Ифа набор по бруцеллезу

Обновлено: 28.03.2024

Курчева С.А. 1 Тюменцева И.С. 1 Афанасьев Е.Н. 1 Жданова Е.В. 1 Старцева О.Л. 1 Жарникова И.В. 1 Гаркуша Ю.Ю. 1 Семирчева А.А. 1

Анализ сравнительных данных об особенностях течения бруцеллеза позволяет утверждать, что бруцеллез у людей в последнее десятилетие приобрел менее манифестное течение, что затрудняет его диагностику. В таких случаях чрезвычайно актуальными остаются лабораторные методы исследования этой инфекции. Это подчеркивает необходимость совершенствования и разработки новых, более чувствительных и специфических диагностических средств, особенно предполагающих экспресс-тестирование и инструментальный учет результатов тестов. Разработана диагностическая тест-система для выявления специфических антител к возбудителю бруцеллеза в непрямом методе иммуноферментного анализа при исследовании биологического материала от людей и оптимизированы условия её постановки. Приведены результаты, свидетельствующие о достаточно высокой специфичности и чувствительности тест-системы, что позволяет предложить её для рутинной диагностики бруцеллеза в качестве дополнительного или альтернативного теста.


1. Афанасьев Е. Н. Сравнительная характеристика антигенной структуры бактерий рода Brucella: дис. … канд. мед. наук. – Ставрополь, 1983. – 173 с.

2. Конструирование тест-системы диагностической для выявления антител к возбудителю бруцеллеза в непрямом методе иммуноферментного анализа / С. А. Курчева, О. Л. Старцева, А. А. Семирчева, Э. В. Криницына // Актуальные проблемы эпидемиологии и профилактической медицины: материалы VI Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых и специалистов научно-исследовательских организаций Роспотребнадзора (22–24 октября 2014 г.), 2014. – С. 127–128.

4. Оценка иммунного статуса и дифференцированная иммунокоррекция при бруцеллезе / Г. М. Курманова, А. К. Дуйсенова, К. Б. Курманова, Н. Х. Спиричева // Методические рекомендации. – Алматы, 2002. – 30 с.

6. Тюменцева И. С., Афанасьев Е. Н., Ефременко В. И., Базиков И. А., Алиева Е. В. Способ получения диагностической сыворотки // Патент на изобретение № 2135210. – 1999.

Бруцеллез – бактериальная инфекционно-аллергическая болезнь, относящаяся к группе зоонозов и занимающая особое положение среди других инфекционных болезней из-за своеобразия возбудителя. Этиопатогенетические особенности бруцеллеза определяют большую склонность заболевания к хроническому течению с длительной персистенцией патогена. Фактор времени не играет абсолютной роли в определении формы или стадии болезни, так острый процесс может развиваться на фоне латентного бруцеллеза, а хроническое течение может развиваться с самого начала болезни. Как правило, после консультации инфекциониста для исключения возможного бруцеллеза кровь пациента тестируют только в реакциях Хеддельсона и Райта, обладающих, по информации ряда авторов, невысокой чувствительностью (35–64 %). Из современных серологических методов диагностики бруцеллеза иммуноферментный анализ (ИФА) является наиболее доступным и распространенным [2, 3, 4]. Явные преимущества этого теста – простота и быстрота выполнения, высокая чувствительность, стабильность реагентов, возможность количественного учета реакции, обработка большого количества проб, автоматизация процесса и объективность инструментального учета результатов [5]. Метод иммуноферментного анализа находится в постоянном развитии. С одной стороны, расширяется число объектов исследования, с другой – углубляются и совершенствуются методы самого анализа [7]. Специфичность и чувствительность ИФА зависит от качества используемых иммунореагентов и оптимизации постановки теста.

Целью настоящей работы стало изучение возможности выявления антител в сыворотках крови людей при хроническом течении бруцеллеза в иммуноферментном анализе.

Проведя анализ полученных результатов, нами была сконструирована экспериментальная тест-система диагностическая для выявления специфических антител в сыворотках крови больных острым и хроническим бруцеллезом в непрямом методе постановки иммуноферментного анализа (нИФА).

Материалы и методы

В качестве сенсибилизирующего агента был апробирован поливалентный бруцеллезный водорастворимый антиген (Аг-в/р), извлеченный по методу Е. Н. Афанасьева из смеси бакмасс Brucella (B.)abortus19ABB. melitensisRev-1, B. suis61, обеззараженных охлажденным до минус 20 оС ацетоном [1].

Конъюгацию кроличьих Ат против Ig G человека с индикаторным ферментом – пероксидазой хрена (ПХ) (тип VI-А, Rz: ~3.0 с активностью 1550 units/mg (Sigma)) проводили по методу перйодатного окисления по P. K. Nakane, A. Kawaoi (1974) в модификации M. B. Wilson, P. K. Nakane (1978).

ОПкрит. = ОПср К- + 0,2 (1),

где ОПсрК- – среднее значение ОП для отрицательного контрольного образца.

Для интерпретации результатов исследования применяли коэффициент позитивности (КП):

КП = ОПиссл. сыв./ ОПкрит. (2).

КП ≥ 1,0 – результат положительный.

Для определения диагностической ценности сконструированной тест-системы использовали сыворотки крови больных и здоровых людей.

Результаты и обсуждение

Основные параметры ИФА, а именно чувствительность, точность и воспроизводимость, могут существенно изменяться при варьировании условий проведения эксперимента (температура, ионная сила и рН реакционной среды, концентрационные соотношения компонентов и продолжительность их взаимодействия). Это определяет необходимость оптимизации каждой стадии анализа, для чего использовали эмпирический подбор параметров постановки теста.

При создании диагностического теста важным моментом является определение его антигенной композиции и условий адсорбции на твердой фазе, т. е. установление оптимальной концентрации антигена (Аг), состава сенсибилизирующего буфера, условий отмывания не связавшихся компонентов, времени и температуры связывания Аг с поверхностью полистироловых планшетов. Оптимальную сенсибилизирующую дозу бактериального агента определяли в серии опытов с сыворотками крови больных бруцеллезом и здоровых людей против иммуноглобулинового пероксидазного коньюгата. В экспериментах испытывали различные концентрации Аг в интервале 10÷300 мкг/мл. Процесс адсорбции Аг оценивали по интенсивности реакции с контрольными сыворотками крови людей. Наиболее оптимальный уровень насыщения поверхности планшет достигался при концентрации белка, равной 100 мкг/мл, при этом сыворотки здоровых людей реагировали отрицательно.

Для определения оптимальных условий сенсибилизации планшета Аг-в/р оценивали интенсивность реакции при инкубации в термостате (37±1) °С в течение (3, 2, 1 ч) и с использованием термошейкера при той же температуре (250 об./мин), а также 18 ч при температуре 4 °С (рисунок 1). Установлен оптимальный режим – при температуре 37 °С в течение 2 ч или в условиях термошейкера в течение 1 ч, в то время как при остальных значениях выдержки адсорбционная способность Аг-в/р, а также специфичность реакции несколько ниже. Инкубация при температуре 4 оС возможна при определенных условиях расчета времени постановки реакции без потери чувствительности и специфичности.


Рис.1. Зависимость КП от изменения условий инкубации

Далее были изучены особенности взаимодействия опытных сывороток крови с иммобилизованным на поверхности полистирола специфическим Аг-в/р с в интервале от 15 до 90 мин при температуре 37 оС и иммунопероксидазным конъюгатом (15; 30 и 40 мин). Как показано на графике (рисунок 2), оптимальное время инкубации сывороток – 60 мин, аинкубацию иммунопероксидазного конъюгата – 30 мин. В более короткий срок – не происходит эффективного взаимодействия компонентов реакции, а увеличение продолжительности инкубации не только удлиняет время постановки реакции, но и способствует появлению фонового окрашивания.


Рис. 2. Зависимость показаний КП от времени инкубации сыворотки и иммуноглобулинового пероксидазного конъюгата

Важным для проведения ИФА является определение кинетики связывания и концентрации пероксидазного конъюгата. В опытах максимальные значения были констатированы при рабочем разведении конъюгата 1:3000 при его взаимодействии с испытуемыми сыворотками – 30 минут при температуре 37 оС.

При испытании чувствительности тест-системы использовали различные разведения (от 1:10 до 1:100) сывороток крови больных острым и хроническим бруцеллезом, которые вносили в лунки планшет сенсибилизированных Аг-в/р. Постановка реакции осуществлялась согласно отработанным параметрам. Чувствительность выявления специфических антител оценивали по средней величине КП. Среднее значение КП при разведении сыворотки 1:10 составляет 2,140±0,129 при разведении сыворотки 1:100 – 2,658±0,221. Число степеней свободы (f) = 13. Парный t-критерий Стьюдента = 3689. Критическое значение t-критерия Стьюдента при данном числе степеней свободы составляет 2,16. tнабл. >tкрит., изменения признака статистически значимы (р<0,05).


Рис. 3. Зависимость показаний коэффициента позитивности от разведения сыворотки

Проведенные исследования позволили сконструировать диагностический набор реагентов тест-систему диагностическую для выявления антител к возбудителю бруцеллеза в нИФА (экспериментальные серии). В состав набора входят следующие компоненты: положительный контроль (инактивированный) – 1 ампула (0,1 мл); конъюгатпероксидазныйиммуноглобулиновый сухой – 1 ампула (0,1 мл); антиген бруцеллезного микроба (полигрупповой) в концентрации 10,0 мг/мл сухой 1 ампула (0,25 мл); фосфатно-солевой буфер (ФСБ), сухая навеска – 1 флакон; бычий сывороточный альбумин (БСА), сухая навеска – 1 флакон; твин 20 – 1 флакон; тетраметилбензидин (ТМБ) – 2 флакона; 4 N раствор серной кислоты (стоп-реагент) – 1 флакон; планшет полистироловый для ИФА однократного применения с объемом лунки 0,4 мл – 1 шт.; скарификатор дисковый ампульный керамический – 1 шт.

Способность тест-системы выявлять антитела к возбудителю бруцеллеза при различных формах заболевания была показана в нИФА с 24 сыворотками больных бруцеллезом людей (рисунок 4). Значения КП при острой форме бруцелеза в основном более 2,0 (средняя арифметическая – 2,86±0,22), при хронической форме значения лежат в диапазоне от 1,0 до 2,0 (средняя арифметическая – 1,53±0,10). Значения t-критерия Стьюдента: 5,50. Различия статистически значимы (р<0,05). Число степеней свободы f=23. Критическое значение t-критерия Стьюдента = 2,069.


Рис. 4. Значения КП при различных формах бруцеллеза (1–10 – сыворотки крови больных хронической формой бруцеллеза; 11–24 – сыворотки крови больных острой формой)

При испытании разработанная тест-система позволяла выявлять антитела к возбудителю бруцеллеза при различных формах заболевания. При этом отмечали отрицательную реакцию с сыворотками крови здоровых людей.

В результате проведенных исследований разработана тест-система для выявления специфических антител к возбудителю бруцеллеза на основе непрямого метода иммуноферментного анализа.

Установлены оптимальные параметры и условия постановки ИФА с разработанной тест-системой: сенсибилизация планшет раствором поливалентного бруцеллезного водорастворимого Аг в 0,1М ФСБ, рН 7,2±0,2 с концентрацией белка 100 мкг/мл в течение 2 ч при температуре 37 °С или 1 ч в условиях термошейкера (250 об/мин; 37 оС); блокировка свободных сайтов связывания – буферным растворомс 0,1 % БСА в присутствии неионного детергентадо 0,05 %; взаимодействие сывороток со специфическим Аг – 60 мин при 37 °С; время экспозиции с иммунопероксидазным конъюгатом – 30 мин при температуре 37 °С.

Таким образом, результатом проведенных исследований стала разработка тест-системы для выявления специфических антител к возбудителю бруцеллеза, позволяющая в течение 3–4 часов (включая предварительную сенсибилизацию) определить наличие их антител в сыворотках крови больных острой и хронической формой бруцеллеза.

В результате испытаний установлены высокая активность и специфичность тест-систем для выявления специфических антител к возбудителю бруцеллеза в сыворотках крови людей, что позволяет предложить их в качестве альтернативного теста в лабораторной диагностике бруцеллеза.

Специфические антитела к возбудителю бруцеллёза, свидетельствующие о текущей или перенесённой в прошлом инфекции.

Бруцеллез (лат. Brucellosis) – бактериальная инфекционно-аллергическая болезнь, относящаяся к группе зоонозов, которая характеризуется интоксикацией и преимущественным поражением опорно-двигательного аппарата, нервной, сердечно-сосудистой, мочеполовой и ретикулоэндотелиальной систем; затяжным течением (с обострениями и ремиссиями), приводящим, как правило, к инвалидизации. Заболевание обладает высокой потенциальной возможностью перехода в хроническую форму.

Возбудитель бруцеллеза относится к роду Brucella, включающему девять самостоятельных видов. Все они патогенны для человека, но эпидемиологическую значимость имеют четыре вида:

  • B. melitensis вызывает заболевание коз и овец,
  • B. abortus – крупного рогатого скота,
  • B. suis – свиней,
  • B. canis – собак.

С наиболее вирулентной для человека B. melitensis связаны эпидемические вспышки бруцеллеза, протекающего в тяжелой форме, тогда как инфицирование видами B. abortus, B. suis или B. canis, как правило, приводит к спорадическим случаям клинически выраженного заболевания.

Главными источниками заражения человека бруцеллезом являются больные овцы, козы, крупный рогатый скот, свиньи, в некоторых случаях лошади, верблюды, яки, собаки. Факторами передачи инфекции людям от больного животного служат сырье животного происхождения (шерсть, пух, шкуры), сырые молочные продукты (молоко, кумыс, сливки, масло, творог, сыр, брынза и пр.), реже мясо, а также инфицированные предметы ухода за животными. Основными путями заражения человека бруцеллезом являются контактный, алиментарный и аэрогенный.

Бруцеллез входит в группу особо опасных инфекций, его возбудитель обладает высокой инвазивностью и низкой инфицирующей дозой (от 10 до 100 микробных тел). Бруцеллы являются внутриклеточным паразитом, способным проникать и размножаться в различных типах клеток, преимущественно репликация этого патогена происходит в полиморфно-ядерных лимфоцитах и макрофагах.

Бруцеллезная инфекция может поражать любую систему или орган человека, имеет широкий спектр клинических проявлений, при этом симптомы заболевания значительно варьируют в зависимости от характера его течения и длительности. Клинически выраженные формы бруцеллеза сопровождаются длительной лихорадкой, ознобами, повышенной потливостью, лимфоаденопатией, увеличением печени и селезенки, поражением опорно-двигательного аппарата, нервной, сердечно-сосудистой, урогенитальной и других систем организма. При латентном и субклиническом течении заболевания некоторые из этих симптомов могут быть выявлены лишь при тщательном обследовании пациента.

Гуморальный иммунный ответ, развивающийся при бруцеллезе, не обеспечивает у большинства больных элиминации возбудителя инфекции из организма. Ведущее значение в иммунной защите человека от бруцеллеза играет клеточный иммунитет. Размножение бруцелл в организме и их фагоцитоз клетками ретикулоэндотелиальной системы стимулируют выработку специфических антител.

Через неделю после развития заболевания в крови пациентов появляются иммуноглобулины класса М (IgM), концентрация которых достигает максимальных значений в течение первых нескольких недель, а затем постепенно снижается. Выявление специфических IgМ может свидетельствовать об острой стадии бруцеллеза либо о повторном заражении переболевшего человека. На 2−3-й неделе заболевания начинают обнаруживаться сывороточные IgG к антигенам бруцелл, немногим позже − IgА. Для хронического бруцеллеза характерно отсутствие специфических IgМ, тогда как в крови больных возможна циркуляция IgА и IgG или одного из них.

Особенностью постинфекционного иммунитета является слабая напряженность и быстрое угасание, в результате которого организм человека, перенесшего бруцеллез, остается восприимчивым к повторному заражению, которое регистрируется в 2−7 % случаев.

Из современных серологических методов диагностики бруцеллеза наиболее доступным и распространенным является иммуноферментный анализ, обладающий высокой чувствительностью и специфичностью.

Специальная подготовка не требуется. Рекомендуется взятие крови не ранее чем через 4 часа после последнего приема пищи.

  • подозрение на бруцеллёз. Заболевание сопровождается характерной клинической картиной, в анамнезе употребление сырого козьего молока.
  • обследование лиц с клиническими проявлениями в районах эндемичных по бруцеллёзу.
  • обследование работников животноводства и предприятий, перерабатывающих животные продукты.

Интерпретация результатов исследований содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т.д.

  • отрицательно;
  • сомнительно, рекомендуется повторить исследование через 2-3 недели;
  • положительно При положительном результате выдается значение коэффициента позитивности.*

* Коэффициент позитивности (КП) - это отношение оптической плотности пробы пациента к пороговому значению. КП - коэффициент позитивности является универсальным показателем, применяемым в качественных иммуноферментных тестах. КП характеризует степень позитивности исследуемой пробы и может быть полезен врачу для правильной интерпретации полученного результата. Поскольку коэффициент позитивности не коррелирует линейно с концентрацией антител в пробе, не рекомендуется использовать КП для динамического наблюдения за пациентами, в том числе контроля эффективности лечения.



Indirect ELISA (sera/plasma)
(файл .pdf)


Indirect ELISA (Milk)
(файл .pdf)


Competitive ELISA (sera/plasma)
(файл .pdf)


Экспресс тест, кассета (цельная кровь, сыворотка/плазма, молоко)
(файл .pdf)


Экспресс тест, полоска - стик (цельная кровь сыворотка/плазма, молоко)
(файл .pdf)


Инструкция по использованию набора для выявления антител к Brucella spp
(файл .pdf)

Скрининговый тест: рекомендуется для поголовья с низкой распространенностью заболеваемости в сочетании с подтверждающими тестами.

СПЕЦИФИКАЦИЯ

Метод непрямой иммуноферментный анализ
Виды животных жвачные, свиньи
Образцы сыворотка или плазма крови
Антиген очищенный ЛПС Brucella abortus антиген
Коньюгат
HRP - рекомбинантный белок G (х100)
Время анализа 130 минут

ИНФОРМАЦИЯ ДЛЯ ЗАКАЗА

Код LT-E-BRU-01 LT-E-BRU-02 LT-E-BRU-05 LT-E-BRU-10
Формат
1 планшет
2 планшета
5 планшет 10 планшет
Кол-во анализов*
96
192
480
960

*включая лунки для контролей.

Подтверждающий тест: рекомендуется для поголовья с высокой распространенностью заболеваемости или в сочетании со скрининговыми тестами.

СПЕЦИФИКАЦИЯ

Метод конкурентный иммуноферментный анализ
Виды животных жвачные, свиньи
Образцы отдельные образцы сыворотки/плазмы крови или пулы до 10 образцов
Антиген очищенный ЛПС Brucella abortus антиген
Коньюгат
HRP - mAb к ЛПС Brucella abortus антигену (х100)
Время анализа 80 минут

ИНФОРМАЦИЯ ДЛЯ ЗАКАЗА

Код LT-Eс-BRU-01 LT-Eс-BRU-02 LT-Eс-BRU-05 LT-Eс-BRU-10
Формат
1 планшет
2 планшета
5 планшет 10 планшет
Кол-во анализов* 96 192 480 960

*включая лунки для контролей.

Скрининговый тест: рекомендуется для поголовья с низкой распространенностью заболеваемости в сочетании с подтверждающими тестами.

СПЕЦИФИКАЦИЯ

Метод непрямой иммуноферментный анализ
Виды животных жвачные, свиньи
Образцы отдельные образцы молока или пулы до 10 образцов
Антиген очищенный ЛПС Brucella abortus антиген
Коньюгат
HRP - рекомбинантный белок G (х100)
Время анализа 130 минут

ИНФОРМАЦИЯ ДЛЯ ЗАКАЗА

Код LT-Eм-BRU-01 LT-Eм-BRU-02 LT-Eм-BRU-05 LT-Eм-BRU-10
Формат
1 планшет
2 планшета
5 планшет 10 планшет
Кол-во анализов*
96
192
480
960

*включая лунки для контролей.

Скрининговый тест: рекомендуется для поголовья с низкой распространенностью заболеваемости в сочетании с подтверждающими тестами.

Бруцеллез (лат. Brucellosis) – бактериальная инфекционно-аллергическая болезнь, относящаяся к группе зоонозов, которая характеризуется интоксикацией и преимущественным поражением опорно-двигательного аппарата, нервной, сердечно-сосудистой, мочеполовой и ретикулоэндотелиальной систем; затяжным течением (с обострениями и ремиссиями), приводящим, как правило, к инвалидизации. Заболевание обладает высокой потенциальной возможностью перехода в хроническую форму.

Возбудитель бруцеллеза относится к роду Brucella, включающему девять самостоятельных видов. Все они патогенны для человека, но эпидемиологическую значимость имеют четыре вида:

  • B. melitensis вызывает заболевание коз и овец,
  • B. abortus – крупного рогатого скота,
  • B. suis – свиней,
  • B. canis – собак.

С наиболее вирулентной для человека B. melitensis связаны эпидемические вспышки бруцеллеза, протекающего в тяжелой форме, тогда как инфицирование видами B. abortus, B. suis или B. canis, как правило, приводит к спорадическим случаям клинически выраженного заболевания.

Главными источниками заражения человека бруцеллезом являются больные овцы, козы, крупный рогатый скот, свиньи, в некоторых случаях лошади, верблюды, яки, собаки. Факторами передачи инфекции людям от больного животного служат сырье животного происхождения (шерсть, пух, шкуры), сырые молочные продукты (молоко, кумыс, сливки, масло, творог, сыр, брынза и пр.), реже мясо, а также инфицированные предметы ухода за животными. Основными путями заражения человека бруцеллезом являются контактный, алиментарный и аэрогенный.

Бруцеллез входит в группу особо опасных инфекций, его возбудитель обладает высокой инвазивностью и низкой инфицирующей дозой (от 10 до 100 микробных тел). Бруцеллы являются внутриклеточным паразитом, способным проникать и размножаться в различных типах клеток, преимущественно репликация этого патогена происходит в полиморфно-ядерных лимфоцитах и макрофагах.

Бруцеллезная инфекция может поражать любую систему или орган человека, имеет широкий спектр клинических проявлений, при этом симптомы заболевания значительно варьируют в зависимости от характера его течения и длительности. Клинически выраженные формы бруцеллеза сопровождаются длительной лихорадкой, ознобами, повышенной потливостью, лимфоаденопатией, увеличением печени и селезенки, поражением опорно-двигательного аппарата, нервной, сердечно-сосудистой, урогенитальной и других систем организма. При латентном и субклиническом течении заболевания некоторые из этих симптомов могут быть выявлены лишь при тщательном обследовании пациента.

Гуморальный иммунный ответ, развивающийся при бруцеллезе, не обеспечивает у большинства больных элиминации возбудителя инфекции из организма. Ведущее значение в иммунной защите человека от бруцеллеза играет клеточный иммунитет. Размножение бруцелл в организме и их фагоцитоз клетками ретикулоэндотелиальной системы стимулируют выработку специфических антител.

Через неделю после развития заболевания в крови пациентов появляются иммуноглобулины класса М (IgM), концентрация которых достигает максимальных значений в течение первых нескольких недель, а затем постепенно снижается. Выявление специфических IgМ может свидетельствовать об острой стадии бруцеллеза либо о повторном заражении переболевшего человека. На 2−3-й неделе заболевания начинают обнаруживаться сывороточные IgG к антигенам бруцелл, немногим позже − IgА. Для хронического бруцеллеза характерно отсутствие специфических IgМ, тогда как в крови больных возможна циркуляция IgА и IgG или одного из них.

Особенностью постинфекционного иммунитета является слабая напряженность и быстрое угасание, в результате которого организм человека, перенесшего бруцеллез, остается восприимчивым к повторному заражению, которое регистрируется в 2−7 % случаев.

Из современных серологических методов диагностики бруцеллеза наиболее доступным и распространенным является иммуноферментный анализ, обладающий высокой чувствительностью и специфичностью.

Специальная подготовка не требуется. Рекомендуется взятие крови не ранее чем через 4 часа после последнего приема пищи.

  • подозрение на бруцеллёз. Заболевание сопровождается характерной клинической картиной, в анамнезе употребление сырого козьего молока.
  • обследование лиц с клиническими проявлениями в районах эндемичных по бруцеллёзу.
  • обследование работников животноводства и предприятий, перерабатывающих животные продукты.

Интерпретация результатов исследований содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т.д.

Курчева С.А. 1 Тюменцева И.С. 1 Афанасьев Е.Н. 1 Жданова Е.В. 1 Старцева О.Л. 1 Жарникова И.В. 1 Гаркуша Ю.Ю. 1 Семирчева А.А. 1

Анализ сравнительных данных об особенностях течения бруцеллеза позволяет утверждать, что бруцеллез у людей в последнее десятилетие приобрел менее манифестное течение, что затрудняет его диагностику. В таких случаях чрезвычайно актуальными остаются лабораторные методы исследования этой инфекции. Это подчеркивает необходимость совершенствования и разработки новых, более чувствительных и специфических диагностических средств, особенно предполагающих экспресс-тестирование и инструментальный учет результатов тестов. Разработана диагностическая тест-система для выявления специфических антител к возбудителю бруцеллеза в непрямом методе иммуноферментного анализа при исследовании биологического материала от людей и оптимизированы условия её постановки. Приведены результаты, свидетельствующие о достаточно высокой специфичности и чувствительности тест-системы, что позволяет предложить её для рутинной диагностики бруцеллеза в качестве дополнительного или альтернативного теста.


1. Афанасьев Е. Н. Сравнительная характеристика антигенной структуры бактерий рода Brucella: дис. … канд. мед. наук. – Ставрополь, 1983. – 173 с.

2. Конструирование тест-системы диагностической для выявления антител к возбудителю бруцеллеза в непрямом методе иммуноферментного анализа / С. А. Курчева, О. Л. Старцева, А. А. Семирчева, Э. В. Криницына // Актуальные проблемы эпидемиологии и профилактической медицины: материалы VI Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых и специалистов научно-исследовательских организаций Роспотребнадзора (22–24 октября 2014 г.), 2014. – С. 127–128.

4. Оценка иммунного статуса и дифференцированная иммунокоррекция при бруцеллезе / Г. М. Курманова, А. К. Дуйсенова, К. Б. Курманова, Н. Х. Спиричева // Методические рекомендации. – Алматы, 2002. – 30 с.

6. Тюменцева И. С., Афанасьев Е. Н., Ефременко В. И., Базиков И. А., Алиева Е. В. Способ получения диагностической сыворотки // Патент на изобретение № 2135210. – 1999.

Бруцеллез – бактериальная инфекционно-аллергическая болезнь, относящаяся к группе зоонозов и занимающая особое положение среди других инфекционных болезней из-за своеобразия возбудителя. Этиопатогенетические особенности бруцеллеза определяют большую склонность заболевания к хроническому течению с длительной персистенцией патогена. Фактор времени не играет абсолютной роли в определении формы или стадии болезни, так острый процесс может развиваться на фоне латентного бруцеллеза, а хроническое течение может развиваться с самого начала болезни. Как правило, после консультации инфекциониста для исключения возможного бруцеллеза кровь пациента тестируют только в реакциях Хеддельсона и Райта, обладающих, по информации ряда авторов, невысокой чувствительностью (35–64 %). Из современных серологических методов диагностики бруцеллеза иммуноферментный анализ (ИФА) является наиболее доступным и распространенным [2, 3, 4]. Явные преимущества этого теста – простота и быстрота выполнения, высокая чувствительность, стабильность реагентов, возможность количественного учета реакции, обработка большого количества проб, автоматизация процесса и объективность инструментального учета результатов [5]. Метод иммуноферментного анализа находится в постоянном развитии. С одной стороны, расширяется число объектов исследования, с другой – углубляются и совершенствуются методы самого анализа [7]. Специфичность и чувствительность ИФА зависит от качества используемых иммунореагентов и оптимизации постановки теста.

Целью настоящей работы стало изучение возможности выявления антител в сыворотках крови людей при хроническом течении бруцеллеза в иммуноферментном анализе.

Проведя анализ полученных результатов, нами была сконструирована экспериментальная тест-система диагностическая для выявления специфических антител в сыворотках крови больных острым и хроническим бруцеллезом в непрямом методе постановки иммуноферментного анализа (нИФА).

Материалы и методы

В качестве сенсибилизирующего агента был апробирован поливалентный бруцеллезный водорастворимый антиген (Аг-в/р), извлеченный по методу Е. Н. Афанасьева из смеси бакмасс Brucella (B.)abortus19ABB. melitensisRev-1, B. suis61, обеззараженных охлажденным до минус 20 оС ацетоном [1].

Конъюгацию кроличьих Ат против Ig G человека с индикаторным ферментом – пероксидазой хрена (ПХ) (тип VI-А, Rz: ~3.0 с активностью 1550 units/mg (Sigma)) проводили по методу перйодатного окисления по P. K. Nakane, A. Kawaoi (1974) в модификации M. B. Wilson, P. K. Nakane (1978).

ОПкрит. = ОПср К- + 0,2 (1),

где ОПсрК- – среднее значение ОП для отрицательного контрольного образца.

Для интерпретации результатов исследования применяли коэффициент позитивности (КП):

КП = ОПиссл. сыв./ ОПкрит. (2).

КП ≥ 1,0 – результат положительный.

Для определения диагностической ценности сконструированной тест-системы использовали сыворотки крови больных и здоровых людей.

Результаты и обсуждение

Основные параметры ИФА, а именно чувствительность, точность и воспроизводимость, могут существенно изменяться при варьировании условий проведения эксперимента (температура, ионная сила и рН реакционной среды, концентрационные соотношения компонентов и продолжительность их взаимодействия). Это определяет необходимость оптимизации каждой стадии анализа, для чего использовали эмпирический подбор параметров постановки теста.

При создании диагностического теста важным моментом является определение его антигенной композиции и условий адсорбции на твердой фазе, т. е. установление оптимальной концентрации антигена (Аг), состава сенсибилизирующего буфера, условий отмывания не связавшихся компонентов, времени и температуры связывания Аг с поверхностью полистироловых планшетов. Оптимальную сенсибилизирующую дозу бактериального агента определяли в серии опытов с сыворотками крови больных бруцеллезом и здоровых людей против иммуноглобулинового пероксидазного коньюгата. В экспериментах испытывали различные концентрации Аг в интервале 10÷300 мкг/мл. Процесс адсорбции Аг оценивали по интенсивности реакции с контрольными сыворотками крови людей. Наиболее оптимальный уровень насыщения поверхности планшет достигался при концентрации белка, равной 100 мкг/мл, при этом сыворотки здоровых людей реагировали отрицательно.

Для определения оптимальных условий сенсибилизации планшета Аг-в/р оценивали интенсивность реакции при инкубации в термостате (37±1) °С в течение (3, 2, 1 ч) и с использованием термошейкера при той же температуре (250 об./мин), а также 18 ч при температуре 4 °С (рисунок 1). Установлен оптимальный режим – при температуре 37 °С в течение 2 ч или в условиях термошейкера в течение 1 ч, в то время как при остальных значениях выдержки адсорбционная способность Аг-в/р, а также специфичность реакции несколько ниже. Инкубация при температуре 4 оС возможна при определенных условиях расчета времени постановки реакции без потери чувствительности и специфичности.


Рис.1. Зависимость КП от изменения условий инкубации

Далее были изучены особенности взаимодействия опытных сывороток крови с иммобилизованным на поверхности полистирола специфическим Аг-в/р с в интервале от 15 до 90 мин при температуре 37 оС и иммунопероксидазным конъюгатом (15; 30 и 40 мин). Как показано на графике (рисунок 2), оптимальное время инкубации сывороток – 60 мин, аинкубацию иммунопероксидазного конъюгата – 30 мин. В более короткий срок – не происходит эффективного взаимодействия компонентов реакции, а увеличение продолжительности инкубации не только удлиняет время постановки реакции, но и способствует появлению фонового окрашивания.


Рис. 2. Зависимость показаний КП от времени инкубации сыворотки и иммуноглобулинового пероксидазного конъюгата

Важным для проведения ИФА является определение кинетики связывания и концентрации пероксидазного конъюгата. В опытах максимальные значения были констатированы при рабочем разведении конъюгата 1:3000 при его взаимодействии с испытуемыми сыворотками – 30 минут при температуре 37 оС.

При испытании чувствительности тест-системы использовали различные разведения (от 1:10 до 1:100) сывороток крови больных острым и хроническим бруцеллезом, которые вносили в лунки планшет сенсибилизированных Аг-в/р. Постановка реакции осуществлялась согласно отработанным параметрам. Чувствительность выявления специфических антител оценивали по средней величине КП. Среднее значение КП при разведении сыворотки 1:10 составляет 2,140±0,129 при разведении сыворотки 1:100 – 2,658±0,221. Число степеней свободы (f) = 13. Парный t-критерий Стьюдента = 3689. Критическое значение t-критерия Стьюдента при данном числе степеней свободы составляет 2,16. tнабл. >tкрит., изменения признака статистически значимы (р<0,05).


Рис. 3. Зависимость показаний коэффициента позитивности от разведения сыворотки

Проведенные исследования позволили сконструировать диагностический набор реагентов тест-систему диагностическую для выявления антител к возбудителю бруцеллеза в нИФА (экспериментальные серии). В состав набора входят следующие компоненты: положительный контроль (инактивированный) – 1 ампула (0,1 мл); конъюгатпероксидазныйиммуноглобулиновый сухой – 1 ампула (0,1 мл); антиген бруцеллезного микроба (полигрупповой) в концентрации 10,0 мг/мл сухой 1 ампула (0,25 мл); фосфатно-солевой буфер (ФСБ), сухая навеска – 1 флакон; бычий сывороточный альбумин (БСА), сухая навеска – 1 флакон; твин 20 – 1 флакон; тетраметилбензидин (ТМБ) – 2 флакона; 4 N раствор серной кислоты (стоп-реагент) – 1 флакон; планшет полистироловый для ИФА однократного применения с объемом лунки 0,4 мл – 1 шт.; скарификатор дисковый ампульный керамический – 1 шт.

Способность тест-системы выявлять антитела к возбудителю бруцеллеза при различных формах заболевания была показана в нИФА с 24 сыворотками больных бруцеллезом людей (рисунок 4). Значения КП при острой форме бруцелеза в основном более 2,0 (средняя арифметическая – 2,86±0,22), при хронической форме значения лежат в диапазоне от 1,0 до 2,0 (средняя арифметическая – 1,53±0,10). Значения t-критерия Стьюдента: 5,50. Различия статистически значимы (р<0,05). Число степеней свободы f=23. Критическое значение t-критерия Стьюдента = 2,069.


Рис. 4. Значения КП при различных формах бруцеллеза (1–10 – сыворотки крови больных хронической формой бруцеллеза; 11–24 – сыворотки крови больных острой формой)

При испытании разработанная тест-система позволяла выявлять антитела к возбудителю бруцеллеза при различных формах заболевания. При этом отмечали отрицательную реакцию с сыворотками крови здоровых людей.

В результате проведенных исследований разработана тест-система для выявления специфических антител к возбудителю бруцеллеза на основе непрямого метода иммуноферментного анализа.

Установлены оптимальные параметры и условия постановки ИФА с разработанной тест-системой: сенсибилизация планшет раствором поливалентного бруцеллезного водорастворимого Аг в 0,1М ФСБ, рН 7,2±0,2 с концентрацией белка 100 мкг/мл в течение 2 ч при температуре 37 °С или 1 ч в условиях термошейкера (250 об/мин; 37 оС); блокировка свободных сайтов связывания – буферным растворомс 0,1 % БСА в присутствии неионного детергентадо 0,05 %; взаимодействие сывороток со специфическим Аг – 60 мин при 37 °С; время экспозиции с иммунопероксидазным конъюгатом – 30 мин при температуре 37 °С.

Таким образом, результатом проведенных исследований стала разработка тест-системы для выявления специфических антител к возбудителю бруцеллеза, позволяющая в течение 3–4 часов (включая предварительную сенсибилизацию) определить наличие их антител в сыворотках крови больных острой и хронической формой бруцеллеза.

В результате испытаний установлены высокая активность и специфичность тест-систем для выявления специфических антител к возбудителю бруцеллеза в сыворотках крови людей, что позволяет предложить их в качестве альтернативного теста в лабораторной диагностике бруцеллеза.

Читайте также: