Сколько живут яйца глистов на поверхности

Обновлено: 28.03.2024

Яйца и личинки разных гельминтов обладают разной степенью устойчивости к факторам окружающей среды. Выживаемость и продолжительность жизни яиц и личинок гельминтов зависит от биотических и абиотических факторов окружающей среды. Биотические факторы включают живые организмы и их побочные продукты. Основные абиотические факторы, влияющие на выживание паразитов в окружающей среде, это: температура, относительная влажность, время пребывания и т.д. Изучение данных факторов помогает в разработке мер по борьбе с паразитарными заболеваниями.

Ключевые слова: гельминты, гельминтозы, яйца, устойчивость, окружающая среда.

ENVIRONMENTAL FACTORS AND THEIR INFLUENCE ON THE VITALITY OF HELMINTH EGGS AND LARVAE

Zhukova A.A. 1, *, Gaidash D.V. 2 , Smirnova S.N. 3

1 ORCID: 0000-0002-0725-2089;

3 ORCID: 0000-0002-4460-0935;

1, 2, 3 Federal State Autonomous Educational Institution of Higher Education, V.I. Vernadsky Crimean Federal University, Simferopol, Russia

Abstract

Eggs and larvae of different helminths have a different degree of resistance to environmental factors. The survival and longevity of eggs and helminth larvae depend on biotic and abiotic environmental factors. Biotic factors include living organisms and their by-products. The main abiotic factors affecting the survival of parasites in the environment are as follows: temperature, relative humidity, residence time, etc. The study of these factors helps in the development of measures to combat parasitic diseases.

Keywords: helminths, helminthiases, eggs, resistance, environment.

Введение

Более 4,5 миллиарда человек в мире поражено различными паразитарными заболеваниями [1]. Известно, что паразитозы ставят под угрозу качество жизни человека с доисторических времен. Важную роль в распространении паразитозов играют свойства яиц и личинок, обеспечивающие устойчивость и способствующих распространению паразита в окружающей среде.

Основная часть

Факторы, влияющие на выживание паразитов в окружающей среде, можно разделить на биотические и абиотические факторы. Биотические факторы включают живые организмы и их побочные продукты. По данным Эль Хамури и др. различные виды водорослей (Clorella vulgaris, Scenedesmys obliguus и т.д.) способствуют элиминации яиц гельминтов в прудах [2]. Также отмечено неблагоприятное воздействие на яйца гельминтов веществами, выделяемыми корневой системой календулы, ячменя, проса и т.д. В уничтожении яиц и личинок разных гельминтов участвуют хищные простейшие, свободноживущие плоские и кольчатые черви, ракообразные, моллюски и т.д. [3].

Основные абиотические факторы, влияющие на выживание паразитов в окружающей среде, это: температура, относительная влажность, время пребывания и т.д. Часть кишечных паразиnов (Enterobius) демонстрируют цикл от хозяина к хозяину, и их яйца не нуждаются в экологической стадии созревания. Для других групп кишечных паразитов (Ascaris, Trichuris) характерен цикл хозяин-почва-хозяин, они нуждаются в инкубационном периоде для созревания их яиц. Яйца таких паразитов являются наиболее устойчивыми к неблагоприятным факторам окружающей среды.

Яйца аскариды считаются более устойчивыми, по сравнению с другими кишечными паразитами. Такая устойчивость яиц аскариды связана со сложным многослойным строением их оболочки. Наружный белковый и углеводные слои, которые прилежат к нему, обеспечивают механическую защиту от повреждений, внутренний жироподобный слой делает оболочку устойчивой к воздействию кислот и щелочей. Такое строение яйца обеспечивает защиту личинки внутри яйца в течение длительного периода времени (до 15 лет), а также обеспечивает широкое географическое распространение паразита [5]. Низкие температуры замедляют обменные процессы внутри яйца, замедляя развитие личинки, но жизнеспособность яйца при этом сохраняется. В диапазоне температур 20–30°C pH среды играет существенную роль в выживании яиц Ascaris; однако, выше 50°C, температура становится единственным наиболее важным фактором их выживания [2]. Отсутствие кислорода также не оказывает существенного влияния на их жизнеспособность [3], [4, С. 4]. В Германии вспышку аскаридоза связали с использованием сырых сточных вод для удобрения садов [6].

По сравнению с открытыми поверхностями, яйца, присутствующие в почве, защищены от солнечной радиации и высыхания, что помогает им выживать в течение длительного времени. Воздействие УФ облучения губительно для яиц паразитов, это связано с мутагенным действием УФ, что приводит к нарушению развития личинок в яйцах [7].

Менее устойчивыми к действию неблагоприятных факторов среды являются яйца ленточных червей. Так для яйц тенеид характерно наличие внутри шестикрючного зародыша-онкосферы, окруженного толстой, радиально исчерченной оболочкой (эмбриофором). По данным Стори и Филлипс жизнеспособные яйца Taenia saginata обнаруживаются через 200 дней на поверхности почвы, и что выживаемость яиц увеличивается пропорционально глубине их нахождения [8]. Однако это может иметь небольшое эпидемиологическое значение, поскольку яйца, закопанные глубоко в почву могут иметь меньшую вероятность контакта с объектами.

Яйца Echinococcus остаются жизнеспособными при температурах ниже нуля в течение длительных периодов времени, но температуры от -70 до -80°C в течение 96 и 48 ч, соответственно, инактивируют яйца [9]. С другой стороны, яйца выдерживали температуру + 65°C в течение 2 часов, но погибали через 3 часа [10]. Яйца были более устойчивы к повышенным температурам, при нахождении в воде по сравнению с воздействием на них при относительной влажности 70% [10]. Это актуально, поскольку яйца могут быть в капельках воды на зелени, овощах ит.д. Воздействие низких температур яйца тенеид переносят значительно лучше, чем высоких. Низкие температуры всего лишь замедляют развитие личинки в яйце. Так яйца T. saginata могут сохранять жизнеспоcобность при 4°C в течение 335 дней, но не после 60 дней при комнатной температуре (20°C) [11]. В естественной среде яйца тенеид могут оставаться жизнеспособными в течение длительных периодов времени. Сообщалось, что максимальное время выживания яиц E. multilocularis составляет 240 дней в условиях осени/зимы в Германии и 78 дней летом [12]. Яйца E. granulosus оставались жизнеспособными до 41 месяца в среде аргентинской Патагонии [13] и только в течение четырех зимних месяцев в Новой Зеландии [14]. Для яиц Taenia было проведено меньше исследований жизнеспособности в окружающей среде. В старых исследованиях сообщалось о заражении крупного рогатого скота после инокуляции яиц T. saginata, после 23 недель нахождения в зимних и весенних условиях в Дании, и небольшая часть яиц оставалась жизнеспособной в естественных условиях среды, в Дании через 6,5–8,5 месяцев [11], [15]. Также яйца тениид демонстрируют более высокую жизнеспособность находясь вне сегментов стробилы [13, С. 72].

Развитие личинок стронгилят лошадей и овец происходит в навозе. Яйца вылупляются в широком диапазоне температур, и скорость их развития зависит от тепловых условий. Яйца Strongyloides могут вылупиться при 45°F, но для достижения инфекционной (L3) стадии личинки может потребоваться несколько недель. При температуре 80°F личинки паразита могут стать полностью заразными в течение 5 дней после того, как яйца покинут лошадь.

После вылупления из яйца личинки первой и второй стадии активно питаются в окружающей среде, поглощая органический материал и бактерии из навоза. Личинки третьей стадии (L3), которые являются инвазионными, покрыты мембраной, которая защищает их от высыхания. У личинок L3отсутствует рот и они не могут питаться. Они выживают, используя запасы энергии, которые хранятся в клетках кишечника, и их количество очень ограничено. Черви сжигают энергию быстрее при более высоких температурах- и они умирают, когда их запасы энергии истощаются. Низкие температуры не убивают личинок, при этом снижая их энергопотребление, что способствует продлению их жизни.

В конском навозе обычно присутствует достаточное количество влаги, чтобы поддерживать развитие яиц и личинок стронгилят. Высушивание приводит к гибели большинства личинок первого и второго поколений, личинки третьего поколения более устойчивые и могут прожить при низкой влажности несколько месяцев [5, C. 251].

Необходимым условием для развития яиц и личинок стронгилят является наличие кислорода, что обеспечивается относительно рыхлой структура конского навоза [3].

Защитная наружная оболочка яиц токсокар толстая, плотная, мелкобугристая. Внутри незрелого яйца находится шаровидный бластомер, заполняющий почти все яйцо, в зрелом яйце находится живая личинка. По оценкам, загрязнение почвы яйцами Toxocara может составлять более 90% исследованных площадей по всему миру [16]. Это объясняется тем фактом, что зрелые яйца токсокар могут выживать в загрязненной почве даже в суровых условиях (например, они могут противостоять химическим веществам, широким диапазонам температур и нескольким степеням влажности), [17, С. 265-266], [18]. Жизнеспособность яиц, находящихся в окружающей среде, сохраняется в течение многих лет, что объясняет высокую вероятность заражения хозяев.

Заключение

Загрязненная окружающая среда представляет основной риск для здоровья человека и животных при данных заболеваниях. Предотвращение первоначального загрязнения и изучение факторов, вызывающих гибель яиц и личинок паразитов в окружающей среде является важным способом избежать заражения людей и животных.

Энтеробиоз — паразитарная болезнь (гельминтоз), обусловленная инвазией круглых червей в организм человека. В большинстве случаев патология развивается в детском возрасте. Характерные симптомы энтеробиоза включают зуд в области анального отверстия (преимущественно в ночное время), абдоминальный дискомфорт, снижение аппетита и уменьшение массы тела. Больные дети страдают от замедления темпов развития. Диагностика проводится с помощью лабораторных методов. Лечение консервативное.


Подробнее о заболевании

Энтеробиоз — распространенное в детском возрасте паразитарное заболевание. Обусловлено проникновением круглого червя (острицы) в кишечник. Латинское название вызывающей энтеробиоз нематоды — Enterobius vermicularis. Реже патология развивается у взрослых мужчин и женщин. Наибольший риск инвазии характерен для людей в возрасте до 15 лет. Согласно статистике, энтеробиоз может быть диагностирован примерно у половины детей в этой возрастной категории. Течение гельминтоза сопровождается обострением других болезней и ухудшением качества жизни.

Причины энтеробиоза

Паразит передается от человека к человеку. Взрослая особь обитает в нижних отделах кишечника после прикрепления к его слизистой оболочке. Самка откладывает яйца на поверхности кожного покрова вокруг анального отверстия — для этого она мигрирует в прямую кишку и выползает на поверхность кожи. Отложение яиц сопровождается сильным зудом. Пациент касается перианальной области и переносит яйца в ротовую полость (обычно дети), откуда они попадают в другие отделы пищеварительного тракта с последующим новым циклом развития. Живет особь в течение 2 месяцев. В кишке может одновременно присутствовать большое количество взрослых паразитов.

Фекально-оральный путь распространения энтеробиоза считается основным. Помимо аутоинвазии возможно заражение другого человека, если пациент перенос яйца на различные предметы и близко контактировал с людьми. В детских воспитательных учреждениях источниками инфекции часто являются игрушки и постельное белье. Зрелые яйца выживают в окружающей среде в течение 3 недель. Инкубационный период длится на протяжении двух недель.

Симптомы

Проявления энтеробиоза зависят от количества паразитов в кишечнике, продолжительности развития болезни, иммунного ответа и возраста пациента. Зуд и болезненность в области заднего прохода — основной симптом. Он возникает преимущественно в вечернее и ночное время, негативно влияет на сон. После откладывания яиц неприятные ощущения остаются на протяжении нескольких суток. Если в кишечнике большое количество круглых червей, болезненность присутствует почти постоянно.


Внешние признаки энтеробиоза можно обнаружить во время осмотра кожи вокруг ануса. Врач обращает внимание на покраснение, незначительную отечность и другие признаки воспалительного процесса. У детей зуд иногда усиливает непроизвольное мочеиспускание в ночное время. Если паразиты попадают в червеобразный отросток слепой кишки, возможно его воспаление с развитием аппендицита.

Дополнительные симптомы:

  • повышенное газообразование в кишечнике;
  • выделение рвотных масс;
  • уменьшение веса;
  • задержка развития у детей;
  • общее недомогание;
  • слабость;
  • аллергия.

У детей с длительным течением паразитарного заболевания зачастую ослаблен иммунитет. Чаще возникают инфекции и кожные воспалительные патологии. Ребенок становится нервным, раздражительным и вялым.

Осложнения

В большинстве случаев энтеробиоз не вызывает тяжелых негативных последствий. Если аутоинвазия не произошла, заболевание проходит самостоятельно. Реже появляются следующие осложнения:

  • Инфекция женской мочеполовой системы. Паразиты могут проникнуть в область влагалища и матки и вызвать воспалительный процесс.
  • Инфекция мочеиспускательного канала. Чаще диагностируется у женщин.
  • Воспаление слизистой оболочки и жировой клетчатки прямой кишки в результате расчесывания.
  • Кожные патологии: аллергический дерматит, гнойная инфекция.
  • Длительное течение патологии негативно влияет на качество жизни.

Диагностика

В зависимости от возраста пациента и проявлений энтеробиоза обследованием может заниматься педиатр, гастроэнтеролог, паразитолог, проктолог или врач другого профиля. Специалист расспрашивает больного о жалобах и уточняет анамнестические сведения. Осмотр перианальной области позволяет обнаружить внешние признаки воспалительного процесса, вызванного зудом и расчесыванием кожи. При необходимости назначается консультация аллерголога, хирурга или дерматолога.

Для подтверждения диагноза необходимо провести лабораторную диагностику. Анализ крови указывает на повышение численности эозинофилов. Врач берет соскоб и отправляют материал в лабораторию для выявления яиц паразита и его идентификации. Проводить процедуру следует утром (без подмывания) для повышения точности диагностики. Поскольку яйца червей не всегда присутствуют на поверхности кожи, рекомендуется повторить исследование еще 2—3 раза с промежутком в несколько суток. Другие диагностические процедуры иногда назначают для исключения патологий с похожими симптомами.


Лечение энтеробиоза у взрослых

Поскольку для этого вида гельминтоза характерна повторная инвазия, следует соблюдать гигиену в ходе лечения и исключить заражение через бытовые предметы. Нужно тщательно обработать постельное белье, одежду и помещение. Также необходимо состричь ногти и не забывать регулярно мыть руки.

Медикаментозная терапия, направленная на уничтожение взрослых особей и яиц круглого червя, проводится с помощью производных тетрагидропиримидина и карбаматбензимидазола. Врач выбирает оптимальное средство с учетом возраста и анамнеза больного.

Поскольку существует риск заражения контактирующих людей, аналогичные препараты могут быть назначены членам семьи пациента. При необходимости проводятся очистительные клизмы, направленные на вымывание паразита из кишечника. Для устранения симптомов кожного воспаления, зуда и аллергии врач назначает дополнительные средства: антигистаминные препараты, мази с противовоспалительным действием.

Выздоровление подтверждается отрицательным результатом повторного соскоба на энтеробиоз. Если после окончания курса терапии врач все еще обнаруживает яйца паразитов в материале, лечение продолжают. Поскольку паразиты сохраняются на поверхности предметов в течение нескольких недель, вероятность полного выздоровления зависит от обработки квартиры и личных вещей.

Для цитирования:
Долбин Д. А., Хайруллин Р. З. Устойчивость яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды (обзор литературы) // Российский паразитологический журнал. – М., 2017. – Т.39.- Вып.1 . – С.

For citation: Dolbin D. A., Khayrullin R. Z. Resistance of helminth eggs to unfavorable physical, chemical and biological factors of the environment . (Literature review) // Russian Journal of Parasitology, 2017, V. , Iss. , pp.

Устойчивость яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды

Долбин Д. А., Хайруллин Р. З.

Цель исследования – сделать анализ литературных источников по устойчивости яиц некоторых видов гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды.

Материалы и методы. Проанализированы литературные источники по изучению устойчивости яиц некоторых видов гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды.

С целью уничтожения яиц свиной аскариды был предложен метод очистки сточных вод с применением фитопланктона Clorella vulgaris и Scenedesmys obliguus. Очищенная в биопрудах сточная жидкость полностью очищается от яиц гельминтов. Установлено губительное влияние на яйца гельминтов ризосферы бархатцев, календулы, ячменя, проса. Различные простейшие организмы также оказывают влияние на выживаемость яиц гельминтов. Так, Amoeba verrucosa способна захватывать яйца аскарид и свободные личинки, вышедшие из яиц. Хищные инфузории Bursaria truncatula, Stylonichia mytilus и Stentor sp. поглощают яйца аскарид, корацидиев широкого лентеца и мирацидиев печеночной двуустки и полностью переваривают их в течение 24–72 ч. В элиминации яиц гельминтов принимают участие олигохеты, ресничные черви, водные насекомые, ракообразные и моллюски.

Ключевые слова: яйца, гельминты, устойчивость, элиминация, факторы окружающей среды, методы борьбы.

Качественная очистка помещений от навоза, помета обеспечивает удаление основной массы инвазионного начала. Однако, накапливающиеся постепенно яйца, личинки гельминтов, ооцисты и цисты простейших на полах, стенах, возле кормушек способны длительное время сохранять жизнеспособность, достигая инвазионной стадии и вызывая заражение животных.

Несмотря на необходимость проведения указанного мероприятия, чаще всего им пренебрегают. В значительной степени это обусловлено отсутствием или недостатком дезинвазионных средств. Вместе с тем в литературе сформулирована следующая концепция: основу профилактики паразитозов животных составляют интегрированные мероприятия, включающие применение биологических, технологических, экологических, санитарных, а также иммунобиологических, генетических и регулирующих методов при минимальном использовании химических средств [3].

Разработка средств дезинвазии основывается на знании параметров резистентности возбудителей к естественным и искусственным физико-химическим и биологическим факторам. Известно, что выживаемость возбудителей паразитозов зависит как от интенсивности воздействия, так и от способности биологической защиты эктогенных стадий паразитов, связанной со структурой оболочек. Разные возбудители неодинаково относятся к тем или иным средствам воздействия. Литературные данные свидетельствуют о том, что яйца большинства видов нематод, трематод, цестод и акантоцефал имеют слаборазвитую защитную систему оболочек. Исключение составляют яйца аскаридат [4].

Касаясь структуры сферы, окружающей зародыш, многие авторы называют общую оболочку яйца скорлупой. В части её строения большинство сходится во мнении, что у яиц нематод – представителей аскаридат, трихоцефалят и стронгилят имеется четыре оболочки [5]. Это подтверждено на электронно-микроскопическом уровне на примере яиц аскаридий [6]. Более ранними исследованиями у яиц аскаридат отмечено три основных оболочки: эпителиальная, глянцевитая и волокнистая. Из них последняя липоидная, растворимая эфиром, хлороформом, кислотами жирного ряда. Она пропускает воду, но задерживает соли и другие вещества.

Установлено сходство строения скорлупы яиц аскаридат и трихоцефалят. У тех и других плотная средняя оболочка, которая защищает зародыш от неблагоприятных факторов, и она намного мощнее таковой у яиц стронгилят. Это обстоятельство определяет наибольшую устойчивость яиц указанных видов гельминтов к факторам среды и позволяет использовать их в качестве тест-объектов при разработке средств дезинвазии.

Сведения по резистентности возбудителей паразитарных болезней, находящихся на стадиях яйца, необходимы при изыскании и разработке средств дезинвазии. Значительный интерес представляет сравнение устойчивости разных видов нематод с устойчивостью Neoascaris vitulorum. В этой связи представляют интерес данные о влиянии температуры, высушивания, физических и химических средств на яйца и личинки некоторых видов гельминтов.

Яйца нематод (Parascaris equorum, Ascaris suum) погибают в воде при температуре 60 °С за 25–30 с, а при 70–80 °С – за 2 с, яйца Ascaridia galli в воде при температуре 45 °С – за 2 ч, при 55 °С – за 2 с, яйца Ascaris lumbricoides при температуре 50 °С – за 5 мин, при 55–60 °С – за 5 с, а при температуре 65 °С – за 2 с. Высушивание яиц P. equorum при температуре 30–36 °С приводит их к гибели через 3–5 сут. При температуре 45 °С они погибают через 24 ч, при 50 °С – за 3–6 ч, при 55 °С – за 1 ч, при 60 °С – за 30 мин, при 70 °С – за 15 мин. Яйца аскаридий при температуре 40 °С погибают через 15 сут, при 42 °С – за 8 сут, при 44 °С – за 3,5 сут, при 47 °С – за 6 ч, при 55 °С – за 1 ч, при 60–62 °С – за 20 мин, при 70 °С – за 15 мин. Личинки стронгилят лошадей и овец 1–2-дневного возраста гибнут при кратковременном высушивании, а 5–7-суточные – выживают несколько месяцев [4].

Низкие температуры воздуха по-разному действуют на яйца и личинки гельминтов. При отрицательных температурах приостанавливаются обменные процессы и развитие яиц P. equorum, которые выживают при этой температуре около 5 лет. При температуре от 0 до минус 36 °С яйца P. equorum и стронгилят остаются жизнеспособными в течение месяца.

Эффективными для дезинвазии оказались УФ-лучи. Установлено, что они действуют на протоплазму клетки, повышая ее вязкость, повреждают ядро, вызывают мутагенное действие и уродливость личинок при высоких дозах. Эффективны на чистых культурах и в опытах с жидкими средами также ионизирующие излучения и гамма-лучи. Они угнетают эмбриогенез, вызывают гибель зародыша в яйцах гельминтов. Однако на практике для дезинвазии они по существу не применяются из-за сложности выполнения [7].

Внешняя форма яиц N. vitulorum на первый взгляд мало отличается от таковых других видов аскаридат. Яйца имеют круглую, иногда овальную форму и достигают в длину 0,075–0,09 и в ширину 0,065–0,075 мм. Наружная оболочка имеет ячеистую структуру наподобие яиц Toxocara canis. При сравнении их с яйцами P. equorum или Toxascaris leonina бросается в глаза разница в структуре внутренней волокнистой оболочки. В то время как у яиц P. equorum и T. leonina волокнистая оболочка развита очень мощно и хорошо заметна под микроскопом, у N. vitulorum она развита очень слабо и заметна лишь при большом увеличении.

Сравнительная слабость развития покровных оболочек яйца обеспечивает меньшую устойчивость неоаскарид к неблагоприятным факторам окружающей среды, в частности к высыханию и действию прямых солнечных лучей, по сравнению с другими аскаридатами. Чувствительность к высоким температурам у N. vitulorum в целом не ниже чем у других видов аскарид. При температуре 40 °С яйца паразита погибали через 48 ч, при 50 °С – через 30 мин, при 60 °С – через 5 мин, при 65 °С – через 1 мин [8].

Одним из основных методов дезинвазии помещений, средств ухода за животными в практике животноводства, а также в области медицины, является химический. Об этом свидетельствуют многочисленные исследования, которые интенсивно начали проводиться с первого десятилетия прошлого столетия. Затем эти исследования стали менее интенсивными и в последние годы очень малочисленными.

Так как средства дезинвазии должны отвечать довольно жестким требованиям (невысокие концентрации, сравнительно небольшое время экспозиции, низкая токсичность и экологическая безопасность), в настоящий момент Департаментом ветеринарии МСХиП РФ рекомендовано к применению всего 6 средств дезинвазии: едкий натрий, едкий калий, ксилонафт, сернокарболовая смесь, однохлористый йод и хлорная известь. Это придает актуальность поиску новых дезинвазионных средств.

Следует отметить, что результаты оценки эффективности средств дезинвазии у разных авторов сильно колеблются, что связано с различными критериями эффективности и условиями эксперимента. Концентрированная серная кислота вызывает гибель яиц P. equorum при экспозиции 24 ч, соляная и азотная кислоты – при 120-часовой экспозиции, 2–3%-ная серная кислота через 1–3 ч инкубации была не эффективна, 1–2 % NaOH вызывал задержку развития, также как неочищенная карболовая кислота, 1–5%-ный креолин и 4%-ная хлорная известь. Дихлорэтан через 30 ч инкубирования вызывал гибель яиц лошадиной аскариды. Крезол в концентрации 4 % приводил к гибели уже через 2 ч инкубации [4]. Карболовая кислота в концентрации 3–5 % и 5%-ный креолин вызывали гибель яиц P. equorum через 48 ч [9]. На яйца T. canis 2–3%-ный креолин, 50%-ная хлорная известь не оказывают угнетающего эффекта при экспозиции 1–3 ч, а 3%-ная неочищенная карболовая кислота при той же экспозиции приводит к задержке развития. Абсолютно губительны для яиц T. canis негашеная известь и горячая карболовая кислота [4]. Яйца A. galli показывают в опытах сравнительно меньшую устойчивость к химическим реагентам: 5%-ная хлорная известь, 3%-ный креолин, 3 % NaOH вызывали гибель через 24 ч инкубации, 5 % ксилонафт вызывал гибель 9 5% яиц через 2 ч, а совместно с 0,5 % сероуглеродом – 100%-ную гибель яиц. Гибель яиц вызывали также негашеная известь и 4%-ный карбатион через 24 и 48 ч соответственно [6]. В отношении A. suum, формалин в концентрации 4–10 % оказался не эффективным, также едкий натрий 10 % при экспозиции менее суток, при использовании горячего (60 °С) едкого натрия наблюдали частичную гибель яиц. При этом горячая вода (60 °С) сама по себе приводит к гибели 40–50 % яиц A. suum при кратковременном воздействии [5].

Особо следует отметить, что использование горячего и даже холодного 10 % NaOH до сих пор рекомендуется как эффективное профилактическое средство [10].

В целях профилактики неоаскаридозной инвазии рекомендуется в неблагополучных хозяйствах организовывать изолированное содержание стельных коров и телят до 4–5 мес и биотермическое обеззараживание навоза с последующей дезинвазией помещений, а также профилактическая дегельминтизация молодняка крупного рогатого скота, начиная с месячного возраста [12].

Биологические агенты обладают большой избирательностью по сравнению с химическими реагентами, имеют меньшее вредоносное значение для других организмов-сочленов водных биоценозов, легко вписываются в технологические циклы [13]. Поэтому введение их в экологическую систему не вызывает значительного нарушения баланса. Для борьбы с биогельминтами можно применять методы экологической профилактики – подавление численности промежуточных хозяев. Это может быть осушение пойменных водоемов, засыпка и выравнивание поймы, что способствует резкому снижению численности моллюсков в затопляемых поймах. Очевидно, что такие радикальные меры в большинстве случаев ведут к резкому нарушению природного баланса.

Элиминационной способностью в отношении яиц свиной аскариды обладают различные водоросли [14]. Был предложен метод очистки сточных вод с применением фитопланктона (накопительная культура Clorella vulgaris и Scenedesmys obliguus). Очищенная в биопрудах сточная жидкость полностью очищается от яиц гельминтов и частично от кишечной палочки. Наряду с фитопланктоном в процессе самоочищения участвуют коловратки, различные моллюски Anodonta, Unio [15].

На яйца гельминтов губительное влияние оказывает корневая система различных растений. Под влиянием корневой системы редиса и полыни разрушается 50–60 % зародышей аскарид в яйцах. Овоцидную активность проявляет ризосфера бархатцев, календулы, ячменя, проса; ризосфера викоовсяной смеси угнетает развитие яиц аскарид, сохраняя их жизнеспособность [16].

На выживаемость яиц гельминтов оказывают влияние различные простейшие организмы. Так, Amoeba verrucosa способна захватывать яйца аскарид и свободные личинки, вышедшие из яиц [14]. Хищные инфузории Bursaria truncatula, Stylonichia mytilus и Stentor sp. поглощают яйца аскарид, корацидиев широкого лентеца и мирацидиев печеночной двуустки и полностью переваривают их в течение 24–72 ч возможно потому, что те вещества, которые выделяют яйца аскариды в окружающую среду, вызывая у них отрицательную трофическую реакцию.

Не все виды животных, даже в пределах одной группы, проявляют овоэлиминационную активность как, например, равноресничные инфузории таких видов как Colpoda cuculus, Lacrymaria olor. В элиминации яиц гельминтов принимают участие виды олигохет, ресничные черви, водные насекомые [17]. Часть яиц, прошедших через кишечник червей, разрушается, другая часть проходит через кишечник без заметных изменений. Хищные олигохеты семейства Naididae элиминируют личинки филометроидеса, олигохеты Ch. limnaei, Aelosoma sp., Potamothris bedoti вызывают частичное разрушение яиц аскариды и широкого лентеца. Личинки ручейников Phryganea grandis поздней генерации поедают яйца аскарид в большей степени, чем личинки первой генерации.

Эффективными элиминаторами яиц гельминтов оказались водные насекомые с грызущим и колющим аппаратом. Насекомые используют яйца гельминтов в качестве корма: одни заглатывают и переваривают яйца, другие прокалывают скорлупу яиц и высасывают их содержимое. Первый способ элиминации присущ ручейникам и поденкам, второй – водяным клопам Corizidae [18]. В очищении среды от яиц аскарид также принимают участие различные ракообразные и моллюски. Установлено, что моллюски-фитофаги родов Lymnaea, Bradybaena, наземные Oxychilus translucidus служили дессиминаторами яиц гельминтов, в частности аскарид [19]. Моллюски-детритофаги Valvata piscinalis, Bithynia tentaculata, Planorbis sp. значительно повреждают протеолитическими ферментами своего пищеварительного тракта белковую оболочку яиц акарид, снижая тем самым их жизнеспособность.

Анализ литературных источников, комплексная оценка устойчивости яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды позволят в дальнейшем разработать эффективные противогельминтные препараты, а также средства дезинвазии.

1. Долбин Д. А., Тюрин Ю. А., Хайруллин Р. З. Получение и иммунохимические свойства комплексного аскаридозного антигена. // Вестн. Казан. технол. ун-та. – 2014. – Т. 17, № 13. – С. 266–269.

2. Осипов П. Н., Осипова Л. Н. О валеологической культуре будущего инженера. // Вестн. Казан. технол. ун-та. – 2011. – № 5. – С. 247–251.

3. Черепанов А. А. Концепция противопаразитарных мероприятий для решения научных и практических задач. // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. – 1999. – Т. 35. – С. 159–161.

4. Черепанов А. А., Кумбов П. К. Дезинвазия животноводческих помещений: состояние вопроса и перспективы исследований. // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. – 1997. – Т. 33. – С. 164–185.

5. Наумычева М. И. Стойкость яиц нематод к химическим веществам и физическим факторам: автореф. дис. … канд. биол. наук. – М., 1954. – С. 8–12.

6. Симонов А. П. Средства и методы дезинвазии объектов внешней среды при гельминтозах: дисс. … д-ра вет. наук. – М.,1976. – 300 с.

7. Лысенко А. А. Эпизоотология и профилактика при аскаридозе кур: автореф. дис. … канд. вет. наук. – М., 1939. – 16 с.

8. Давтян Э. А. К изучению биологии неоаскарид крупного рогатого скота. // Тр. АрмНИВИ. – 1942. – Т. IV. – C. 93–137.

9. Величкин П. А. Устойчивость яиц и личинок стронгилид (делафондий, альфортий) и трихонематид к обычным дезинфекторам. // Тр. Ростов. обл. н.-и. вет. опытн. станции. – 1952. – Вып. 10. – С. 77–86.

10. Абуладзе К. И. Паразитология и инвазионные болезни сельскохозяйственных животных. – М.: Агропромиздат, 1990. – С. 167–169.

11. Мирзоева Р. К. Дезинвазия объектов окружающей среды на территории Республики Таджикистан. // Мед. паразитол. и паразит. бол. – 2007. – № 2. – С. 35–36.

12. Балабекян Ц. И. Терапия при неоаскаридозе телят буйволят и некоторые данные по эпизоотологии и профилактике этого заболевания: автореф. дис. … канд. биол. наук. – М., 1956. – С. 12–16.

14. Костомарова–Никитина Л. П. Влияние Amoeba verrucosa на яйца аскариды. // Мед. паразитол. – 1967. – № 2. – C. 181–184.

15. Герасимов И. П. Научные основы современного мониторинга окружающей среды. // Изв. АН СССР. Сер. географ. – 1975. – Т. 3. – С. 13–24.

16. Николаев С. М. О влиянии корневых выделений растений на развитие яиц свиной аскариды. // Зоол. журнал. – 1968. – Т. LVII, Вып. 12. – С. 1860–1861.

17. Супряга В. Г. К вопросу о роли пресноводных беспозвоночных в эпидемиологии тениаринхоза. // Проблемы паразитологии. – 1972. – Ч. 2. – С. 306–307.

18. Илюшина Т. Л. Гидробионты как факторы, регулирующие численность популяции гельминтов рыб. // Новое в теории и практике борьбы с гельминтозами. – М.,1987. – Вып. 37. – С. 68–76.

19. Аситинская С. Е. К вопросу о роли моллюсков–детритофагов в очищении среды от яиц возбудителя аскаридоза. // Науч. тр. – Омск, 1977. –Т. 128. – С. 31–34.

Анализ крови на гельминты – высокочувствительный метод диагностики паразитов, который позволяет их обнаружить уже после первой недели от момента контакта, до того, как они достигнут половозрелого состояния и начнут активно размножаться. Исследование представляет собой серологический анализ (основанный на иммунных реакциях) и обеспечивает высокую точность результата.

Чтобы сдать анализ крови на гельминты, можно воспользоваться услугами процедурного кабинета и лаборатории Поликлиники Отрадное. Наши специалисты проводят иммунологические исследования на предмет наличия антител к антигенам гельминтов в течение 2-3 дней. Готовые результаты высылаются на электронный адрес пациента и его лечащего врача.

Наши врачи


Опыт работы: 12 лет.

Записаться на приём


Врач высшей категории
Опыт работы: 22 года.

Записаться на приём


Опыт работы: 15 лет.

Записаться на приём


Опыт работы: 19 лет

Записаться на приём


Опыт работы: 21 год

Записаться на приём


Врач высшей категории

Опыт работы: 22 года

Записаться на приём


Врач высшей категории
Опыт работы: 21 год.

Записаться на приём


Опыт работы: 9 лет.

Записаться на приём


Врач высшей категории
Опыт работы: 38 лет.

Записаться на приём


Опыт работы: 35 лет.

Записаться на приём


Врач высшей категории, кандидат медицинских наук

Опыт работы: 31 год.

Записаться на приём


Врач первой категории

Опыт работы: 22 года.

Записаться на приём

Показания к назначению анализов на гельминты

Гельминты негативно влияют на общее состояние здоровья человека. Они отравляют организм продуктами своей жизнедеятельности, “воруют” питательные вещества, нарушают иммунные реакции, процессы кроветворения и пищеварения. Некоторые виды паразитов способны проникнуть в головной мозг и привести к патологиям функционирования ЦНС, например, вызвать сбои координации и речевой функции. В тяжелых случаях глистные инвазии становятся причиной летального исхода.

Среди общих признаков паразитарной активности можно выделить следующие:

  • бессонница, беспокойство, раздражительность;
  • неожиданное похудение без видимой причины;
  • мышечная слабость;
  • ухудшение зрения, головные боли;
  • ломкость ногтей, тусклые волосы;
  • кожные высыпания;
  • увеличение печени, болезненность в правом боку;
  • хроническая усталость и слабость;
  • частые простуды и периодическое повышение температуры тела;
  • тошнота, рвота;
  • нарушения стула;
  • вздутие живота, дисбактериоз;
  • нарушения аппетита;
  • повышенное слюноотделение;
  • зуд в области анального прохода.

Самый назначаемый тип анализов для подтверждения гельминтозов – анализ кала на гельминты и соскоб на энтеробиоз. К сожалению эти виды диагностики подтверждают наличие паразитов далеко не во всех случаях. Время проведения теста может не совпасть с циклом размножения гельминта, и яйца в биоматериале будут отсутствовать. Кроме того, на ранних стадиях заражения, когда паразит еще не достиг половозрелой стадии и не начал размножаться, эти методы диагностики вовсе бесполезны.

Анализ кала на яйца глистов

В такой ситуации наиболее надежный индикатор глистной инвазии – анализ крови.

Обязательному тестированию подлежат люди следующих групп риска:

  • работники медицинских учреждений;
  • владельцы животных (собак, кошек, домашнего скота);
  • обслуживающий персонал детских садов, школ, иных воспитательно-образовательных учреждений;
  • представители сферы общественного питания и работники пищепрома.

Подготовка к сдаче анализа

Перед сдачей крови на анализ придерживайтесь общих требований подготовки:

Как проводится анализ

СПРАВКА! Среди гельминтов имеются представители нескольких различных классов: плоские черви (печеночный и легочный сосальщики), ленточные черви (цепни, эхинококк, широкий лентец) и самый обширный – круглые черви (аскариды, острицы, токсокары, онхоцерки, власоглавы). По этой причине анализ на гельминтозы проводят с определением целого пакета антител, иногда включая и некоторые виды протозойных инфекций (например, лямблий).

Помимо ИФА, существуют и другие методы анализа крови, способные выявить наличие гельминтозов у человека:

  • общий анализ крови: повышенный уровень эозинофилов может косвенно свидетельствовать о наличии глистной инвазии;
  • метод толстой капли: выявляет личинок гельминтов (микрофиллярий) в капле крови, взятой у пациента в ночное время.

Однако оба метода не обладают достаточной точностью и требуют большого количества дополнительных исследований.

Анализ крови на гельминты: расшифровка

Результат может быть отрицательным (гельминт не выявлен) или положительным (вид гельминта присутствует). В последнем случае в графе напротив указывают точный титр антитела, комплементарного антигену того или иного паразита (например, токсокары, аскариды).

СПРАВКА! Гельминты, находясь в организме человека, являются источником чуждых для него антигенов. Это провоцирует ответ иммунной реакции с выработкой антител (иммуноглобулинов). Их концентрация (титр) – надежный качественно-количественный определитель типа возбудителя. По этому титру специалист сможет определить степень заражения организма.

  • 1:100 – результат отрицательный или паразиты присутствуют в организме в очень незначительном количестве;
  • 1:400 – результат сомнительный (характерен для стадии ремиссии);
  • 1:600 – результат положительный, яркая прогрессирующая форма гельминтоза.

Еще один оценочный показатель – коэффициент позитивности:

  • до 0,9 – отрицательный;
  • 0,9-1,1 – сомнительный;
  • более 1,1 – положительный.

О степени заболевания говорят разные типы иммуноглобулинов. Повышение lgМ наблюдается уже через 5 суток от момента заражения, в то время как наличие более “медлительного” lgG говорит о сроке не менее 3 недель. Таким образом, ИФА позволяет с высокой точностью установить диагноз даже в том случае, если в организме присутствуют лишь неполовозрелые или только мужские особи.

Анализ кала на яйца глистов

ВНИМАНИЕ! При длительных хронических гельминтозах (более 10-ти лет) могут развиваться иммунодефицитные состояния, когда уровень специфических антител к паразитам может снижаться и даже опускаться ниже предельных значений. В такой ситуации для диагностики гельминтоза приходится использовать комплекс других методов, так как данные ИФА теряют свою актуальность.

Окончательной расшифровкой данных с определением интенсивности заражения и назначением подходящего способа лечения занимается врач-гельминтолог. При этом он будет учитывать не только факт самой глистной инвазии, а также общее состояние организма и сопутствующие заболевания.

В некоторых случаях результаты анализа на гельминты могут иметь спорное значение. Повторную проверку для уточнения результата следует проводить не раньше, чем через 2 недели. Для всесторонней оценки ситуации анализ крови дополняют исследованием кала на яйца глистов (для повышения достоверности тест делают несколько раз подряд).

Диагностика гельминтозов в ПолиКлинике Отрадное

Наша клиника оснащена всем необходимым для комплексной диагностики глистных инвазий – к вашим услугам современное диагностическое оборудование, опытные лаборанты, УЗИ-диагностика, консультации профильных специалистов. Удобное расположение клиники позволит быстро доставить биоматериал из любого района СВАО Москвы.

Читайте также: