Очаги туляремии в казахстане

Обновлено: 28.03.2024

Ключевые слова

Об авторах

Список литературы

2. Dryselius R., Hjertqvist M., Mäkitalo S., Lindblom A., Lilja T., Eklöf D., Lindström A. Large outbreak of tularaemia, central Sweden, July to September 2019. Euro Surveill. 2019; 24(42):pii=1900603. DOI: 10.2807/1560-7917.ES.2019.24.42.1900603.

3. Rossow H., Ollgren J., Hytönen J., Rissanen H., Huitu O., Henttonen H., Kuusi M., Vapalahti O. Incidence and seroprevalence of tularaemia in Finland, 1995 to 2013: regional epidemics with cyclic pattern. Euro Surveill. 2015; 20(33):pii=21209. DOI: 10.2807/1560- 7917.es2015.20.33.21209.

4. Rossow H., Ollgren J., Klemets P., Pietarinen I., Saikku J., Pekkanen E., Nikkari S., Syrjälä H., Kuusi M., Nuorti J.P. Risk factors for pneumonic and ulceroglandular tularaemia in Finland: a population-based case-control study. Epidemiol. Infect. 2014; 142(10):2207–16. DOI: 10.1017/S0950268813002999.

5. Larssen KW, Afset JE, Heier BT, Krogh T, Handeland K, Vikøren T, Bergh K. Outbreak of tularaemia in central Norway, January to March 2011. Euro Surveill. 2011;16(13):pii=19828

6. Afset J.E., Larssen K.W., Bergh K., Lärkeryd A., Sjödin A., Johansson A., Forsman M. Phylogeographical pattern of Francisella tularensis in a nationwide outbreak of tularaemia in Norway, 2011. Euro Surveill. 2015; 20(19):pii=21125. DOI: 10.2807/1560-7917. ES2015.20.19.21125.

7. Wójcik-Fatla A., Zajac V., Sawczyn A., Cisak E., Sroka J., Dutkiewicz, J. Occurrence of Francisella spp. in Dermacentor retic- ulatus and Ixodes ricinus ticks collected in eastern Poland. Ticks Tick Borne Dis. 2015; 6(3):253–7. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2015.01.005.

8. Formińska K., Zasada A.A., Rastawicki W., Śmietańska K., Bander D., Wawrzynowicz-Syczewska M., Yanushevych M., Niścigórska-Olsen J., Wawszczak M. Increasing role of arthropod bites in tularaemia transmission in Poland – case reports and diagnostic methods. Ann. Agric. Environ. Med. 2015; 22(3):443–6. DOI: 10.5604/12321966.1167711.

13. Hightower J., Kracalik I.T., Vydayko N., Goodin D, Glass G., Blackburn J.K. Historical distribution and host–vector diversity of Francisella tularensis, the causative agent of tularemia, in Ukraine. Parasit. Vectors. 2014; 7:453. DOI: 10.1186/s13071-014-0453-2.

14. Небогаткин И., Новохатний Ю., Выдайко Н., Билоник О., Свита В. Туляремия в Украине, современное ландшафтно-географичесское деление очагов, трансграничный аспект. Ветеринарная медицина. 2017; 103:56–7.

15. Прилуцкий А.С., Роговая Ю.Д., Зубко В.Г. Туляремия, этиология, эпидемиология, вакцинопрофилактика. Университетская клиника. 2017; 13(2):231–40.

16. Elashvili E., Kracalik I., Burjanadze I., Datukishvili S., Chanturia G., Tsertsvadze N., Beridze L., Shavishvili M., Dzneladze А., Grdzelidze M., Imnadze P., Pearson A., Blackburn J.K. Environmental monitoring and surveillance of rodents and vectors for Francisella tularensis following outbreaks of human tularemia in Georgia. Vector Borne Zoonotic Dis. 2015; 15(10):633–6. DOI: 10.1089/vbz.2015.1781.

17. Chanturia G., Birdsell D.N., Kekelidze M., Zhgenti E., Babuadze G., Tsertsvadze N., Tsanava S., Imnadze P., BeckstromSternberg S.M., Beckstrom-Sternberg J.S., Champion M.D., Sinari S., Gyuranecz M., Farlow J., Pettus A.H., Kaufman E.L., Busch J.D., Pearson T., Foster J.T., Vogler A.J., Wagner D.M., Keim P. Phylogeography of Francisella tularensis subspecies holarctica from the country of Georgia. BMC Microbiol. 2011; 11:139. DOI: 10.1186/1471-2180-11-139.

18. Akhvlediani N., Burjanadze I., Baliashvili D., Tushishvili T., Broladze M., Navdarashvili A., Dolbadze S., Chitadze N., Topuridze M., Imnadze P., Kazakhashvili N., Tsertsvadze T., Kuchuloria T., Akhvlediani T., McNutt L.A., Chanturia G. Tularemia transmission to humans: a multifaceted surveillance approach. Epidemiol. Infect. 2018; 146(16):2139–45. DOI: 10.1017/S0950268818002492.

19. Clark D.V., Ismailov A., Seyidova E., Hajiyeva A., Bakhishova S., Hajiyev H., Nuriyev T., Piraliyev S., Bagirov S., Aslanova A., Debes A.K,, Qasimov M., Hepburn M.J. Seroprevalence of tularemia in rural Azerbaijan. Vector Borne Zoonotic Dis. 2012; 12(7):558–63. DOI: 10.1089/vbz.2010.0081.

20. Hajiyev H., Aydinov B., Jafarov A. Yersinia pestis and Francisella tularensis in vectors and rodents in northern Azerbaijan. In: Program Agenda and Abstract Book of 8th International Conference on Tularemia (September 28 – October 1, 2015, Opatija, Croatia). 2015. P. 139.

21. Малецкая О.В., Беляева А.И., Таран Т.В., Агапитов Д.С., Куличенко А.Н. Эпидемиологическая обстановка по опасным инфекционным болезням на территории Республики Абхазия. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2013; 5:43–7.

22. Куница Т.Н., Садовская В.П., Избанова У.А. Современное состояние эпидемиологического мониторинга за туляремией в природных очагах Казахстана. В кн.: Акимбаев А.М., Аубакиров С.А., Сансызбаев Б.Б., Бекенов Ж.Е., Избанова У.А., Байтанаев О.А., Темиралиева Г.А., редакторы. Сборник трудов по туляремии, посвященных 100-летию доктора медицинских наук, профессора Масгута Айкимбаевича Айкимбаева. Алматы: ИП Волкова Е.В.; 2016. С. 190–211.

23. Попов В.П., Мезенцев В.М., Бирковская Ю.А., Безсмертиый В.Е., Таджидинов В.О., Тараканов Т.А., Фольмер А.Я., Юрченко Ю.А., Мищенко A.И., Лопатин А.А. Трансграничные природные очаги туляремии Российской Федерации и Республики Казахстан. Карантинные и зоонозные инфекции в Казахстане. 2019; 1:95–105.

24. Куница Т.Н., Избанова У.А., Ерубаев Т.К., Аязбаев Т.З., Мека-Меченко В.Г., Абдел З.Ж., Мека-Меченко Т.В., Садовская В.П. Природная очаговость туляремии в Казахстане. Алматы: КНЦКЗИ; 2019. 97 с.

25. Мещерякова И.С., Коренберг Э.И., Tserennorov D., Михайлова Т.В., Кормилицына М.И., Batjav D., Dagvadorj Y., Демидова Т.Н., Otgonbaatar D., Enkhbold N., Mendamar L. Выявление природных очагов туляремии на территории Монголии. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011; 5:31–6.

26. Данчинова Г.А., Хаснатинов М.А., Злобин В.И., Козлова И.В., Верхозина М.М., Сунцова О.В., Шулунов С.С., Абмэд Д., Батаа Ж., Бат-Очир Д., Цэнд Н., Бадуева Л.Б., Лисак О.В., Горина М.О. Иксодовые клещи юга Восточной Сибири и Монголии и их спонтанная зараженность возбудителями природно-очаговых трансмиссивных инфекций. Бюллетень сибирской медицины. 2006; 5(S1):137–43.

27. Kang C., Wang Z., Han W. An epidemiological investigation on the first epidemic of human tularemia in China. Chin. J. Epidemiol. 1980; 1:248–51.

28. Pang Z.C. Investigation of the first outbreak of tularemia in Shandong Peninsula. Chin. J. Epidemiol. 1987, 5:261–3. PMID: 3449210.

29. Du W., Gao Y. Isolation of Francisella tularensis from the blood of children with eye conjunctivitis and angina. J. Med. Theory Pract. 1994; 7:44.

30. Wang Y.H., Qiao F.Yu., Cao J., Peng Y., Li H., Xia L.X., Hai R. A case of Francisella tularensis subspecies holarctica in China. Ticks Tick Borne Dis. 2015; 6(6):802–4. DOI: 10.1016/j. ttbdis.2015.07.007.

31. Wang Y., Peng Y., Hai R., Xia L., Li H., Zhang Z., Cai H., Liang Y., Shen X., Yu D., Birdsell D., Wagner D.M., Keim P. Diversity of Francisella tularensis subsp. holarctica lineages, China. Emerg. Infect. Dis. 2014; 20(7):1191–4. DOI: 10.3201/eid2007.130931.

Ключевые слова

Об авторах

Список литературы

2. Dryselius R., Hjertqvist M., Mäkitalo S., Lindblom A., Lilja T., Eklöf D., Lindström A. Large outbreak of tularaemia, central Sweden, July to September 2019. Euro Surveill. 2019; 24(42):pii=1900603. DOI: 10.2807/1560-7917.ES.2019.24.42.1900603.

3. Rossow H., Ollgren J., Hytönen J., Rissanen H., Huitu O., Henttonen H., Kuusi M., Vapalahti O. Incidence and seroprevalence of tularaemia in Finland, 1995 to 2013: regional epidemics with cyclic pattern. Euro Surveill. 2015; 20(33):pii=21209. DOI: 10.2807/1560- 7917.es2015.20.33.21209.

4. Rossow H., Ollgren J., Klemets P., Pietarinen I., Saikku J., Pekkanen E., Nikkari S., Syrjälä H., Kuusi M., Nuorti J.P. Risk factors for pneumonic and ulceroglandular tularaemia in Finland: a population-based case-control study. Epidemiol. Infect. 2014; 142(10):2207–16. DOI: 10.1017/S0950268813002999.

5. Larssen KW, Afset JE, Heier BT, Krogh T, Handeland K, Vikøren T, Bergh K. Outbreak of tularaemia in central Norway, January to March 2011. Euro Surveill. 2011;16(13):pii=19828

6. Afset J.E., Larssen K.W., Bergh K., Lärkeryd A., Sjödin A., Johansson A., Forsman M. Phylogeographical pattern of Francisella tularensis in a nationwide outbreak of tularaemia in Norway, 2011. Euro Surveill. 2015; 20(19):pii=21125. DOI: 10.2807/1560-7917. ES2015.20.19.21125.

7. Wójcik-Fatla A., Zajac V., Sawczyn A., Cisak E., Sroka J., Dutkiewicz, J. Occurrence of Francisella spp. in Dermacentor retic- ulatus and Ixodes ricinus ticks collected in eastern Poland. Ticks Tick Borne Dis. 2015; 6(3):253–7. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2015.01.005.

8. Formińska K., Zasada A.A., Rastawicki W., Śmietańska K., Bander D., Wawrzynowicz-Syczewska M., Yanushevych M., Niścigórska-Olsen J., Wawszczak M. Increasing role of arthropod bites in tularaemia transmission in Poland – case reports and diagnostic methods. Ann. Agric. Environ. Med. 2015; 22(3):443–6. DOI: 10.5604/12321966.1167711.

13. Hightower J., Kracalik I.T., Vydayko N., Goodin D, Glass G., Blackburn J.K. Historical distribution and host–vector diversity of Francisella tularensis, the causative agent of tularemia, in Ukraine. Parasit. Vectors. 2014; 7:453. DOI: 10.1186/s13071-014-0453-2.

14. Небогаткин И., Новохатний Ю., Выдайко Н., Билоник О., Свита В. Туляремия в Украине, современное ландшафтно-географичесское деление очагов, трансграничный аспект. Ветеринарная медицина. 2017; 103:56–7.

15. Прилуцкий А.С., Роговая Ю.Д., Зубко В.Г. Туляремия, этиология, эпидемиология, вакцинопрофилактика. Университетская клиника. 2017; 13(2):231–40.

16. Elashvili E., Kracalik I., Burjanadze I., Datukishvili S., Chanturia G., Tsertsvadze N., Beridze L., Shavishvili M., Dzneladze А., Grdzelidze M., Imnadze P., Pearson A., Blackburn J.K. Environmental monitoring and surveillance of rodents and vectors for Francisella tularensis following outbreaks of human tularemia in Georgia. Vector Borne Zoonotic Dis. 2015; 15(10):633–6. DOI: 10.1089/vbz.2015.1781.

17. Chanturia G., Birdsell D.N., Kekelidze M., Zhgenti E., Babuadze G., Tsertsvadze N., Tsanava S., Imnadze P., BeckstromSternberg S.M., Beckstrom-Sternberg J.S., Champion M.D., Sinari S., Gyuranecz M., Farlow J., Pettus A.H., Kaufman E.L., Busch J.D., Pearson T., Foster J.T., Vogler A.J., Wagner D.M., Keim P. Phylogeography of Francisella tularensis subspecies holarctica from the country of Georgia. BMC Microbiol. 2011; 11:139. DOI: 10.1186/1471-2180-11-139.

18. Akhvlediani N., Burjanadze I., Baliashvili D., Tushishvili T., Broladze M., Navdarashvili A., Dolbadze S., Chitadze N., Topuridze M., Imnadze P., Kazakhashvili N., Tsertsvadze T., Kuchuloria T., Akhvlediani T., McNutt L.A., Chanturia G. Tularemia transmission to humans: a multifaceted surveillance approach. Epidemiol. Infect. 2018; 146(16):2139–45. DOI: 10.1017/S0950268818002492.

19. Clark D.V., Ismailov A., Seyidova E., Hajiyeva A., Bakhishova S., Hajiyev H., Nuriyev T., Piraliyev S., Bagirov S., Aslanova A., Debes A.K,, Qasimov M., Hepburn M.J. Seroprevalence of tularemia in rural Azerbaijan. Vector Borne Zoonotic Dis. 2012; 12(7):558–63. DOI: 10.1089/vbz.2010.0081.

20. Hajiyev H., Aydinov B., Jafarov A. Yersinia pestis and Francisella tularensis in vectors and rodents in northern Azerbaijan. In: Program Agenda and Abstract Book of 8th International Conference on Tularemia (September 28 – October 1, 2015, Opatija, Croatia). 2015. P. 139.

21. Малецкая О.В., Беляева А.И., Таран Т.В., Агапитов Д.С., Куличенко А.Н. Эпидемиологическая обстановка по опасным инфекционным болезням на территории Республики Абхазия. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2013; 5:43–7.

22. Куница Т.Н., Садовская В.П., Избанова У.А. Современное состояние эпидемиологического мониторинга за туляремией в природных очагах Казахстана. В кн.: Акимбаев А.М., Аубакиров С.А., Сансызбаев Б.Б., Бекенов Ж.Е., Избанова У.А., Байтанаев О.А., Темиралиева Г.А., редакторы. Сборник трудов по туляремии, посвященных 100-летию доктора медицинских наук, профессора Масгута Айкимбаевича Айкимбаева. Алматы: ИП Волкова Е.В.; 2016. С. 190–211.

23. Попов В.П., Мезенцев В.М., Бирковская Ю.А., Безсмертиый В.Е., Таджидинов В.О., Тараканов Т.А., Фольмер А.Я., Юрченко Ю.А., Мищенко A.И., Лопатин А.А. Трансграничные природные очаги туляремии Российской Федерации и Республики Казахстан. Карантинные и зоонозные инфекции в Казахстане. 2019; 1:95–105.

24. Куница Т.Н., Избанова У.А., Ерубаев Т.К., Аязбаев Т.З., Мека-Меченко В.Г., Абдел З.Ж., Мека-Меченко Т.В., Садовская В.П. Природная очаговость туляремии в Казахстане. Алматы: КНЦКЗИ; 2019. 97 с.

25. Мещерякова И.С., Коренберг Э.И., Tserennorov D., Михайлова Т.В., Кормилицына М.И., Batjav D., Dagvadorj Y., Демидова Т.Н., Otgonbaatar D., Enkhbold N., Mendamar L. Выявление природных очагов туляремии на территории Монголии. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011; 5:31–6.

26. Данчинова Г.А., Хаснатинов М.А., Злобин В.И., Козлова И.В., Верхозина М.М., Сунцова О.В., Шулунов С.С., Абмэд Д., Батаа Ж., Бат-Очир Д., Цэнд Н., Бадуева Л.Б., Лисак О.В., Горина М.О. Иксодовые клещи юга Восточной Сибири и Монголии и их спонтанная зараженность возбудителями природно-очаговых трансмиссивных инфекций. Бюллетень сибирской медицины. 2006; 5(S1):137–43.

27. Kang C., Wang Z., Han W. An epidemiological investigation on the first epidemic of human tularemia in China. Chin. J. Epidemiol. 1980; 1:248–51.

28. Pang Z.C. Investigation of the first outbreak of tularemia in Shandong Peninsula. Chin. J. Epidemiol. 1987, 5:261–3. PMID: 3449210.

29. Du W., Gao Y. Isolation of Francisella tularensis from the blood of children with eye conjunctivitis and angina. J. Med. Theory Pract. 1994; 7:44.

30. Wang Y.H., Qiao F.Yu., Cao J., Peng Y., Li H., Xia L.X., Hai R. A case of Francisella tularensis subspecies holarctica in China. Ticks Tick Borne Dis. 2015; 6(6):802–4. DOI: 10.1016/j. ttbdis.2015.07.007.

31. Wang Y., Peng Y., Hai R., Xia L., Li H., Zhang Z., Cai H., Liang Y., Shen X., Yu D., Birdsell D., Wagner D.M., Keim P. Diversity of Francisella tularensis subsp. holarctica lineages, China. Emerg. Infect. Dis. 2014; 20(7):1191–4. DOI: 10.3201/eid2007.130931.

Общая площадь природных очагов туляремии Казахстана составляет 520 тыс. км 2 , значительная часть из которых расположена на приграничной с Россией территории. Проведен анализ эпизоотического состояния очагов туляремии Казахстана на приграничной c Россией территории с 2000 по 2014 гг.

Ключевые слова

Об авторах

РГКП «Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекции им. М. Айкимбаева, г. Алматы, Казахстан
Россия

РГКП «Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекции им. М. Айкимбаева, г. Алматы, Казахстан
Россия

РГКП «Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекции им. М. Айкимбаева, г. Алматы, Казахстан
Россия

РГКП «Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекции им. М. Айкимбаева, г. Алматы, Казахстан
Россия

Список литературы

1. Гражданов А.К., Кожанова О.И., Топорков А.В., Аязбаев Т.З., Матвеева Н.И., Карнаухов И.Г., Попов Н.В., Раздорский А.С., Архипова Г.Н. Сравнительный анализ проявлений опасных инфекций в Саратовской и Западно-Казахстанской областях в целях современной оценки эпидемиологических рисков // Пробл. особо опасн. инфекций. - Саратов. - 2013. - Вып. 4. - С. 16-23.

4. Куница Т.Н., Мека-Меченко Т.В., Лухнова Л.Ю. и др. Заболеваемость туляремией в Казахстане // Пробл. особо опасн. инфекций. - Саратов, 2001. - В. 1 (81). - С. 52-55.

Рецензия

Для цитирования:

Куница Т.Н., Избанова У.А., Мека-Меченко В.Г., Майканов Н.С., Садовская В.П. ЭПИЗООТИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ПРИРОДНЫХ ОЧАГОВ ТУЛЯРЕМИИ КАЗАХСТАНА НА ПРИГРАНИЧНОЙ С РОССИЕЙ ТЕРРИТОРИИ. Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2014;(25):63-65.

For citation:

Kunitsa T.N., Izbanova U.A., Meka-Mechenko V.G., Maikanov N.S., Sadovskaya V.P. EPIZOOTIC ACTIVITY OF NATURAL TULAREMIA FOCI OF KAZAKHSTAN IN FRONTIER TERRITORY WITH RUSSIA. Title in english. 2014;(25):63-65. (In Russ.)


Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.

Туляремия – это острое зоонозное природно-очаговое инфекционное заболевание характеризующееся многообразием путей заражения, соответственно механизму заражения развитием лихорадки, интоксикации, первичных очагов поражения на кожных покровах, конъюнктиве глаз, слизистой ротоглотки, в легких и кишечнике сопровождающихся развитием региональных лимфаденитов и различной степени генерализации процесса (гематогенная диссеминация).

Код(ы) МКБ-10:

МКБ-10
Код Название
А21.0 Язвенная (кожная) форма туляремии
А21.1 Глазная (глазобубонная) форма
А21.2 Легочная форма туляремии
А21.3 Абдоминальная (кишечная) форма
А21.7 Генерализованная форма туляремии
А21.8 Другие формы туляремии
А21.9 Туляремия неуточненная

Дата разработки протокола: 2017 год.

Сокращения, используемые в протоколе:

АД артериальное давление
АлТ Аланинаминотрансфераза
АсТ Аспартатаминотрансфераза
АЧТВ активированное частичное тромбопластиновое время
в/в Внутривенно
в/м Внутримышечно
ВГ вирусный гепатит
ВОП врач общей практики
ВР время рекальцификации
ВКА - Вторичный кожный аффект
ДВС диссеминированное внутрисосудистое свертывание
ИВЛ искусственная вентиляция легких
ИТШ инфекционно-токсический шок
ИФА иммуноферментный анализ
КИЗ кабинет инфекционных заболеваний
КТ компьютерная томография
КЩР кислотно-щелочное равновесие
МНО международное нормализованное отношение
МРТ магнитно-резонансная томография
ОАК общий анализ крови
ОАМ общий анализ мочи
ОРИТ отделение реанимации и интенсивной терапии
ОПП острое повреждение почек
ОППН острая печеночно-почечная недостаточность
ОЦК объем циркулирующей крови
ПМСП первичная медико-санитарная помощь
ПЦР полимеразная цепная реакция
ПКА - Первичный кожный аффект
РТГА реакция торможения гемагглютинации
РПГА реакция пассивной гемагглютинации
УПФ - Условно-патогенная флора
СЗП свежезамороженная плазма
СМЖ спинномозговая жидкость
СОЭ скорость оседания эритроцитов
СПОН синдром полиорганной недостаточности
УЗИ ультразвуковое исследование
ЦВД центральное венозное давление
ЭКГ Электрокардиография

Пользователи протокола: врачи скорой неотложной помощи, фельдшеры, врачи общей практики, терапевты, инфекционисты, пульмонологи, хирурги, офтальмологи, дерматовенерологи, анестезиологи-реаниматологи, организаторы здравоохранения.

Категория пациентов: взрослые, беременные.

Шкала уровня доказательности:

А Высококачественный мета-анализ, систематический обзор РКИ или крупное РКИ с очень низкой вероятностью (++) систематической ошибки, результаты которых могут быть распространены на соответствующую популяцию.
В Высококачественный (++) систематический обзор когортных или исследований случай-контроль или высококачественное (++) когортных или исследований случай-контроль с очень низким риском систематической ошибки или РКИ с невысоким (+) риском систематической ошибки, результаты которых могут быть распространены на соответствующую популяцию.
С Когортное или исследование случай-контроль или контролируемое исследование без рандомизации с невысоким риском систематической ошибки (+), результаты которых могут быть распространены на соответствующую популяцию или РКИ с очень низким или невысоким риском систематической ошибки (++ или +), результаты которых не могут быть непосредственно распространены на соответствующую популяцию.
D Описание серии случаев или неконтролируемое исследование или мнение экспертов.
GPP Наилучшая клиническая практика.

Классификация

Классификация [6- 18]

Классификация клинико-патогенетическая [18]:

Первично-очаговые формы:
· Язвенная (син. кожная, кожно-бубонная);
· Бубонная;
· Ангинозная (ангинозно-бубонная, ротоглоточная, фарингеальная);
· Коньюнктивальная (син. глазная, глазо-бубонная);
· Легочная (син. пневмоническая);
· Абдоминальная (син. кишечная);
· Смешанная.

Генерализованные формы:
· Первично-генерализованная (син. лихорадочная, первично-септическая, тифоидная);
· Вторично-генерализованная.

Вторично-очаговые формы (развитие вторично-очаговых форм нехарактерно для штаммов туляремии, циркулирующих в Евразии (тип B или holarctica), такое течение характерно для штаммов циркулирующих в Северной Америке (тип А или tularensis)).
· Ангинозная;
· Бубонная;
· Пневмоническая;
· Абдоминальная (кишечная);
· Менингоэнцефалитическая;
· Смешанная;
· Вторично-септическая.
Примечание: в скобках указаны синонимы клинических форм, встречающиеся в литературе.

Классификация клинических форм туляремии основана на патогенезе заболевания с учетом механизма и пути передачи инфекции (Таблица 1):
· первично-очаговые формы протекают как регионарная инфекция (воспалительный процесс) в месте внедрения возбудителя (входных ворот);
· первично-генерализованная форма – протекает в виде генерализованной инфекции (бактериемии) без эпизода первично-очаговых проявлений, когда возбудитель сразу попадает в кровь (при массивном инфицировании и/или иммунодефицитном состоянии);
· вторичная генерализация – в виде генерализованной инфекции (бактериемии) развивается на фоне любой из первично-очаговых форм;
· вторично-очаговые формы развиваются вслед за и как результат генерализации инфекции с формированием вторичных очагов в органах и тканях.

Таблица 1. Клинико-патогенетическая классификация туляремии [18]:

Ангинозная

Диагностика

МЕТОДЫ, ПОДХОДЫ И ПРОЦЕДУРЫ ДИАГНОСТИКИ 21

Диагностические критерии [19]

Жалобы и анамнез:
· Инкубационный период при туляремии длится в среднем 3 — 7 дней, но может удлиняться до 2 — 3 недель.
Для всех форм туляремии характерно повышение температуры и симптомы интоксикации разной степени выраженности.
· острое начало заболевания;
· повышение температуры тела;
· головная боль;
· общая слабость;
· отсутствие аппетита.
При развитии очаговых форм присоединяются клинические симптомы поражения соответствующих органов и систем, которые носят неспецифический характер. Поэтому диагностика предположительного случая, основанная на клинических проявлениях туляремии затруднена.

Для подтверждения подозрения на туляремию необходимо наличие соответствующего эпидемиологического анамнеза – пребывание или проживание на эндемичной территории (для родного очага) туляремии в течение максимального инкубационного периода (трех недель) перед заболеванием.

Стандартное определение случая туляремии [20]:
Предположительный диагноз (случай) язвенной (кожной, язвенно-бубонной) и бубонной форм туляремии ставится при:
· проживании или пребывании на территории природного очага туляремии (эндемичной зоне) в течение трех недель до заболевания;
· наличии острого заболевания, сопровождающегося лихорадкой и интоксикацией, с одним или обоими из следующих синдромов:
Бубон (лимфаденит без периаденита) в одной из групп периферических лимфоузлов, характеризующийся как минимум тремя из следующих признаков:
− увеличение отдельного лимфоузла (лимфоузлов);
− умеренная болезненность;
− мягко-эластическая консистенция;
− подвижность при пальпации.
Первичный кожный аффект, болезненный, находящийся на одном из следующих этапов развития:
− папула;
− везикула;
− пустула (гнойная);
− язва (глубокая, сочная, с гнойно-геморрагическим отделяемым, на инфильтрированном основании, окруженная венчиком гиперемии).

Предположительный диагноз (случай) глазной (глазо-бубонной) формы туляремии ставится при:
· проживании или пребывании на территории природного очага туляремии (эндемичной зоне) в течение трех недель до заболевания;
· наличии острого заболевания, сопровождающегося лихорадкой и интоксикацией, с первичным аффектом на конъюнктиве (в виде папулы – пустулы – язвочки), выраженного конъюнктивита, одностороннего отека лица, периорбитального отека и регионального шейного (подчелюстного) лимфаденита, характеризующегося всеми свойствами туляремийного лимфаденита.

Предположительный диагноз (случай) ангинозной (ангинозно-бубонной) формы туляремии ставится при:
· проживании или пребывании на территории природного очага туляремии (эндемичной зоне) в течение трех недель до заболевания;
· наличии острого заболевания, сопровождающегося лихорадкой и интоксикацией, с первичным аффектом, проявляющимся выраженной односторонней гнойно-некротической ангиной и регионального шейного (подчелюстного) или заглоточного лимфаденита, характеризующимися всеми свойствами туляремийного бубона [21].

Предположительный диагноз (случай) легочной (пневмонической) формы туляремии ставится при:
· проживании или пребывании на территории природного очага туляремии (эндемичной зоне) в течение трех недель до заболевания;
· наличии острого тяжелого заболевания без альтернативного диагноза, сопровождающегося лихорадкой, увеличением печени и/или селезенки и увеличением (на рентггенограмме) прикорневых, паратрахеальных или медиастенальных лимфоузлов [21].

Предположительный диагноз (случай) абдоминальной (кишечной) формы туляремии ставится при:
· проживании или пребывании на территории природного очага туляремии (эндемичной зоне) в течение трех недель до заболевания;
· наличии острого тяжелого заболевания, сопровождающегося лихорадкой, увеличением печени и/или селезенки и болями в области мезентериальных лимфоузлов (правая подвздошная область).

Вероятный диагноз (случай) для всех форм туляремии ставится при соответствии определению предположительного случая и наличия как минимум одного из следующего [20]:
· употребление сырого мяса животных, возможных носителей туляремии;
· употребление сырой воды из ручьев, колодцев, других открытых водоисточников;
· участие в сельскохозяйственных работах, связанных с сеном, соломой;
· укус клещей, или других кровососущих насекомых;
· охота, добыча и разделка диких и сельскохозяйственных животных, возможных носителей туляремии;
· прямой или опосредованный контакт с животными, возможными носителями туляремии;
· эпидемиологическая связь с подтвержденным случаем туляремии;
· менее чем четырехкратное увеличение титра антител к F. tularensis в сыворотке крови;
· положительная кожная аллергическая проба у не привитых лиц.

Подтвержденный диагноз (случай) для всех форм туляремии ставится при наличии как минимум одного из нижеследующего [20]:
· выделение культуры Francisella tularensis из отделяемого кожного аффекта, содержимого лимфоузлов, мокроты, мазков с конъюнктивы, из ротоглотки, испражнений или крови;
· положительный результат ПЦР при исследовании материала от больного;
· обнаружение IgM или нарастание титра IgG к F. tularensis в ИФА [23];
· четырехкратное нарастание титров антител к F. tularensis в агглютинационных тестах при исследовании парных сывороток;
· подтверждение однократного положительного результата в агглютинационном тесте другим подтверждающим тестом.

Лабораторно-этиологические исследования:
· Бактериологическое исследование – отделяемого кожного аффекта, содержимого лимфоузлов, мокроты, мазков с конъюнктивы, из ротоглотки, испражнений и крови;
· Биологическое исследование – отделяемого кожного аффекта, содержимого лимфоузлов, мокроты, мазков с конъюнктивы, из ротоглотки, испражнений и крови;
· ПЦР исследование – отделяемого кожного аффекта, содержимого лимфоузлов, мокроты, мазков с конъюнктивы, из ротоглотки, испражнений и крови;
· ИФА на антиген – отделяемого кожного аффекта, содержимого лимфоузлов, мокроты, мазков с конъюнктивы, из ротоглотки, испражнений и крови;
· ИФА на антитела (IgM и IgG) - крови;
· Серологические агглютинационные тесты на антитела (РА, РПГА) - крови.
· Коагулограмма – при развитии ИТШ и ДВС синдрома;
· Биохимическое исследование крови (глюкоза, общий белок, мочевина, креатинин, электролиты) – при развитии ИТШ и ДВС синдрома.
Следует учесть, что в крови у больного может находиться высококонтагиозный возбудитель, поэтому работа с выделениями больного, прежде всего с кровью, проводится в соответствующих средствах индивидуальной защиты, с последующим обеззараживанием объектов, соприкасавшихся с материалами от больного.

Инструментальные исследования:
· Рентгенологическое исследование и/или компьютерная томография грудной клетки – при наличии у больного легочной формы туляремии.
· Компьютерная томография брюшной полости – при наличии у больного абдоминальной формы туляремии.
· УЗИ лимфоузлов – при развитии лимфаденитов разной локализации.
· ЭКГ – при развитии явлений выраженной интоксикации и миокардита.

Показания для консультации специалистов:
При возникновении подозрения на наличии у больного туляремии, возможно провести консультацию с инфекционистом КИЗ, если такая возможность имеется, однако при использовании стандартного определения случая, можно направлять больного в региональное инфекционное отделение или больницу без дополнительной консультации инфекциониста.

Читайте также: