Селективная добавка с антибиотиками для основы гонококкового агара

Обновлено: 27.03.2024

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к медицинской микробиологии, и может быть использовано при диагностике гонореи. Селективная добавка содержит нистатин в концентрации 327,7 ед/мл среды - 399,3 ед/мл среды, полимиксина-В сульфат в концентрации 36 ед/мл среды - 44 ед/мл среды и гидрохлорид линкомицина в концентрации 3,6 ед/мл среды - 4,4 ед/мл среды. Изобретение позволяет ускорить рост гонококков на питательной среде, содержащей селективную добавку (более 500 колоний по всей поверхности среды уже после 16-18 часов инкубации), при полном подавлении посторонней микрофлоры.

Формула изобретения

Селективная добавка к питательной среде для выделения и культивирования Neisseria gonorrhoeae, включающая антибиотик, отличающаяся тем, что в качестве антибиотика содержит нистатин в концентрации 327,7 - 399,3 ед./мл среды, полимиксина-В сульфат в концентрации 36 - 44 ед./мл среды и гидрохлорид линкомицина в концентрации 3,6 - 4,4 ед./мл среды.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано при диагностике гонореи.

Уровень заболеваемости гонококковой инфекцией в 2007 году (60,8 случаев на 100000 населения) в Российской Федерации в настоящее время остается высоким, что определяет актуальность проведения исследований, направленных на развитие как первичной, так и вторичной профилактики этих инфекций.

В Российской Федерации селективные питательные среды для диагностики гонореи не производятся. В связи с этим важной задачей является разработка таких сред и их регистрация в установленном порядке как изделий медицинского назначения.

В настоящее время известны различные добавки к питательным средам для культивирования и выделения гонококка. К числу таких добавок относятся следующие:

- селективная добавка с антибиотиками V.C.N.T., номер по каталогу FD 024, содержащая на 500 мл среды:

ванкомицин - 1,50 мг,

колистина метансульфонат - 3,75 мг,

триметоприм - 2,50 мг,

нистатин 6,25 мг;

- селективная добавка с антибиотиками для основы гонококкового агара, номер по каталогу FD 021, содержащая на 500 мл среды:

дрожжевой аутолизат - 5,0 г,

натрия гидрокарбонат 0,075 г,

ванкомицин - 1,50 мг,

колистина метансульфонат - 3,75 мг,

триметоприм - 2,50 мг,

нистатин 6,25 мг.

Также известна селективная добавка с антибиотиками V.C.N., номер по каталогу FD 023, содержащая на 500 мл среды:

ванкомицин - 1,50 мг,

колистина метансульфонат - 3,75 мг,

нистатин 6,25 мг.

Кроме того, известны питательные среды, содержащие в качестве ингибитора посторонней микрофлоры такие антибиотики как полимиксина-В сульфат и линкомицина гидрохлорид (см. RU 2076904 С1, 10.04.1997). Данная питательная среда выбрана в качестве ближайшего аналога. Культивирование N. gonorrhoeae на данной питательной среде с добавками из антибиотиков позволяет достичь обильного роста микроорганизма только после 24-48 часов.

Недостатки известных селективных добавок заключаются в том, что часть гонококков может проявлять чувствительность к входящим в их состав антибактериальным препаратам, вследствие чего рост гонококка подавляется компонентами, входящими в состав селективной добавки и определенный процент заболевания остается нераспознанным. Кроме того, селективные добавки не всегда полностью подавляют рост сопутствующей микрофлоры. В связи с вышеизложенным одной из актуальных проблем практической венерологии является разработка новых селективных добавок, позволяющих устранить вышеуказанные недостатки, что является задачей настоящего изобретения.

Поставленная задача решается путем создания селективной добавки, содержащей:

нистатин в концентрации 327,7 ед./мл среды - 399,3 ед./мл среды,

полимиксина-В сульфат в концентрации 3,6 ед./мл среды - 44 ед./мл среды,

гидрохлорид линкомицина в концентрации 3,6 ед./мл среды - 4,4 ед./мл среды.

Технический результат изобретения заключается в ускорении роста гонококков на питательной среде, содержащей селективную добавку (более 500 колоний по всей поверхности среды уже после 16-18 часов инкубации), при полном подавлении посторонней микрофлоры.

Селективную добавку к питательной среде для выделения и культивирования N. gonorrhoeae получают путем смешивания компонентов.

Основа питательной среды содержит: экстракт кроличьего мяса, экстракт языков крупного рогатого скота, пептон сухой ферментативный для бактериологических целей, натрий хлористый, аутолизат хлебопекарных дрожжей, кислота оротовая и агар микробиологический.

Добавка к основе питательной среды: сыворотка крупного рогатого скота, аутолизат хлебопекарных дрожжей, гидролизат казеина для парентерального белкового питания.

Заявленное изобретение может быть проиллюстрировано следующими примерами.

нистатин в концентрации 327,7 ед./мл среды,

полимиксина-В сульфат в концентрации 3,6 ед./мл среды,

гидрохлорид линкомицина в концентрации 3,6 ед./мл среды. Производили посев лабораторного штамма N. gonorrhoeae и культивировали в течение 16-18 часов в атмосфере 5-10% СO 2 при 36-37°С.

Учет результатов культивирования микроорганизмов осуществляли визуально с использованием стериомикроскопа - лупы - прибора, позволяющего оценивать количество колоний инструментальным методом. Рост микроорганизмов оценивали по 4-балльной системе:

4+ - обильный сливной рост микроорганизмов (более 500 колоний) по всей поверхности среды;

3+ - обильный рост (более 300 колоний);

2+ - более 40 колоний (от 40 до 100 колоний) - умеренный рост;

1+ - более 10 колоний (от 10 до 30 колоний) - скудный рост.

В результате проведенного эксперимента наблюдался обильный сливной рост штамма микроорганизма - 4+ (более 500 колоний) по всей поверхности среды уже после 16-18 часов инкубации, в то время как в прототипе это время составляет 24-48 часов.

Эксперимент проводили аналогично примеру 1, используя компоненты селективной добавки в следующих количествах:

нистатин в концентрации 358,7 ед./мл среды,

полимиксина-В сульфат в концентрации 40 ед./мл среды,

гидрохлорид линкомицина в концентрации 4,0 ед./мл среды.

В результате проведенного эксперимента наблюдался обильный сливной рост штамма микроорганизма - 4+ (более 500 колоний) по всей поверхности среды уже после 17 часов инкубации, в то время как в прототипе это время составляет 24-48 часов.

Эксперимент проводили аналогично примеру 1, используя компоненты селективной добавки в следующих количествах:

нистатин в концентрации 399,3 ед./мл среды,

полимиксина-В сульфат в концентрации 44 ед./мл среды,

гидрохлорид линкомицина в концентрации 4,4 ед./мл среды.

В результате проведенного эксперимента наблюдался обильный сливной рост штамма микроорганизма - 4+ (более 500 колоний) по всей поверхности среды уже после 16 часов инкубации, в то время как в прототипе это время составляет 24-48 часов.

На указанную в примере 1 питательную среду с селективной добавкой производили посев следующих лабораторных штаммов следующих микроорганизмов: S. epidermidis, Е. coli, С.albicans, N. gonorrhoeae. Через 24 часа производили оценку наличия и роста штаммов микроорганизмов. Анализ показал, что в результате эксперимента был полностью подавлен рост сопутствующей микрофлоры (S. epidermidis, Е. coli, С.albicans), при обильном росте штамма N. gonorrhoeae.

Как видно из представленных примеров, изобретение позволяет ускорить рост гонококков на питательной среде, содержащей селективную добавку (более 500 колоний по всей поверхности среды уже после 16-18 часов инкубации), при полном подавлении посторонней микрофлоры.

Для определения чувствительности стрептококков используют следующие питательные среды:

  • Для методов серийных разведений в бульоне необходимо использовать бульон Мюллера-Хинтон с добавлением 2,0 - 5,0 % лизированной лошадиной крови. Кровь лизируют замораживанием-оттаиванием с последующим центрифугированием для освобождения от теней эритроцитов.
  • Для методов серийных разведений в агаре и ДДМ используют агар Мюллера-Хинтон с добавлением 5 % дефибринированной бараньей крови.

Указанные добавки асептически вносят в питательную основу после автоклавирования и охлаждения до 48 - 50 °С.

Определение чувствительности Streptococcus pneumoniae

Бета-лактамные антибиотики (в частности пенициллин) являются препаратами выбора для терапии пневмококковых инфекций. В то же время критерии интерпретации результатов определения чувствительности пневмококков к этим препаратам постоянно пересматриваются в связи с появлением новых клинических и экспериментальных данных об эффективности различных бета-лактамов при пневмококковых инфекциях, вызванных штаммами с различным уровнем чувствительности к пенициллину.

Механизм резистентности S.pneumoniae к пенициллину и другим бета-лактамным антибиотикам обусловлен изменением пенициллиносвязывающих белков (ПСБ) клеточной стенки. В результате ступенчатых мутаций уменьшается сродство ПСБ к бета-лактамным антибиотикам.

При этом установлено, что при лечении инфекций дыхательных путей, вызванных штаммами S.pneumoniae с промежуточным уровнем резистентности к пенициллину, бета-лактамные антибиотики остаются клинически эффективными, но применение их при менингите приводит к неудаче терапии.

В связи с этим при разработке критериев интерпретации результатов определения чувствительности S.pneumoniae к бета-лактамным антибиотикам было проведено подразделение штаммов по источникам выделения (инфекции дыхательных путей, ликвор) и пересмотрены критерии оценки чувствительности к амоксициллину, цефотаксиму и цефтриаксону. Критерии интерпретации результатов определения чувствительности к пенициллину не пересмотрены.

Следует обратить внимание на несколько важных особенностей определения чувствительности S.pneumoniae:

  • невозможность определения чувствительности к бета-лактамным антибиотикам (пенициллину, аминопенициллинам, цефалоспоринам, карбапенемам) ДДМ;
  • невозможность определения чувствительности S.pneumoniae к АБП методом разведений в агаре.

Поэтому определение чувствительности пневмококков к пенициллину и другим бета-лактамным антибиотикам подразумевает последовательное (выделение S.pneumoniae из нестерильных локусов) или одновременное (при тяжелых инфекциях, выделении пневмококков из крови и ликвора) выполнение двух исследований:

  • Скрининг с диском, содержащим 1,0 мкг оксациллина, с целью выявления возможной пенициллинорезистентности. Скрининговый метод позволяет разделить микроорганизмы на две группы: группу чувствительных штаммов и группу, в которую входят часть чувствительных, а также умеренно-резистентные и резистентные штаммы пневмококков.
  • Определение МПК пенициллина и других бета-лактамных антибиотиков методом разведений в бульоне или с помощью Е-тестов у штаммов, отнесенных ко второй группе по результатам скрининга.

Скрининг на наличие пенициллинорезистентности у штаммов S.pneumoniae

Постановка теста

Методика проведения исследования не отличается от обычной процедуры определения чувствительности пневмококков к АБП ДДМ.

Интерпретация результатов

  • При выявлении диаметра зоны подавления роста штамма пневмококка вокруг диска с 1 мкг оксациллина ≥ 20 мм, S.pneumoniae расценивается как чувствительный ко всем бета-лактамным антибиотикам.
  • При выявлении диаметра зоны подавления роста < 20 мм необходимо определение МПК всех бета-лактамных антибиотиков (пенициллина, аминопенициллинов, цефалоспоринов II - IV поколенй, карбапенемов) методами серийных разведений в бульоне или с помощью Е-тестов.

Макролиды и линкозамиды

Вторыми по значимости в лечении пневмококковых инфекций являются макролидные и линкозамидные антибиотики. Оценка чувствительности S.pneumoniae к перечисленным антибиотикам возможна как диско-диффузионным методом, так и методом серийных разведений. В связи с разнообразием механизмов устойчивости S.pneumoniae к макролидам в повседневной практике могут встречаться различные варианты перекрестной резистнетности микроорганизмов к АБП этой группы.

Однако в практических целях для характеристики чувствительности S.pneumoniae к рассматриваемой группе АБП достаточно оценить чувствительность к эритромицину и клиндамицину, что позволяет дифференцировать два основных фенотипа:

  • MLSB - перекрестная устойчивость ко всем макролидам, линкозамидам и стрептограминам В, обусловленная метилированием мишени действия препаратов.
  • М - устойчивость к 14- и 15-членным макролидам (при сохранении чувствительности к 16-членным макролидам, линкозамидам и стрептограминам), обусловленная активным выыедением АБП.

Фторхинолоны

Традиционные фторхинолоны (пефлоксацин, офлоксацин, ципрофлоксацин и ломефлоксацин) не являются адекватными для лечения пневмококковых инфекций, соответственно, оценивать чувствительность к этим препаратам нецелесообразно. В последние годы в лечении пневмококковых инфекций важное место заняли антипневмококковые фторхинолоны (левофлоксацин, спарфлоксацин, моксифлоксацин и гатифлоксацин). Частота устойчивости к перечисленным препаратам минимальна, однако, поскольку между ними не наблюдают полной перекрестной резистентности, возникает необходимость включения в исследование всей группы.

АБП других групп

Из антибиотиков других групп для лечения пневмококковых инфекций применяют ко-тримоксазол, хлорамфеникол, тетрациклины. Однако роль перечисленных препаратов в последние годы резко снижается в связи с нарастанием устойчивости, меньшей клинической эффективностью в сравнении с бета-лактамами, макролидами и антипневмококковыми фторхинолонами, также значительным числом нежелательных эффектов.

Для лечения тяжелых пневмококковых инфекций, вызванных штаммами с высоким уровнем устойчивости к антибактериальным препаратам других групп, в ряде случаев рекомендуется ванкомицин.

Критерии интерпретации результатов определения чувствительности S.pneumoniae (пограничные значения диаметров зон подавления роста и МПК АБП) приведены в таблице 17.

Таблица 17.

Определение чувствительности Streptococcus spp. группы "viridans"

Проводить определение чувствительности штаммов стрептококков группы "viridans", выделенных из нестерильных локусов в рутинной практике нецелесообразно. У штаммов, выделенных из стерильных в норме локусов организма, необходимо, в первую очередь, исследовать чувствительность к пенициллину. Воспроизводимые результаты при определении чувствительности стрептококков группы "viridans" к пенициллину удается получить только при помощи метода серийных разведений, ДДМ не пригоден для этой цели.

Штаммы, чувствительные к этому антибиотику, следует расценивать как чувствительные ко всем бета-лактамным антибиотикам. Часть штаммов, устойчивых к пенициллину, могут сохранять чувствительность к некоторым цефалоспоринам III поколения (цефотаксиму и цефтриаксону), IV поколения (цефепиму) и карбапенемам. Однако критерии интерпретации результатов определения чувствительности в настоящее время установлены только для цефотаксима и цефтриаксона.

Определенный интерес может представлять изучение чувствительности стрептококков группы "viridans" к эритромицину и другим макролидам, клиндамицину, тетрациклину и хлорамфениколу, однако клиническое значение получаемых при этом данных не определено.

В случае сниженной чувствительности или резистентности зеленящих стрептококков к пенициллину, при выдаче результатов тестирования клиницистам целесообразно рекомендовать проведение комбинированной терапии бета-лактамами с аминогликозидами, которые проявляют синергизм при совместном применении с бета-лактамами, несмотря на отсутствие у аминогликозидов собственной значимой активности в отношении стрептококков.

Определение чувствительности бета-гемолитических стрептококков

К бета-гемолитическим стрептококкам относятся микроорганизмы, принадлежащие к различным серологическим группам по Лансфельд (А, B, C, G). Среди них наибольшее клиническое значение имеют стрептококки группы А (Streptococcus pyogenes) и группы В (Streptococcus agalactiae).

Препаратами выбора для лечения инфекций, вызванных бета-гемолитическими стрептококками, являются бета-лактамы, причем достоверных случаев устойчивости к АБП этой группы не описано. Не описана и устойчивость к ванкомицину. Следовательно, оценивать чувствительность к указанным АБП в рутинной практике нецелесообразно.

При выделении из нестерильных локусов необходимость в оценке чувствительности возникает только для S.pyogenes и S.agalactiae. Примерный перечень препаратов для определения чувствительности этих микроорганизмов включает: макролиды (эритромицин) и линкосамиды (клиндамицин). С целью мониторига антибиотикорезистентности возможно определение чувствительности к хлорамфениколу и левофлоксацину. Для бета-гемолитических стрептококков, выделенных из стерильных локусов, необходимо определять чувствительность ко всем вышеперечисленным препаратам одновременно.

Примерный перечень АБП, рекомендуемых для определения чувствительности S.pneumoniae, стрептококков группы "viridans" и бета-гемолитических стрептококков, выделенных из различных локусов организма, представлен в таблице 18.

Таблица 18.

Критерии интерпретации результатов определения чувствительности Streptococcus spp. (кроме S.pneumoniae) (пограничные значения диаметров зон подавления роста и МПК АБП) приведены в таблице 19.


Внешний вид упаковки и препарата может отличаться от изображённого на фотографии

Инструкция по применению

Описание

Форма выпуска

Выпускается в виде комплекта из двух лиофилизированных компонентов: основы питательной среды - лиофилизат из объема 100 мл в бутылке - 1 шт; добавка к основе питательной среды - лиофилизат из объема 24 мл в бутылке - 1 шт.

Состав

Состав набора: 2.2.1. Основа питательной среды Экстракт кроличьего мяса 1000 мл, Пептон сухой ферментативный для бактериологических целей 10 г, Натрий хлористый 5 г, Аутолизат хлебопекарных дрожжей 50 мл, Кислота оротовая 0,00124 г, Агар микробиологический (20±5) г. 2.2.2. Добавка к основе питательной среды. Сыворотка лошадиная нормальная для бактериологических питательных сред жидкая 200 мл, Аутолизат хлебопекарных дрожжей 20 мл, Аминопептид для микробиологических питательных сред 20 мл.

Показания для применения

Предназначен для микробиологических целей. Применяется для выделения гонококка при исследовании инфицированного материала, а также в качестве среды для культивирования и хранения гонококка в научно- исследовательской работе.

Режим дозирования и способ применения

Приготовление реагентов следует проводить в асептических условиях.

В бутылку с основой питательной среды добавляют 100 мл стерильной очищенной воды и выдерживают (30±5) мин, затем помещают на кипящую водяную баню до полного расплавления агара, после расплавления агара выдерживают на водяной бане не более 5 мин.

В бутылку с добавкой питательной среды добавляют 24 мл стерильной очищенной воды и выдержать (20±2) мин до полного растворения при температуре 20-25°С. Растворенную добавку переносят в растворенную и охлажденную до температуры (50±2)°С основу. Среду размешивают, разливают по 3 мл в стерильные пробирки и скашивают. В каждую пробирку добавляют по 0,5 мл стерильного раствора натрия хлорида 0,9% для увлажнения среды.

Среду можно также разливать по 10-15 мл в стерильные чашки Петри. Пробирки или чашки с питательной средой помещают на (24±1) ч в термостате при температуре (37±1)°С для контроля на стерильность.

Готовую питательную среду хранят при температуре (6±2)°С до 7 сут.

Меры предосторожности при применении

Соблюдение «Правил устройства, техники безопасности, производственной санитарии, противоэпидемического режима и личной гигиены при работе в лабораториях (отделениях, отделах) санитарно-эпидемиологических учреждений системы Министерства здравоохранения (Москва. 1981 г.)


Антибиотики – это вещества биологического или полусинтетического происхождения. Применяются в лечебной практике для борьбы с болезнетворными микробами, вирусами. До появления этих медпрепаратов статус неизлечимых болезней был у брюшного тифа, дизентерии, пневмонии, туберкулеза. Сегодня лечение заболеваний инфекционного характера возможно с применением 1-6 поколения антибиотиков.

На этот момент фармакологическая индустрия выпускает более 2000 разновидностей лекарственных средств подобного типа. Медики описали действие около 600 позиций, а во врачебной практике используются порядка 120-160 препаратов.

Важно! При любом заболевании принимать антибиотики рекомендуется после консультации с врачом. В противном случае может развиться антибиотикорезистентность (снижение чувствительности патогенных микроорганизмов к антибактериальным средствам).

Классификация антибиотиков

Все антибактериальные средства можно разделить на 5 категорий по характеристикам и спектру применения. Рассмотрим эту классификацию подробнее:

Спектр действия

Различают антибактериальные средства:

  • Широкого диапазона воздействия – их назначают при болезнях инфекционного характера с невыясненной причиной недомогания. Это бактерицидные медпрепараты, поскольку уничтожают всю патогенную флору.
  • Узкого диапазона воздействия – уничтожают грамположительные бактерии (энтерококки, листерии). После их приема погибают также грамотрицательные возбудители инфекционных болезней: кишечной палочки, сальмонеллы, протей и т.д. К этой группе относятся также противотуберкулезные, противоопухолевые, противогрибковые средства.


По составу

Антибактериальные препараты делят на 6 групп:

  • Пенициллины – первые антимикробные препараты, полученные ещё в 1928 году из биологического вещества (грибы Penicillium). Долго оставались самым популярным медикаментом для лечения инфекционных болезней.
  • Цефалоспорины – относятся к группе самых сильных противомикробных средств обширного диапазона применения. Полностью уничтожают патогенную флору, хорошо переносятся человеком.
  • Макролиды – это название группы антимикробных средств узкого диапазона. Не уничтожают больную клетку, а только останавливают её рост. В эту категорию входят такие препараты: эритромицин, спирамицин, азитромицин.
  • Тетрациклины – хорошие препараты для лечения инфекционных заболеваний дыхательных, а также мочевыводящих путей.
  • Фторхинолоны – противомикробные средства обширного диапазона воздействия. Уничтожают полностью патогенные микроорганизмы. В продаже можно встретить медпрепараты 1-2 поколения. Обычно врачи их приписывают для борьбы с синегнойной палочкой.
  • Аминогликозиды – противомикробные лекарства с большой областью применения. Популярные лекарства этой группы – стрептомицин (терапия туберкулеза, чумы) и гентамицин – используются как мазь, глазные капли, инъекции при офтальмологических инфекциях.

Поколения препаратов. У передовых антимикробных препаратов насчитывается уже шесть генераций. Например, пенициллин был первым средством природного происхождения, тогда как третья или шестая генерация – это уже улучшенная версия, которая включает в состав сильнейшие ингибиторы. Зависимость прямая: чем новее генерация, тем эффективнее воздействие препаратов на патогенную микрофлору.

По способу приема. Пероральные – принимают через рот. Это различные сиропы, таблетки, растворимые капсулы, суспензии. Парентеральные – вводятся внутривенно или внутримышечно. Они быстрее дают эффект, чем пероральные лекарства. Ректальные препараты вводятся в прямую кишку.

Важно! Принимать антибиотики допускается только после консультации с врачом, иначе разовьется антибиотикорезистентность.


Антибактериальные средства нового поколения

Новейшие антибактериальные препараты делятся на пять групп:

  • Тетрациклиновая – тетрациклин.
  • Аминогликозиды – стрептомицин.
  • Пенициллиновый ряд – амоксициллин и другие.
  • Амфениколы – хлорамфеникол.
  • Карбапенемовая группа – меропенем, имипенем, инваз.

Рассмотрим несколько известных противомикробных средств импортного и российского производства.

Амоксициллин – импортный противомикробный препарат из группы пенициллинов. Используется во врачебной практике для лечения бактериальной инфекции. Эффективен при кишечных инфекциях, гайморите, ангине, болезни Лайма, дизентерии, сепсисе.

Авелокс – медпрепарат последней генерации из группы фторхинолонов. Отличается сильнейшим воздействием на бактериальные и атипичные возбудители. Не вредит почкам и ЖКТ. Используется при острых, хронических заболеваниях.

Цефалоспорины – антибиотики третьего поколения. К этой группе относят Цефтибутен, Цефтриаксон и другие. Используются для лечения пиелонефрита, пневмонии. В целом это безопасные средства с малым количеством побочных действий. Однако их нужно принимать только после консультации с врачом. Медпрепаратов много, а какой именно выбрать – порекомендует специалист.

Дорипрекс – импортный противомикробный препарат синтетического происхождения. Показал хорошие результаты при лечении пневмонии, запущенных интраабдоминальных инфекций, пиелонефритах.

Инваз – антибактериальное средство из группы карбапенемов. Выпускается в ампулах для парентерального способа применения. Показывает быстрый эффект при лечении бактериальных расстройств кожи, мягких тканей, инфекциях мочевыводящих путей, пневмонии, септицемиях.

Аугметин – полусинтетический пенициллин третьей генерации с добавлением усиливающих ингибиторов. Педиатрами признается лучшим комплексным медпрепаратом для лечения детских гайморита, бронхита, тонзиллита и других инфекций дыхательных путей.

Цефамандол – антибактериальное средство российского производства. Относится к группе цефалоспоринов третьего поколения. Используется для лечения кишечных инфекций, возбудителей инфекций половых органов. Как противомикробное средство обширного диапазона воздействия применяется при простудных заболеваниях.


Лучшие антибактериальные препараты широкого диапазона действия

Противомикробные средства новой генерации обычно синтезируют из природного сырья и стабилизируют в лабораториях. Это помогает усилить эффект лекарства на патогенную микрофлору.

Какие препараты самые сильные? Врачи относят к таким антибактериальные средства широкого спектра воздействия. Приведем ниже краткий список препаратов по названиям:

    – относится к группе аминопенициллинов. Действует мягко, используется для лечения инфекционных заболеваний. С осторожностью и только после консультации с врачом препарат можно применять при беременности, а также в периоды кормления грудью. Выпускается в таблетках или в сыпучей форме для перорального приема, а также в порошках для инъекций. – популярный противомикробный препарат для лечения инфекций ЖКТ, мочеполовой системы, болезней дыхательный путей – ангины, бронхита, пневмонии. Воздействует на печень и почки, поэтому его не приписывают пациентам с повышенной чувствительностью к макролидам.
  • ЦЕФОПЕРАЗОН – относится к группе цефалоспоринов. Приписывается врачами для лечения инфекций мочевыводящих путей, простатита, кожных расстройств, болезней дыхательных путей. Хороший препарат для восстановления после гинекологических, ортопедических и абдоминальных операций. Выпускается в форме для парентерального приема – инъекции. – тетрациклин последней генерации. Применяется для обширного лечения инфекций ЖКТ, простудных заболеваний, простатита. Действует мягко, не вызывая дисбактериоза. – средство, которое назначают для лечения остеомиелита, сепсиса, стафилококковых инфекций. Оказывает сильнейшее воздействие на патогенные клетки, поэтому имеет длинный ряд побочных эффектов. Среди них – гипотония, слабость, головокружение. Нельзя применять при беременности, а также пациентам с печеночно-почечной недостаточностью. – макролид четвертой генерации. Основное вещество – рокситромицин. Приписывают при урогенитальных инфекциях, болезнях ЖКТ и верхних дыхательных путей. Выпускается в таблетках.
  • ЦЕФИКСИМ – по названию это средство из группы цефалоспоринов. Оказывает бактерицидное воздействие на патогенные клетки. Помогает при инфекциях ЖКТ, простатите, также лечит простудные заболевания. Достаточно токсичен, поэтому его нельзя принимать при проблемах с почками или печенью. – последняя группа цефалоспоринов. Медпрепарат показан для лечения гинекологических, урологических, простудных заболеваний. Отлично справляется с воспалительными процессами, подавляет патогенную микрофлору.

Резюме

Мы рассмотрели российские и импортные антибиотики широкого спектра действия, кратко описали классификацию препаратов. Ответим на вопрос: какие антибактериальные средства выбрать?

Важно понимать, противомикробные лекарства для обширного применения обладают токсичностью, поэтому негативно влияют на микрофлору. Кроме того, бактерии мутируют, а значит препараты теряют свою эффективность. Поэтому антибактериальные средства с новейшей структурой будут в приоритете, чем их ранние аналоги.

Читайте также: