Техника забора кала для бактериологического исследования при холере

Обновлено: 18.04.2024

Оснащение: стерильная пробирка с консервантом и стерильной металлической петлей, перчатки, стерильный шпатель, пеленка (если процедура выполняется в постели); ширма (если процедура выполняется в многоместной палате), клеенка, направление.

Обоснование

I. Подготовка к процедуре:

1. Собрать информацию о пациенте до встречи с ним. Доброжелательно и уважительно представиться ему. Уточнить, как к нему обращаться. Выяснить, приходилось ли ему встречаться с данной манипуляцией; когда, по какому поводу, как он ее перенес.

Установление контакта с пациентом.

2. Объяснить пациенту цель и ход предстоящей процедуры (если он с нею не знаком).

Психологическая подготовка к манипуляции.

3. Получить его согласие.

Соблюдение прав пациента.

4. Вымыть руки (гигиенический способ). Надеть перчатки.

Обеспечение инфекционной безопасности пациента и персонала.

5. Подготовить необходимое оснащение. Поставить ширму (при необходимости).

Обеспечение эффективного проведения процедуры. Обеспечение психологического комфорта.

II. Выполнение процедуры:

6. Помочь пациенту лечь на левый бок с согнутыми и приведенными к животу ногами. Примечание: если пациенту противопоказано положение на левом боку, то манипуляцию следует осуществлять в положении пациента "лежа на спине " с согнутыми в коленях и разведенными ногами.

Учет анатомо-физиологических особенностей прямой и сигмовидной кишки. Облегчение введения металлической петли.

7. Положить под ягодицы пациента клеенку, а на нее пеленку (или впитывающую пеленку).

Исключение загрязнения постели, обеспечение инфекционной безопасности.

Технология взятия материала.

9. Извлечь петлю из прямой кишки и поместить в пробирку с консервантом, не касаясь наружной стороны пробирки и других предметов. Примечание: в условиях стационара кал можно взять непосредственно из судна стерильным шпателем сразу после акта дефекации.

Обеспечение инфекционной безопасности. Обеспечение достоверности результата.

10. Убрать пеленку и клеенку и поместить их в мешок для использованного материала. Снять перчатки и поместить их в контейнер с дезинфектантом. Вымыть руки (гигиенический уровень).

Обеспечение инфекционной безопасности.

11. Помочь пациенту занять удобное положение. Накрыть его. Удостовериться, что он чувствует себя нормально. Убрать ширму, если она ставилась.

Обеспечение психического комфорта.

12. Надеть перчатки. Доставить емкость с направлением в бактериологическую лабораторию. Примечание: в некоторых случаях допускается хранение пробирки с консервантом в холодильнике при температуре 3-4 "С не более 12 часов.

ЦЕЛЬ:собрать кал для исследования на кишечную группу.

ОСНАЩЕНИЕ:

1. Стерильная пробирка с металлической ректальной петлей и консервантом;

2. Перчатки и маска;

4. Клеенка и пеленка;

6. Бланк – направление.

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА:

1. Объяснить пациенту цель и ход процедуры, получить согласие на проведение процедуры;

2. Сообщите время и место проведения процедуры.

ПОДГОТОВКА МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:

1. Подготовить необходимое оснащение;

2. Заполнить направление в бактериологическую лабораторию;

3. Поставить стеклографом номер на пробирке, соответствующий номеру на направлении;

4. Вымыть и осушить руки;

5. Надеть фартук, маску и перчатки.

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

1. Уложить пациента на бок с ногами согнутыми в коленях и приведенными к животу;

2. Раздвинуть ягодицы 1 и 2 пальцами левой руки и зафиксировать в этом положении;

3. Правой рукой взять из пробирки петлю и осторожно вращательными движениями ввести ее в прямую кишку сначала по направлению к пупку 3 – 4 см, а затем параллельно позвоночнику 4 – 6 см и собрать содержимое со стенок;

4. Извлечь петлю из прямой кишки и поместить ее в пробирку с консервантом, не касаясь краев;*

5. При необходимости материал сеется на чашку Петри со средой Плоскерева, Эндо.

ЗАВЕРШЕНИЕ:

1. Помочь пациенту одеться и поблагодарить его;

2. Пеленку сбросить в бак для грязного белья;

3. Клеенку обработать двукратным протиранием 3% хлорамином с интервалом 15 минут;

4. Снять перчатки и замочить их в 5% растворе хлорамина на час, затем утилизировать;

5. Вымыть и осушить руки;

6. Организовать доставку материала в бактериологическую лабораторию.**

Примечания: *Не брать кал с явными примесями крови;

**Материал можно доставить в лабораторию через 8 – 12 часов, при условии его хранения в термостате при температуре +36 - +37 0 С.

ПОДГОТОВКА ВАКЦИН И СЫВОРОТОК К ВВЕДЕНИЮ.

ЦЕЛЬ:обеспечить правильную подготовку иммунных препаратов к введению.

ПОМНИ! Иммунные препараты хранятся в холодильнике при Т = 0 - + 8 0 С.

ОСНАЩЕНИЕ:

1. Холодильник для хранения иммунных препаратов;

2. Иммунные препараты (вакцины и сыворотки);

3. Стерильный процедурный столик;

4. Ковшик с теплой водой;

5. Марлевые салфетки;

6. Водный термометр;

7. Стеклянная мензурка (стаканчик) – 2 шт.;

8. Шприцы, пилка для ампул, конус из фольги (для вакцин от краснухи, кори, БЦЖ);

9. Учётная документация (Форма 112, журнал регистрации прививок ф. 063, сертификат прививок).

ПОДГОТОВКА МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:

1. Контроль записи врача о препарате, его дозе.

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

1. Проверить температурный режим холодильника по журналу регистрации температуры в холодильнике;

2. Открыть холодильник и проверить температуру в холодильнике;

3. Взять коробку с препаратом, сразу закрыть дверцу холодильника;

4. Прочитать наименование препаратов, достать необходимое количество ампул и инструкцию по применению;

5. Проверить целостность ампул, отсутствие замороженного состояния;

ПОМНИ! Если препарат заморожен, то его нельзя использовать, и он подлежит утилизации.

6. Сверить маркировку ампул, серию, контрольный номер, срок годности с коробкой, для сухих вакцин проверить физические свойства вещества;

ПОМНИ! Сухие вакцины подогреваются при комнатной температуре вместе с растворителем, жидкие вакцины можно подогревать на водяной бане.

7. Поставить ампулы в стеклянную мензурку;

8. В ковшик положить салфетку и налить теплую воду (Т = 25 – 30 0 С.), проверить температуру водным термометром;

ПОМНИ! Сыворотки подогреваются на водяной бане до температуры 45 – 50 0 С., а затем остужаются до температуры 30 – 35 0

9. Поставить мензурку в ковшик на 15 – 20 минут.

10. Подогреть ампулу до комнатной температуры, оценить физические свойства раствора (согласно инструкции).

11. Поставить ампулу на процедурный столик в градуированный стаканчик (мензурку), вакцины против краснухи, кори и туберкулеза накрыть конусом из фольги.

12. Приготовить необходимое количество шприцов, стерильный лоток и стерильный материал.

ПРИМЕЧАНИЕ: если Вы обнаружили замороженный препарат, проверьте все препараты в холодильнике, если они не соответствуют требуемым параметрам, тогда все препараты списываются и утилизируются.

ТЕХНИКА ВВЕДЕНИЯ АДС, АДС-М, АД.

ЦЕЛЬ:профилактика дифтерии и столбняка.

ОСНАЩЕНИЕ:

1. Препараты АДС (АДС-М, АД);

2. Стерильный процедурный столик;

3. Стерильные ватные шарики, стерильные салфетки, пинцет;

4. Мензурка, пилка;

5. Стерильные резиновые перчатки;

6. Шприц однократного применения 2,0 мл с иглой для внутримышечной инъекции;

7. 70% раствор этилового спирта,

8. 5 ёмкостей с 5% раствором хлорамина;

9. учётная документация (форма 063/у, журнал регистрации прививок).

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА:

1. Провести психологическую подготовку пациента;

2. Объяснить цель и ход процедуры, получить согласие на проведение процедуры;

3. Сообщить время и место проведения процедуры.

ПОДГОТОВКА МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:

1. Контроль записи врача в индивидуальной карте пациента перед проведением инъекции.

2. Достать ампулы с препаратом из холодильника заранее, проверить маркировку, серию, №, срок годности, целостность.

3. Подогреть ампулу до комнатной температуры.

5. Надеть перчатки.

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

1. Оценить физические свойства раствора (согласно инструкции).

2. Протереть шейку ампулы стерильным ватным шариком, смоченным 70% раствором этилового спирта.

3. Надпилить пилкой.

4. Вторично протереть этиловым спиртом и обломить конус ампулы.

5. Отработанный материал положить в ёмкость с 5% раствором хлорамина.

6. Вскрыть одноразовый шприц (по алгоритму).

7. Шприцем набрать из ампулы препарат - 0,5 мл.

8. Вытеснить воздух в стерильную салфетку.

9. Обработать подлопаточную область двумя ватными шариками, смоченными 70% раствором этилового спирта дважды (второй шарик оставить в руке).

10. Ввести вакцину подкожно (по алгоритму п/к инъекции).

11. Извлечь иглу, обработать место инъекции шариком.

12. Замочить ватные шарики и шприц в ёмкостях с 5% раствором хлорамина.

13. Оставить пациента под наблюдением на 30 минут.

14. При отсутствии жалоб поблагодарить пациента и отпустить.

ЗАВЕРШЕНИЕ:

1. Провести нулевую дезинфекцию ампулы, иглы, шприца, шариков и салфеток, затем дезинфекцию и утилизировать.

2. Снять перчатки и замочить их в 5% растворе хлорамина на 1 час, затем утилизировать.

3. Вымыть руки, осушить.

4. Зарегистрировать данные о введении препарата в учётную документацию (Форма 063/у, журнал регистрации прививок).

Забор материала от больных осуществляется медицинским персоналом лечебного учреждения немедленно при выявлении больного и до начала лечения антибиотиками. Руководитель несет ответственность за правильность отбора проб, хранения и их доставки в лабораторию.

В зависимости от конкретных задач и условий материал может быть направлен в лабораторию в нативном виде (срок транспортировки не более 2 часов) в 1% п.в. или консервированные. У больных тяжелой формой ГЭК материал направляют в лабораторию нативным и в 1% п.в.

При обследовании больных с тяжелой формой холеры для посева достаточно 0,5мл. материала, а легкими формами энтерита – 2г. испражнений. В консервант материал следует помещать в количестве 3г. на 5-6мл. среды.

Способы отбора проб

Испражнения и рвотные массы в объеме 10-20г. стерильными ложками или стеклянными трубками с резиновой грушей переносят из судна (лотка) в стерильную банку или пробирку.

Для взятия материала у больных с обильным водянистым стулом можно использовать резиновый катетер №26 или №28, один конец которого вводят в прямую кишку, а другой отпускают в банку или пробирку. Жидкие испражнения набирают в сосуд свободно или при легком надавливании на брюшную полость – стенку.

Стерильный ректальный ватный тампон из гигроскопичной ваты вводят в прямую кишку на глубину 5-6см и собирают им содержимое со стенок кишечника. Тампон опускают во флакон или пробирку с 1% п.в., обломив часть деревянного стержня.

Желчь берут при дуоденальном зондировании в лечебном учреждении. В отдельные пробирки собирают 2 порции. Из желчного пузыря и желчных протоков материал доставляют нативным.

От умерших с подозрением на холеру берут отрезки верхней, средней и нижней частей тонкого кишечника длиной около 10см. Отрезки вырезают между двойными лигатурами, наложенными на оба конца изымаемого участка кишечника.

Желчный пузырь после перевязки протока извлекают целиком. Взятые образцы органов трупа укладывают отдельно в стерильные банки. Для отбора проб используют чистую стерильную или обмытую кипятком посуду, не содержащую даже следов дезинфицирующих растворов. Стерилизацию ее проводят автоклавированием, сухим жаром или кипячением в 1% содовом растворе. Банки или пробирки с материалом закрывают непромокающими пробками и пергаментной бумагой, укладывают в специально подготовленную для транспортировки тару и перевозят на служебном транспорте с сопровождающим.

При осуществлении эпидемического надзора за холерой исследование материала от здоровых и больных ОКЗ без подозрения на холеру при отсутствии возможности 2-х сменной работы, можно проводить в условиях односменной работы, используя 1% п.в. с теллуритом К в качестве 1 или 2 среды накопления.

Используют 1% п.в. по 5-10мл без теллурита К. Продолжительность сохранения проб при температуре до 25 0 С до 24 часов в биксах, шкафу, в специально выделенной комнате, закрывающейся на замок. В случае, когда температура больше 25 0 С материал следует брать в 5-10мл 1% п.в. с теллуритом К.

НА ВЫХОДНЫЕ ДНИ: забор материала в 50мл. 1%п.в. с теллуритом К (время при 25-60 часов, 25-30-48 часов). На флаконах или пробирках с п.в. добавляется этикетка или надпись с указанием названия среды и времени приготовления ее. В стационарах среды для отбора проб рекомендуется сохранять не более 2-х суток при температуре не выше 10 градусов.

8. Забор крови их вены на серологическое (РНГА, ИФА), биохимическое исследование.

9. Забор кала и рвотных масс на холеру (Ф 30)

10. Забор крови на гемокультуру (стерильность)

АЛГОРИТМ