических и регулирующих методов при минимальном использовании химических средств [3].

Разработка средств дезинвазии основывается на знании параметров резистентности возбудителей к естественным и искусственным физико-химическим и биологическим факторам. Известно, что выживаемость возбудителей паразитозов зависит как от интенсивности воздействия, так и от способности биологической защиты эктогенных стадий паразитов, связанной со структурой оболочек. Разные возбудители неодинаково относятся к тем или иным средствам воздействия. Литературные данные свидетельствуют о том, что яйца большинства видов нематод, трематод, цестод и акантоцефал имеют слаборазвитую защитную систему оболочек. Исключение составляют яйца аскаридат [4].

Касаясь структуры сферы, окружающей зародыш, многие авторы называют общую оболочку яйца скорлупой. В части её строения большинство сходится во мнении, что у яиц нематод – представителей аскаридат, трихоцефалят и стронгилят имеется четыре оболочки [5]. Это подтверждено на электронно-микроскопическом уровне на примере яиц аскаридий [6]. Более ранними исследованиями у яиц аскаридат отмечено три основных оболочки: эпителиальная, глянцевитая и волокнистая. Из них последняя липоидная, растворимая эфиром, хлороформом, кислотами жирного ряда. Она пропускает воду, но задерживает соли и другие вещества.

Установлено сходство строения скорлупы яиц аскаридат и трихоцефалят. У тех и других плотная средняя оболочка, которая защищает зародыш от неблагоприятных факторов, и она намного мощнее таковой у яиц стронгилят. Это обстоятельство определяет наибольшую устойчивость яиц указанных видов гельминтов к факторам среды и позволяет использовать их в качестве тест-объектов при разработке средств дезинвазии.

Сведения по резистентности возбудителей паразитарных болезней, находящихся на стадиях яйца, необходимы при изыскании и разработке средств дезинвазии. Значительный интерес представляет сравнение устойчивости разных видов нематод с устойчивостью Neoascaris vitulorum. В этой связи представляют интерес данные о влиянии температуры, высушивания, физических и химических средств на яйца и личинки некоторых видов гельминтов.

Яйца нематод (Parascaris equorum, Ascaris suum) погибают в воде при температуре 60 °С за 25–30 с, а при 70–80 °С – за 2 с, яйца Ascaridia galli в воде при температуре 45 °С – за 2 ч, при 55 °С – за 2 с, яйца Ascaris lumbricoides при температуре 50 °С – за 5 мин, при 55–60 °С – за 5 с, а при температуре 65 °С – за 2 с. Высушивание яиц P. equorum при температуре 30–36 °С приводит их к гибели через 3–5 сут. При температуре 45 °С они погибают через 24 ч, при 50 °С – за 3–6 ч, при 55 °С – за 1 ч, при 60 °С – за 30 мин, при 70 °С – за 15 мин. Яйца аскаридий при температуре 40 °С погибают через 15 сут, при 42 °С – за 8 сут, при 44 °С – за 3,5 сут, при 47 °С – за 6 ч, при 55 °С – за 1 ч, при 60–62 °С – за 20 мин, при 70 °С – за 15 мин. Личинки стронгилят лошадей и овец 1–2-дневного возраста гибнут при кратковременном высушивании, а 5–7-суточные – выживают несколько месяцев [4].

Низкие температуры воздуха по-разному действуют на яйца и личинки гельминтов. При отрицательных температурах приостанавливаются обменные процессы и развитие яиц P. equorum, которые выживают при этой температуре около 5 лет. При температуре от 0 до минус 36 °С яйца P. equorum и стронгилят остаются жизнеспособными в течение месяца.

Эффективными для дезинвазии оказались УФ-лучи. Установлено, что они действуют на протоплазму клетки, повышая ее вязкость, повреждают ядро, вызывают мутагенное действие и уродливость личинок при высоких дозах. Эффективны на чистых культурах и в опытах с жидкими средами также ионизирующие излучения и гамма-лучи. Они угнетают эмбриогенез, вызывают гибель зародыша в яйцах гельминтов. Однако на практике для дезинвазии они по существу не применяются из-за сложности выполнения [7].

Внешняя форма яиц N. vitulorum на первый взгляд мало отличается от таковых других видов аскаридат. Яйца имеют круглую, иногда овальную форму и достигают в длину 0,075–0,09 и в ширину 0,065–0,075 мм. Наружная оболочка имеет ячеистую структуру наподобие яиц Toxocara canis. При сравнении их с яйцами P. equorum или Toxascaris leonina бросается в глаза разница в структуре внутренней волокнистой оболочки. В то время как у яиц P. equorum и T. leonina волокнистая оболочка развита очень мощно и хорошо заметна под микроскопом, у N. vitulorum она развита очень слабо и заметна лишь при большом увеличении.

Сравнительная слабость развития покровных оболочек яйца обеспечивает меньшую устойчивость неоаскарид к неблагоприятным факторам окружающей среды, в частности к высыханию и действию прямых солнечных лучей, по сравнению с другими аскаридатами. Чувствительность к высоким температурам у N. vitulorum в целом не ниже чем у других видов аскарид. При температуре 40 °С яйца паразита погибали через 48 ч, при 50 °С – через 30 мин, при 60 °С – через 5 мин, при 65 °С – через 1 мин [8].

Одним из основных методов дезинвазии помещений, средств ухода за животными в практике животноводства, а также в области медицины, является химический. Об этом свидетельствуют многочисленные исследования, которые интенсивно начали проводиться с первого десятилетия прошлого столетия. Затем эти исследования стали менее интенсивными и в последние годы очень малочисленными.

Так как средства дезинвазии должны отвечать довольно жестким требованиям (невысокие концентрации, сравнительно небольшое время экспозиции, низкая токсичность и экологическая безопасность), в настоящий момент Департаментом ветеринарии МСХиП РФ рекомендовано к применению всего 6 средств дезинвазии: едкий натрий, едкий калий, ксилонафт, сернокарболовая смесь, однохлористый йод и хлорная известь. Это придает актуальность поиску новых дезинвазионных средств.

Следует отметить, что результаты оценки эффективности средств дезинвазии у разных авторов сильно колеблются, что связано с различными критериями эффективности и условиями эксперимента. Концентрированная серная кислота вызывает гибель яиц P. equorum при экспозиции 24 ч, соляная и азотная кислоты – при 120-часовой экспозиции, 2–3%-ная серная кислота через 1–3 ч инкубации была не эффективна, 1–2 % NaOH вызывал задержку развития, также как неочищенная карболовая кислота, 1–5%-ный креолин и 4%-ная хлорная известь. Дихлорэтан через 30 ч инкубирования вызывал гибель яиц лошадиной аскариды. Крезол в концентрации 4 % приводил к гибели уже через 2 ч инкубации [4]. Карболовая кислота в концентрации 3–5 % и 5%-ный креолин вызывали гибель яиц P. equorum через 48 ч [9]. На яйца T. canis 2–3%-ный креолин, 50%-ная хлорная известь не оказывают угнетающего эффекта при экспозиции 1–3 ч, а 3%-ная неочищенная карболовая кислота при той же экспозиции приводит к задержке развития. Абсолютно губительны для яиц T. canis негашеная известь и горячая карболовая кислота [4]. Яйца A. galli показывают в опытах сравнительно меньшую устойчивость к химическим реагентам: 5%-ная хлорная известь, 3%-ный креолин, 3 % NaOH вызывали гибель через 24 ч инкубации, 5 % ксилонафт вызывал гибель 9 5% яиц через 2 ч, а совместно с 0,5 % сероуглеродом – 100%-ную гибель яиц. Гибель яиц вызывали также негашеная известь и 4%-ный карбатион через 24 и 48 ч соответственно [6]. В отношении A. suum, формалин в концентрации 4–10 % оказался не эффективным, также едкий натрий 10 % при экспозиции менее суток, при использовании горячего (60 °С) едкого натрия наблюдали частичную гибель яиц. При этом горячая вода (60 °С) сама по себе приводит к гибели 40–50 % яиц A. suum при кратковременном воздействии [5].

Особо следует отметить, что использование горячего и даже холодного 10 % NaOH до сих пор рекомендуется как эффективное профилактическое средство [10].

В целях профилактики неоаскаридозной инвазии рекомендуется в неблагополучных хозяйствах организовывать изолированное содержание стельных коров и телят до 4–5 мес и биотермическое обеззараживание навоза с последующей дезинвазией помещений, а также профилактическая дегельминтизация молодняка крупного рогатого скота, начиная с месячного возраста [12].

Биологические агенты обладают большой избирательностью по сравнению с химическими реагентами, имеют меньшее вредоносное значение для других организмов-сочленов водных биоценозов, легко вписываются в технологические циклы [13]. Поэтому введение их в экологическую систему не вызывает значительного нарушения баланса. Для борьбы с биогельминтами можно применять методы экологической профилактики – подавление численности промежуточных хозяев. Это может быть осушение пойменных водоемов, засыпка и выравнивание поймы, что способствует резкому снижению численности моллюсков в затопляемых поймах. Очевидно, что такие радикальные меры в большинстве случаев ведут к резкому нарушению природного баланса.

Элиминационной способностью в отношении яиц свиной аскариды обладают различные водоросли [14]. Был предложен метод очистки сточных вод с применением фитопланктона (накопительная культура Clorella vulgaris и Scenedesmys obliguus). Очищенная в биопрудах сточная жидкость полностью очищается от яиц гельминтов и частично от кишечной палочки. Наряду с фитопланктоном в процессе самоочищения участвуют коловратки, различные моллюски Anodonta, Unio [15].

На яйца гельминтов губительное влияние оказывает корневая система различных растений. Под влиянием корневой системы редиса и полыни разрушается 50–60 % зародышей аскарид в яйцах. Овоцидную активность проявляет ризосфера бархатцев, календулы, ячменя, проса; ризосфера викоовсяной смеси угнетает развитие яиц аскарид, сохраняя их жизнеспособность [16].

На выживаемость яиц гельминтов оказывают влияние различные простейшие организмы. Так, Amoeba verrucosa способна захватывать яйца аскарид и свободные личинки, вышедшие из яиц [14]. Хищные инфузории Bursaria truncatula, Stylonichia mytilus и Stentor sp. поглощают яйца аскарид, корацидиев широкого лентеца и мирацидиев печеночной двуустки и полностью переваривают их в течение 24–72 ч возможно потому, что те вещества, которые выделяют яйца аскариды в окружающую среду, вызывая у них отрицательную трофическую реакцию.

Не все виды животных, даже в пределах одной группы, проявляют овоэлиминационную активность как, например, равноресничные инфузории таких видов как Colpoda cuculus, Lacrymaria olor. В элиминации яиц гельминтов принимают участие виды олигохет, ресничные черви, водные насекомые [17]. Часть яиц, прошедших через кишечник червей, разрушается, другая часть проходит через кишечник без заметных изменений. Хищные олигохеты семейства Naididae элиминируют личинки филометроидеса, олигохеты Ch. limnaei, Aelosoma sp., Potamothris bedoti вызывают частичное разрушение яиц аскариды и широкого лентеца. Личинки ручейников Phryganea grandis поздней генерации поедают яйца аскарид в большей степени, чем личинки первой генерации.

Эффективными элиминаторами яиц гельминтов оказались водные насекомые с грызущим и колющим аппаратом. Насекомые используют яйца гельминтов в качестве корма: одни заглатывают и переваривают яйца, другие прокалывают скорлупу яиц и высасывают их содержимое. Первый способ элиминации присущ ручейникам и поденкам, второй – водяным клопам Corizidae [18]. В очищении среды от яиц аскарид также принимают участие различные ракообразные и моллюски. Установлено, что моллюски-фитофаги родов Lymnaea, Bradybaena, наземные Oxychilus translucidus служили дессиминаторами яиц гельминтов, в частности аскарид [19]. Моллюски-детритофаги Valvata piscinalis, Bithynia tentaculata, Planorbis sp. значительно повреждают протеолитическими ферментами своего пищеварительного тракта белковую оболочку яиц акарид, снижая тем самым их жизнеспособность.

Анализ литературных источников, комплексная оценка устойчивости яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды позволят в дальнейшем разработать эффективные противогельминтные препараты, а также средства дезинвазии.

1. Долбин Д. А., Тюрин Ю. А., Хайруллин Р. З. Получение и иммунохимические свойства комплексного аскаридозного антигена. // Вестн. Казан. технол. ун-та. – 2014. – Т. 17, № 13. – С. 266–269.

2. Осипов П. Н., Осипова Л. Н. О валеологической культуре будущего инженера. // Вестн. Казан. технол. ун-та. – 2011. – № 5. – С. 247–251.

3. Черепанов А. А. Концепция противопаразитарных мероприятий для решения научных и практических задач. // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. – 1999. – Т. 35. – С. 159–161.

4. Черепанов А. А., Кумбов П. К. Дезинвазия животноводческих помещений: состояние вопроса и перспективы исследований. // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. – 1997. – Т. 33. – С. 164–185.

5. Наумычева М. И. Стойкость яиц нематод к химическим веществам и физическим факторам: автореф. дис. … канд. биол. наук. – М., 1954. – С. 8–12.

6. Симонов А. П. Средства и методы дезинвазии объектов внешней среды при гельминтозах: дисс. … д-ра вет. наук. – М.,1976. – 300 с.

7. Лысенко А. А. Эпизоотология и профилактика при аскаридозе кур: автореф. дис. … канд. вет. наук. – М., 1939. – 16 с.

8. Давтян Э. А. К изучению биологии неоаскарид крупного рогатого скота. // Тр. АрмНИВИ. – 1942. – Т. IV. – C. 93–137.

9. Величкин П. А. Устойчивость яиц и личинок стронгилид (делафондий, альфортий) и трихонематид к обычным дезинфекторам. // Тр. Ростов. обл. н.-и. вет. опытн. станции. – 1952. – Вып. 10. – С. 77–86.

10. Абуладзе К. И. Паразитология и инвазионные болезни сельскохозяйственных животных. – М.: Агропромиздат, 1990. – С. 167–169.

11. Мирзоева Р. К. Дезинвазия объектов окружающей среды на территории Республики Таджикистан. // Мед. паразитол. и паразит. бол. – 2007. – № 2. – С. 35–36.

12. Балабекян Ц. И. Терапия при неоаскаридозе телят буйволят и некоторые данные по эпизоотологии и профилактике этого заболевания: автореф. дис. … канд. биол. наук. – М., 1956. – С. 12–16.

14. Костомарова–Никитина Л. П. Влияние Amoeba verrucosa на яйца аскариды. // Мед. паразитол. – 1967. – № 2. – C. 181–184.

15. Герасимов И. П. Научные основы современного мониторинга окружающей среды. // Изв. АН СССР. Сер. географ. – 1975. – Т. 3. – С. 13–24.

16. Николаев С. М. О влиянии корневых выделений растений на развитие яиц свиной аскариды. // Зоол. журнал. – 1968. – Т. LVII, Вып. 12. – С. 1860–1861.

17. Супряга В. Г. К вопросу о роли пресноводных беспозвоночных в эпидемиологии тениаринхоза. // Проблемы паразитологии. – 1972. – Ч. 2. – С. 306–307.

18. Илюшина Т. Л. Гидробионты как факторы, регулирующие численность популяции гельминтов рыб. // Новое в теории и практике борьбы с гельминтозами. – М.,1987. – Вып. 37. – С. 68–76.

19. Аситинская С. Е. К вопросу о роли моллюсков–детритофагов в очищении среды от яиц возбудителя аскаридоза. // Науч. тр. – Омск, 1977. –Т. 128. – С. 31–34.

Вода – необходимая составляющая для функционирования всех живых систем. Известно, что ежедневно человек в среднем потребляет до 2,5 литров воды. Однако помимо наличия в ней полезных элементов, таких как кальций, магний и калий, в ее составе могут содержаться и вредные для человека вещества – в их числе нитраты, нитриты и кадмий. Нередко в воде также встречаются различные бактерии и микроорганизмы, которые могут оказывать негативное влияние на работу органов.

Характеристики жидкости напрямую влияют на качество и продолжительность жизни. В связи с этим столь важно регулярно тестировать воду на наличие вредоносных паразитов, устанавливая жесткий контроль водоисточников. Далеко не все источники на данный момент соответствуют установленным санитарными службами требованиям и нормам. Для обеспечения надлежащей обработки и достижения соответствующего качества воды проводится комплекс санитарно-микробиологических исследований, в число которых входит проверка на паразитологические показатели.

Паразитологические показатели в воде

Для определения и последующей идентификации микроорганизмов, относящихся к патогенным, используется особая методика, которая позволяет обнаружить искомые бактерии, снизив затраты на использование сложного оборудования и большого количества реагентов. С практической точки зрения более эффективным будет тест, направленный на поиск индикаторных организмов. Дальнейшее наблюдение за ними позволит установить уровень микробиологического загрязнения воды.

Индикаторами могут выступать несколько видов бактерий и микроорганизмов:

ОМЧ (общее микробное число). В данном случае в виде критерия используются бактерии, образующие колонии в 1 мл воды. Демонстрация высокого числа указывает на общую бактериологическую загрязненность воды и высокую вероятность наличия патогенных организмов. Согласно СанПиН, данное значение устанавливается на уровне 50 CFU.
Колиформные бактерии. Это популярные индикаторы качества питьевой воды – в случае, если при исследованиях они не обнаруживаются, повода для беспокойства в большинстве случаев нет. Иначе могут появиться вопросы к недостаточно качественной очистке воды или вторичном загрязнении.
Термотолерантные колиформные микроорганизмы. Данная группа колиформов способна ферментировать лактозу при температуре 44-45 C. Они легче поддаются обнаружению и играют важную роль при оценке работы очистных систем, которые предназначены для борьбы с фекальными бактериями. При этом E.Coli служит более точным индикатором, поскольку источником появления ряда других колиформ могут быть не только фекальные воды.
Фекальные стрептококки. Учитывая, что данные микроорганизмы размножаются в загрязненной воде нечасто, их можно использовать при анализе качества воды с точки зрения оценки эффективности систем очистки.
Колифаги. Данная разновидность батериофагов, которые являются вирусами бактерий и вызывают их гибель, живет в колиформных бактериях. Они являются индикаторами качества воды, так как схожи с кишечными вирусами и без труда обнаруживаются.
Сульфитредуцирующие клостридии. Споры данных микроорганизмов могут существовать в воде намного дольше, чем колиформы, а также отличаются большей устойчивостью к обеззараживанию. По этой причине наличие данных бактерий может напрямую указать на недостаточное качество воды.
Лямблии. Данные простейшие микроорганизмы могут существовать в двух формах, не зависящих друг от других – это цисты и трофозоиты. Если первые статичны, то вторые свободно живут и перемещаются. Лямблии отличаются устойчивостью к воздействию кислот, щелочей, хлорсодержащих веществ. Отсутствие в воде цист указывает на то, что вода очищена от целого ряда простейших, среди которых покоящиеся стадии, амебы и энтеровирусы.

Санитарно-паразитологические исследования

Любые процедуры, связанные с определением паразитологических и микробиологических показателей, производятся в строгом соответствии с действующими требованиями и нормами СанПиН. По этой причине, в зависимости от источника, методика исследований может иметь свою специфику. Если отбор образцов производится из поверхностных водоемов, применяются решения, которые ориентированы на выявление цист простейших кишечных патогенов и яиц гельминтов, угрожающих не только здоровью, но и жизни человека.

Используемое оборудование при тестировании проб воды

Для выполнения паразитологического анализа чаще всего применяются аппараты напорного и вакуумного фильтрования. С их помощью осуществляется накопление осадка и выделение патогенных микроорганизмов в продукте. После этого тестируемая проба отправляется на фильтрацию через мембранный фильтр. После завершения данной процедуры из прибора убирается фильтр, с которого смывается собравшийся осадок. В некоторых случаях можно сразу приступать к микроскопированию.

Паразитологические показатели почвы

Процедура проведения анализа на паразитологические показатели почвы отличается от процедур, выполняемых в случае с водой. Чтобы оценить состояние почв естественного и нарушенного сложения, проведение анализов нужно осуществлять не реже одного раза в год. В случае с почвами, расположенными на территории дошкольных, образовательных учреждений, лечебных организаций, а также зон отдыха, исследования проводятся чаще – два раза в год.

Отбор проб производится точечно, то есть образец берется с каждого слоя. Процедура осуществляется с помощью ножа, совка, шпателя из прикопок или почвенного бура Некрасова. Проба составляется объединением точечных проб, которые были отобраны с одной площадки. В ряде случаев забор образцов может проводиться из более глубоких слоев. Во время транспортировки образца в лабораторию важно обеспечивать защиту от загрязнения.

Для обеспечения точного результата, паразитологический анализ рекомендуется осуществлять в день доставки. Если это по каким-то причинам невозможно, образец можно поместить в холодильник и держать при температуре не больше 5 °C. Длительность хранения зависит от типа искомых микроорганизмов. Так, для выявления цист нельзя хранить почву без дополнительной обработки дольше 48 часов.

Гельминты – многоклеточные организмы, которые ведут паразитический образ жизни и создают серьезный дискомфорт человеку и животным. Обитая в организме, они питаются за счет еды и тканей носителей. Самым распространенным местом обитания паразитов является желудочно-кишечный тракт. На текущий момент известно свыше 250 видов, обитающих в организме человека.

Виды паразитирующих в организме гельминтов

Существует два типа паразитирующих гельминтов:

Круглые черви, также называемые нематодами. Они считаются круглыми благодаря форме тела. К нематодам причисляют большое количество паразитов, в том числе аскариды, власоглавы, некаторы и острицы.
Плоские черви, принадлежащие к двум классам. Представителей первого называют ленточными благодаря их форме. К ним относятся бычий и свиной цепни, широкий лентец и эхинококк. Второй класс – сосальщики. Попадая в разные органы, они закрепляются на них путем присасывания. К данной категории причисляют кошачью, китайскую и печеночную двуустку, парагонии и шистосомы.

Оба типа глистов, являющихся паразитами человека, включают большое количество видов, которые объединяются в классы по различным ключевым факторам. При определении гельминтоза прежде всего устанавливается вид паразита, ставшего возбудителем заболевания. Тогда можно подобрать правильное лечение, которое даст результат. С учетом разнообразия нематод, цестод и сосальщиков, которые могут паразитировать в человеческом организме, точное определение их типа также способствует выбору оптимального способа обеззараживания жидкости, если источником заражения стала вода.

Гельминты могут разделяться по расположению в определенном органе. Всего их существует два вида:

Кишечные гельминты;
Внекишечные гельминты.

Организмы отличаются и по пути попадания в организм. Существует две категории: оральные, яйца и личинки которых оказываются в организме с немытыми продуктами и водой; перкутанные, проникающие через кожу.

Источники передачи гельминтов

К основным источникам передачи гельминтов относятся человеческие фекалии, почва с яйцами или личинками паразитов, продукты питания и вода. Говоря об инвазии, можно отметить, что гельминты в большинстве случаев не могут размножаться в организме человека – исключением являются острицы и ряд глистов.

Причина кроется в особенностях их жизненного цикла – выделяемые яйца далеко не всегда становятся инвазионными. В другой среде размножение глистов осуществляется посредством откладывания яиц взрослыми самками. Они могут подстерегать человека повсюду – в земле, воде, продуктах питания.

Таким образом, человека может получить заражение гельминтами тремя способами:

Орально-фекальным. Яйца или личинки оказываются в организме вместе с водой или пищей, которая была загрязнена. Этот путь инфицирования прежде всего свойственен для аскаридоза и энтеробиоза.
Перкутанным. Паразиты поступают через слизистые или кожу. Кожа необязательно должна быть поврежденной. Данный путь выбирают шистосомы и анкилостомиды.
Трансмиссивным инокуляционным. В этом случае переносчиками являются насекомые, которые передают личинки при укусе.

Яйца гельминтов в воде

Основными источниками заражения поверхностных, грунтовых и других вод от гельминтов являются необеззараженные от яиц и личинок паразитов нечистоты. Чаще всего заражение происходит в местах, где источники нечистот располагаются по берегам рек и озер. В некоторых случаях загрязнение может осуществляться при вывозе на лед содержимого уборных, которое после таяния льда попадает в воду. Также загрязнение может производится через сточные воды, осадки которых поступают из населенных пунктов, стоков животноводческих ферм, мест содержания животных.

Яйца гельминтов в почве

Яйца гельминтов также довольно часто выбирают местом обитания почву. Наиболее активное развитие яиц в почве осуществляется в весенне-летне-осенний сезон. Зимой они остаются жизнеспособными, особенно под снегом, но процесс их роста временно прекращается. При этом уровень загрязненности почвы и степень пораженности людей зависит от климатических, гидрологических и гигиенических условий в конкретной местности.

Гельминтозы

Гельминтозы – заболевания, которые вызываются паразитными червями. Для них характерно медленное развитие и протекание с хроническим течением и продолжительным восстановлением. Гельминтозы делятся на несколько видов, в том числе по месту паразитирования и типу червя, ставшего возбудителем заболевания. Также любой гельминтоз получает наименование, образующееся от латинского названия червя.

Причины появления гельминтозов

Нетрудно понять, что основная причина гельминтозов – это личинки и яйца паразитических червей, поражающие различные органы. Вид заболевания зависит от вызывающей его особи. Например, черви острицы вызывают энтеробиоз, а личинки свиного цепня – цистицеркоз.

Однако существуют и дополнительные факторы, создающие более благоприятные условия для попадания и развития паразитов в организме. К этим факторам можно отнести нарушения правил личной гигиены и обработки продуктов, в том числе питье некипяченой воды или молока; ослабленный иммунитет; заболевания пищеварительной системы.

Таким образом для профилактики гельминтозов следует выполнять несколько достаточно простых операций:

Следить за соблюдением правил гигиены;
Соблюдать санитарные нормы во время приготовления пищи;
Регулярно обследовать домашних питомцев в рамках профилактических мероприятий;
Тщательно обрабатывать свежие овощи, фрукты, зелень и мясо;
Отказаться от употребления рыбы в сыром виде.

Данные процедуры не гарантируют защиту от заболевания гельминтозами, однако исключат человеческий фактор.

Воздействие гельминтов на человеческий организм

Гельминты, известные как глисты, опасны тем, что могут осложнять имеющиеся хронические патологии, а также снижают иммунитет. В связи с этим есть риск появления более серьезных заболеваний или усложнения хода уже имеющихся.

Гельминтозы широко распространены у детей и оказывают негативное влияние на их физическое и психологическое развитие. Это связано с тем, что иммунитет детей не до конца сформирован и сильнее подвержен влиянию различных раздражителей. Также они постоянно контактируют со сверстниками и при этом пренебрегают правилами личной гигиены.

Человек может подвергаться развитию разных клинических синдромов:

Токсико-аллергический. Выражается в возможном заболевании лихорадкой, гепатитом и пневмонией.
Синдром местного поражения. Выявляется в виде симптомов нарушения работы пораженного паразитом органа.
Синдром нарушенного питания. Гельминты вызывают белковую недостаточность и нехватку витаминов, поедая питательные вещества.
Синдром иммуносупрессии. При его наличии организм становится более восприимчив к инфекциям.

Закрепившись в организме человека, гельминты могут выделять продукты обменных процессов, приводя тем самым к интоксикации. Паразиты обитают преимущественно в пищеварительной системе, оказывая негативное влияние на ее работу, а также могут находиться в дыхательной системе.

Определение яиц гельминтов

Диагностика на предмет наличия яиц и личинок гельминтов – сложный процесс, который требует использования профессионального оборудования и лабораторных методик. В случае с выявлением заболеваний применяется морфологическая диагностика, а также общеклинические и иммунологические исследования. Однако для выявления непосредственно паразитов в отобранной пробе воды или почвы эти варианты не подходят.

При отборе пробы почвы используется участок земли на глубине 10-20 сантиметров. На однотипном участке образцы собираются в 5-10 разных местах, при этом вес каждого составляет не более 20 грамм. Далее пробы объединяются в одну, общая масса которой составляет не менее 100 грамм. После этого образец отправляется в лабораторию.

Самым распространенным для определения гельминтов способом является проведение паразитологических исследований, которые позволяют обнаружить яйца, личинки или гельминтов в любой среде. Чаще всего его используют в рамках первичного обследования. Дополнительная диагностика может осуществляться после обнаружения паразитов. В связи с этим при подозрении на гельминтоз необходимо обратиться в медицинский центр.

В рамках исследований образец жидкости проходит через несколько этапов:

Исследуется под микроскопом с целью выявления яиц, личинок, червей или их частиц. Результат анализа можно назвать положительным, если в пробе обнаруживаются частицы паразитических организмов.
Далее по выявленным фрагментам устанавливается их принадлежность к определенному типу. Если это удается сделать, дополнительная диагностика не осуществляется.
Если определить вид паразита не представляется возможным, проводятся дополнительные обследования.

При паразитологических тестах пробы направляются в лабораторию три раза с интервалом в несколько дней. Это связано с тем с периодическим выделением яиц и личинок гельминтов.

Простейшие относятся к одноклеточным микроорганизмам. Они могут объединяться в колонии и относятся к особям, легко определяемым при проведении исследований. К основным функциям простейших относится перенесение цист и других форм, поражающих человека. Существует огромное количество данных микроорганизмов, наносящих вред организму. Они отличаются строением, спецификой поведения и местом расположения.

Причины появления цист простейших

Цисты патогенных кишечных простейших – промежуточный этап развития паразитов, наблюдающийся во время перехода от носителя к носителю. Это форма, которая находится в ожидании вплоть до заражения. При этом цисты приобретают оболочку, повышающую устойчивость к внешним раздражителям.

Существует несколько причин проникновения цист простейших в тело носителя и в большинстве случаев вина лежит на человеке. В частности, цисты попадают в организм с сырой водой, немытыми овощами, фруктами и неправильно приготовленным мясом. Также к распространенной причине относятся немытые руки. Способ заражения зависит от вида паразита, а также других факторов.

Цисты лямблии. Заражение этими организмами осуществляется несколькими путями, в том числе от домашних животных и через различные продукты.
Тканевые цисты токсоплазмы. Это своего рода споровые формы, проникающие в организм во время приема пищи – чаще всего речь идет о мясе. Есть риск занесения цист при переливании крови, если в процессе нарушаются санитарные нормы.
Циста балантидия. Оказывается в человеческом организме с пищей и посредством контакта с животными.
Цисты амебы. Преимущественно находятся в немытых овощах, фруктах и зелени. Их переносчиками во многих случаях являются насекомые, в частности, мухи и тараканы. Цисты отличаются устойчивостью к хлорированию, воздействию высоких температурных значений и низкому уровню влажности.
Цисты трихомонад. Заражение ими производится преимущественно воздушным путем.

Процесс заражения – не единственное действие, совершаемое цистами. В человеке они развиваются и растут, ослабляя иммунитет, вызывая различные осложнения, а также нарушая работу органов.

Какие заболевания могут вызвать паразиты?

Наименование и тип заболеваний, вызываемых простейшими, напрямую зависит от вида возбудителя. Существует несколько самих распространенных болезней, которые вызывают простейшие. Среди них можно выделить:

Лямблиоз. Эта болезнь провоцируется лямблиями и выражается высокой температурой, аллергической реакцией, увеличением лимфоузлов. Еще более опасны возможные лямблиоза, в том числе нарушения работы нервной системы, холецистит и увеличение размеров печени.
Токсоплазмоз. Болезнь вызывается паразитами токсоплазмы и в первую очередь резко повышает температуру тела до 39 °C. Также она выражается переходящей в мигрень головной болью, ухудшением и даже полной потерей зрения. У новорожденных токсоплазмоз вызывает отсталость в развитии, а в определенных сложных случаях может приводить к смертельным случаям.
Трихомониаз. Источником заболевания является трихомонада. К его проявлениям можно отнести жжение, сильный зуд и выделения. Развитие болезни может привести к простатиту у мужчин и бесплодию у женщин.
Амебиаз. Выражается активной жизнедеятельностью амеб в организме что вызывает дизентерию, расстройство пищеварения, нарушения работы головного мозга. Также может наблюдаться снижение эффективности работы иммунной системы.
Балантидиаз. Паразиты возбуждают заболевание язвенным колитом, геморроем и дизентерией.

Проведение анализов в медицинских учреждениях

Осуществление каких-либо проверок на цисты простейших дома невозможно, а без них не установить точный диагноз. Строго не рекомендуется ставить его самостоятельно, и тем более проводить дальнейшее лечение без обращения в клиники или аккредитованные лаборатории.

С целью выявления простейших при установлении диагноза проводятся следующие виды анализов:

Дуоденальное зондирование. Выполняется с задействованием специального зонда, при помощи которого берется материал желудочного сока и желчи.
Анализ кала. В рамках его проведения проверяются выделения на предмет присутствия разных форм паразитов. Для этого берется проба кала, в которую добавляется эфирный раствор. Образец помещается в центрифугу, после чего обработанную частицу кала делят на четыре части и изучают с помощью микроскопа.
Ректороманоскопия. Процедура проводится при наличии симптомов, свойственных деятельности паразитов. Для ее выполнения используется специальное устройство с металлической трубкой, аноскопом и лампочкой. С помощью данного оборудования производится осмотр посредством ввода трубки в анальное отверстие.

Лечение осуществляется только при подтверждении заражения паразитом, а также установления его класса и вида. Назначение препаратов и курса лечения – обязанность врача, не рекомендуется заниматься самолечением, используя доступную информацию из статей в газетах и интернете. Это связано с тем, что каждый микроорганизм может оказывать свое влияние и требует индивидуального подхода.

Основной задачей лечения является выведение простейших из организма. Во время прохождения выбранного врачом курса пациент находится под контролем медперсонала – он регулярно сдает пробы кала и другие анализы, а также проходит необходимые процедуры.

Анализ воды на содержание цист простейших

Современные методики позволяют обнаруживать цисты патогенных простейших кишечника не только при обследовании кала и использовании других видов анализов. Поиск цист может производиться в источниках централизованного водоснабжения, ручьях, колодцах, скважинах, а также системах коммунального водоснабжения. Проведение таких исследований позволяет снизить вероятность возникновения вышеперечисленных заболеваний и может применяться в качестве превентивной меры.

Одним из популярных способов является проведение мембранной фильтрации.

В ходе исследования определенный объем тестируемой воды пропускается через фильтры.
После этого производится смыв получаемого осадка, в котором предположительно находятся паразитарные агенты.
Далее после центрифугирования раствора флотанта, 4-кратно разводимого, проводится микроскопическое исследование осадка. Цисты патогенных простейших осаждаются благодаря резкому снижению его плотности.

Данный метод позволяет обнаруживать паразитарные патогены в случае содержания не менее одного экземпляра в 25 дм³ воды из водоисточников и в 50 дм³ питьевой воды.

Выживаемость цист в воде и почве зависит от их принадлежности к определенному типу. Так, цисты лямблий сохраняют жизнеспособность в воде от 15 до 70 дней, в то время как цисты амеб от 9 до 60 дней, в зависимости от ее типа. Это также следует учитывать при проведении лабораторных тестов.

Система социально-гигиенического мониторинга направлена на выявление причинно-следственных связей между состоянием здоровья населения и воздействием на него факторов среды обитания.

В системе санитарно – паразитологического мониторинга особая роль отведена определению качества сточных вод и их осадков по паразитологическим показателям, в связи с их эпидемиологической значимостью и влиянием на возможное загрязнение поверхностных водных объектов патогенами при сбросе стоков.

На очистных сооружениях канализации (ОСК) проводится надзор за качеством очистки стоков как со стороны Роспотребнадзора, так и при производственном контроле, обязательной составной частью которых являются санитарно - паразитологические исследования сточных вод, осадков и их оценка.

При осуществлении санитарно – паразитологических исследований одним из важных моментов является качественный отбор проб, обеспечивающий достоверность и репрезентативность результатов, проведение лабораторных санитарно – паразитологических исследований объектов окружающей среды. Результатам исследования должна быть дана оценка и заключение о соответствии (несоответствии) критериям по эпидемиологическим требованиям и нормативам, а также в системе санитарно - паразитологического мониторинга – выводы о возможном или фактическом влиянии на распространение паразитарного начала в окружающей среде и наличии риска заражения населения паразитозами.

Для выдачи заключения о соответствии (несоответствии) сточных вод и их осадков санитарно - эпидемиологическим требованиям, отбор проб, исследование ее образцов и оценку проводят в соответствии с действующими нормативно - методическими документами, представленными в таблице.

Рациональное использование нормативно-методической документации при осуществлении алгоритма отбора, исследования и оценки сточных вод и их осадков по паразитологическим показателям позволит обеспечить качество мониторинговых и контрольно - надзорных мероприятий при профилактике паразитарных болезней.

Читайте также: