Вакцинация кур против инфекционного бронхита кур

Обновлено: 19.04.2024

Оценка защитной способности комбинаций вакцин Файбро против инфекционного бронхита кур на действие полевых штаммов ИБК (QX, 793В), выделенных на территории РФ

04.06.2018

Оценка защитной способности комбинаций вакцин Файбро против инфекционного бронхита кур на действие полевых штаммов ИБК (QX, 793В), выделенных на территории РФ

Цель исследования

Оценка эффективности вакцины против инфекционного бронхита кур (ИБК) IB VAR.

Материалы и методы

Исследования проводились в ФГБНУ ВНИВИП в условиях вивария. Содержание птицы — клеточное (одноярусные клетки).

Для заражения использовали изоляты вирусов № 1 и № 2, выделенных на территории Российской Федерации, имеющих гомологию 98% со штаммами и изолятами генотипа 793В (4/91, GeneBank JN192154, AF093794; UK/2/91, GeneBank Z83976 и др.) и 94% штаммом QX соответственно.

Изоляты были выделены при проведении вирусологических исследований патологического материала (трахеи, почки, легкие), отобранного от цыплят-бройлеров 34-суточного возраста и кур-несушек 240-суточного возраста методом последовательных пассажей на СПФ куриных эмбрионах. На 5-м пассаже при заражении эмбрионов в аллантоисную полость выявлены изменения, характерные для инфекционного бронхита кур (карликовость, скрученность).

Выделенные изоляты были исследованы методом ОТ-ПЦР с последующим секвенированием ДНК. Для идентификации и типирования вируса ИБК использовались фрагменты генов нуклеокапсида N и гликопротеина S1.

СПФ цыплята суточного возраста яичного кросса. Срок содержания 43–45 дней. Цыплята были разделены на 7 групп по 20 голов в каждой.

Для содержания цыплят были задействованы 7 боксов в секции отдела микробиологии в инфекционном виварии. Каждая группа цыплят находилась в индивидуальном боксе.

Перед посадкой цыплят все помещения (в том числе оборудование), предназначенные для проведения опыта, были тщательно вымыты и продезинфицированы (влажная и аэрозольная дезинфекция).

На время проведения опыта доступ в опытные и контрольные боксы был строго ограничен. Доступ был разрешён только специально закреплённым научным сотрудникам для кормления цыплят и уборки помещений. Доступ сотрудников в боксы осуществлялся в одноразовой спецодежде и обуви, с использованием средств индивидуальной защиты (одноразовые маски, перчатки). Переодевание осуществлялось в предбокснике, оборудованном бактерицидными лампами. Перед боксами расположены дезковрики.

1-я группа — вакцинированные в суточном возрасте вакциной IB VAR 206, вакцинированные в 13-суточном возрасте вакциной IB VAR 206; заражённые полевым изолятом вируса генотипа 793В;

2-я группа — вакцинированные в суточном возрасте вакциной IB VAR 206, вакцинированные в 13-суточном возрасте вакциной IB VAR 206; заражённые полевым изолятом вируса генотипа QX;

3-я группа — вакцинированные в суточном возрасте вакцинами IB VAR и IB VAR 206, вакцинированные в 13-суточном возрасте вакциной IB VAR 206; заражённые полевым изолятом вируса генотипа 793В;

4-я группа — вакцинированные в суточном возрасте вакцинами IB VAR и IB VAR 206, вакцинированные в 13-суточном возрасте вакциной IB VAR 206; заражённые полевым изолятом вируса генотипа QX;

5-я группа — невакцинированные, заражённые полевым изолятом вируса генотипа 793В;

6-я группа — невакцинированные, заражённые полевым изолятом вируса генотипа QX;

7-я группа — невакцинированные, незаражённые (чистый контроль).

С момента проведения вакцинации и до окончания опыта за цыплятами всех групп вели ежедневное наблюдение. За весь период после применения обеих вакцин птицы всех групп оставались живыми и клинически здоровыми, что свидетельствует о безвредности препаратов специфической профилактики.

Эффективность вакцинации после заражения штаммами вирусов ИБК определяли по сохранности, клиническим признакам, частоте встречаемых патологоанатомических признаков и данным контрольного теста на цилиостаз.

Цилиостазную активность оценивали при просмотре подготовленных трахеальных колец с помощью инвертированного светового микроскопа при увеличении х20. Препараты просматривали не позднее 1,5–2 часов после убоя цыплят.


Вирус инфекционного бронхита кур (IBV), как все короновирусы, представляет собой оболочечный РНК-вирус, который вызывает у цыплят высококонтагиозное заболевание верхних дыхательных путей. Поскольку РНК-вирусы по своей природе могут быстро мутировать, когда они реплицируются в хозяине, IBV существует в виде множества различных типов и вариантов этих типов, которые практически не имеют перекрестной реактивности. Следовательно, вакцина, разработанная против одного типа вируса, скорее всего, не обеспечит адекватную защиту против другого типа. Первоначально IBV был типирован в реакциях нейтрализации специфическими вируснейтрализующими антителами, однако теперь тип IBV идентифицируется генетически с использованием последовательности поверхностного шипового гликопротеина вируса.

Генетическое типирование полевых изолятов вируса может помочь в выборе одной или нескольких коммерчески доступных вакцин для профилактики и контроля распространения заболевания, учитывая, что выбор гомологичной вакцины против циркулирующего вируса является наилучшей стратегией успеха. Если гомологичная вакцина недоступна, то комбинация нескольких типов вакцин против IBV иногда может обеспечить приемлемую защиту с целью уменьшения репликации полевого вируса, чтобы можно было предотвратить или минимизировать его передачу. Был проведен ряд исследований, посвященных изучению различных комбинаций типов IBV-вакцин против различных штаммов вирусов.

ВСТУПЛЕНИЕ

Инфекционный бронхит кур встречается во всем мире и является экономически значимым заболеванием, которое ежегодно обходится индустрии в миллионы долларов из-за сокращения производительности, выбраковки при переработке и смертности. Этиологическим агентом является вирус инфекционного бронхита кур (IBV), оболочечный одноцепочечный РНК-вирус с положительно полярной нитью, вызывающий высококонтагиозное заболевание верхних дыхательных путей у кур. В настоящее время лучшей и единственной стратегией борьбы с IBV является использование ослабленных живых и инактивированных вакцин (6). Как правило, живые вакцины вводятся бройлерам в возрасте одного дня в инкубатории, а иногда и в полевых условиях в возрасте от 14 до 18 дней. Инактивированные вакцины против IBV, необходимо вводить после обязательной первичной вакцинации живой вакциной племенным птицам или несушкам для обеспечения длительного иммунитета. Независимо от типа используемой вакцины, сложно обеспечить полноценную защиту, потому что разные типы IBV не обеспечивают перекрестную защиту. Кроме того, должное применение живых и инактивированных вакцин является весьма проблематичным, а неправильное использование оборудования, обращение с вакциной, неправильная техника введения и снижение дозы могут привести к увеличению распространения вируса на предприятиях.

Целью вакцинации против IBV является предотвращение клинических признаков заболевания, но также важно уменьшить репликацию вируса и его последующую передачу. Как и все позитивные РНК-вирусы, IBV обладает огромной способностью развивать генетическое разнообразие, когда он размножается. Коронавирусы – это одноцепочечные РНК-вирусы с положительно полярной нитью. Очень большой вирусный геном (~ 32Kb) кодирует РНК-зависимую РНК-полимеразу вируса (RdRp, гены 1a и 1ab), 4 структурных белка (Spike [S], Membrane [M], Envelope [E] и Нуклеокапсид [N]) и многочисленные регуляторные белки.

Диагностика IBV выполняется с использованием молекулярных методов. Вирусная РНК может быть обнаружена с помощью обратной транскрипции с полимеразной цепной реакцией и ОТ-ПЦР в реальном времени. Тесты предназначены для выявления всех штаммов IBV с последующим секвенированием гена S1 для определения генетического типа или ПЦР в реальном времени по конкретным типам. Определение текущего типа (ов) IBV, циркулирующих в окружающей среде, необходимо для выбора эффективных вакцин и разработки соответствующих стратегий вакцинации для борьбы с вирусом.

ВАРИАНТЫ IBV

Генетическое разнообразие среди штаммов IBV генерируется посредством мутаций, вставок и случаев рекомбинации при репликации вируса. У очень большого вирусного генома частота мутаций достигает 1,2 × 10 3 прайм / сайт / год. Этот высокий уровень мутации способствует появлению множества вариантов вируса в циркуляции. S-гликопротеин является наиболее изученным структурным белком, обнаруженным в коронавирусах. Гликопротеин S состоит из двух субъединиц, обозначенных S1 и S2, и образует выступы в форме шипов на поверхности вирусных частиц (2). Субъединица S1 опосредует прикрепление клетки-хозяина и по большей части отвечает за специфичность клетки-хозяина.

Кроме того, нейтрализующие антитела направлены против субъединицы S1 (1). Субъединица S2 закреплена в оболочке вируса и нековалентно связана с S1. Антигенное разнообразие (штаммы вируса) генерируется, когда в гене спайка происходят мутации, вставкии рекомбинации. Это может привести к значительному различию шипа на поверхности вируса и, следовательно, к новому генетическому и антигенному типу IBV. Обзор литературы выявил ряд вирусов с признаками рекомбинации, но в целом новые типы IBV почти всегда появляются в результате мутаций в S, накапливающихся с течением времени и называемых дрейфом генов. Когда вирус может свободно размножаться и передаваться не защищенным или частично защищенным птицам, мутации накапливаются, и, в дальнейшем, будут сохраняться. Если мутации находятся в гене S, результатом будет в конечном итоге появление нового штамма IBV.

IBV И ТРАНСМИССИЯ

Чтобы разработать эффективную стратегию вакцинации для борьбы с IBV, необходимо знать, какие штаммы вируса циркулирует в популяции коммерческой птицы. Также важно поддерживать своевременную программу эпиднадзора для отслеживания этого постоянно меняющегося вируса, чтобы вакцины могли быть соответствующим образом обновлены. Эффективная вакцинация против IBV значительно снижает репликацию вируса и останавливает передачу вируса. Среднее число новых инфекций, вызванных одной инфицированной особью (R0), для IBV оно составляет 19,95. Это означает, что 1 зараженный цыпленок может распространить вирус почти на 20 восприимчивых цыплят. Однако R0 для полностью защищенной курицы составляет 0,69 (4). Однако, когда R0 больше 1, вспышка заболевания продолжит распространяться; когда R0 меньше 1, вспышка исчезнет. Следовательно, вакцинация имеет два важных результата. Она снижает R0 до числа менее 1, чтобы вспышка заболевания не распространялась, и она уменьшает репликацию вируса, тем самым уменьшая вероятность появления новых вирусов.

IBV контроль

Отсутствие защиты или частичная защита от циркулирующих вирусов не является редкостью и может быть связано с плохой перекрестной защитой после используемых вакцин или неправильной техникой вакцинации. Кроме того, вакцины при неправильном применении могут сохраняться в стаде и потенциально стать вирулентными. Хорошо известно, что IBV с совершенно разными белками шипов не защищают перекрестно и что гомологичные аттенуированные живые вакцины обеспечивают наилучшую защиту (6). Однако у нас нет гомологичных аттенуированных живых вакцин для всей разновидности штаммов IBV, обнаруженных у цыплят. Тип IBV определяется перекрестно-реактивными нейтрализующими антителами (серотип), последовательностью белка S1 (генетический тип) или перекрестной защитой у цыплят (прототип). Большинство диагностических исследований в настоящее время определяют генетический тип вируса, а генетический тип по большей части коррелирует с серотипом. Однако, как правило, перекрестная защита уменьшается с уменьшением процентного сходства в последовательности белка S1; было показано, что некоторые типы вакцин обеспечивают лучшую перекрестную защиту, чем другие. Вероятно, степень консервативных областей в белке шипа между различными типами IBV способствует перекрестной защите. Кроме того, сила иммунного ответа также может способствовать перекрестной защите, а количество полученных вакцин и комбинация различных типов вакцин против IBV могут максимизировать выработку перекрестно-защитных антител. Следует признать, что перекрестная защита у кур не может быть предсказана с определенной уверенностью и должна быть проверена in vivo (3).

Разработка стратегии вакцинации как гомологичными типами вакцин, так и в комбинации с гетерологичными вакцинами, вводимыми многократно, является важным инструментом контроля IBV, потому что это может снизить репликацию циркулирующего вируса ниже уровня передачи, предотвратить, или, по крайней мере, замедлить появление новых антигенных штаммов IBV, которые могут вызывать заболевание.

РЕЗЮМЕ

Коронавирус IBV распространен во всем мире и наносит значительный экономический ущерб. Борьба с IBV в значительной степени осуществляется с помощью живых аттенуированных и инактивированных вакцин, но вызвать защиту сложно, поскольку разные типы IBV не обеспечивают перекрестную защиту. Различные типы IBV генерируются, когда вирус реплицируется, и хотя рекомбинация может играть свою роль, по большей части репликация, приводящая к мутациям, делециям и вставкам в гене гликопротеинового шипа, накапливающимся со временем (генетический дрейф), чаще всего приводит к появление новых типов IBV. Вакцинация, если она проводится неправильно или используется неправильный тип вакцины или комбинация типов вакцин, обеспечивает лишь частичную защиту, которая позволяет циркулирующим вирусам продолжать реплицироваться и передаваться среди цыплят, обеспечивая возможность возникновения мутаций.

Если эти мутации происходят в гене S, они могут привести к появлению новых вариантов вирусов, потенциально способных вызвать заболевание. Ключом к программе контроля для IBV является широко распространенное и своевременное наблюдение. Знание штаммов IBV, циркулирующих в настоящее время в данной области, имеет решающее значение и будет гарантировать, что выбранные вакцины и программа вакцин являются наилучшей стратегией для борьбы с этим экономически важным заболеванием.

ЛИТЕРАТУРА

  1. Boursnell, M., M.M. Binns, T. Brown, D. Cavanagh and F.M. Tomley Molecular biology of avian infectious bronchitis virus. Karger, New York. 1989.
  2. Cavanagh, D. Coronavirus avian infectious bronchitis virus. Vet Res 38:281-297. 2007.
  3. Cook, J.K.A., Orbell, S. J., Woods, M. A., Huggins, M. B. Breadth of protection of the respiratory tract provided by different live-attenuated infectioius bronchitis vaccines against challenge with infectious bronchitis viruses of heterologous serotypes. Avian Pathology 28:477-485. 1999.
  4. de Wit, J.J., M.C. de Jong, A. Pijpers and J.H. Verheijden Transmission of infectious bronchitis virus within vaccinated and unvaccinated groups of chickens. Avian pathology : journal of the W.V.P.A 27:464-471. 1998.
  5. Jackwood, M.W. Review of infectious bronchitis virus around the world. Avian Dis 56:634- 641. 2012.
  6. Jackwood, M.W. and S. de Wit Infectious Bronchitis. In: Diseases of Poultry, 13 ed. D.E. Swayne, J.R. Glisson, L.R. McDougald, L.K. Nolan, D.L. Suarez and V. Nair, eds. John Wiley and Sons, Inc. pp 139-159. 2013.

Таблица 1. Некоторые важные типы IBVв США и Мексике

Рис. 1 Филогенетическй анализ. показывающий генетическое взаимоотношение для протеина S1 среди штаммов IBV

Изображение отсутствует

По внешнему виду вакцина представляет собой сухую массу в форме шариков кремового цвета.

1.3 Вакцина выпускается в герметичных банках с алюминиевым покрытием по 1000, 5000 или 10 000 доз, упакованных в картонные коробки.

1.5 Вакцину транспортируют и хранят в защищенном от света месте при температуре от плюс 2 °C до плюс 8 °C.

Растворитель — от плюс 2 °C до плюс 25 °C.

1.6 Срок годности вакцины — 15 месяцев от даты изготовления при соблюдении условий хранения и транспортировки.

После восстановления вакцину следует использовать в течение 2 часов.

Запрещается использовать лекарственный препарат по истечении срока годности.

2. ФАРМАКОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА

2.1 Вакцина вызывает выработку специфических антител против вируса инфекционного бронхита кур.

2.2 Вакцина безвредна и ареактогенна.

2.3 Иммунитет развивается у привитых цыплят в течение 3 недель после вакцинации и сохраняется не менее 8 недель.

3. ПОРЯДОК ПРИМЕНЕНИЯ ВЕТЕРИНАРНОГО ПРЕПАРАТА

Вакцинируют только здоровых птиц.

3.2 Вакцину применяют спрей-методом или интраназально/ окулярно.

Для восстановления вакцины и приготовления рабочего раствора используют воду, свободную от ионов хлора, железа и детергентов (дистиллированная).

Рабочий раствор готовят непосредственно перед применением вакцины.

Распылитель должен быть свободен от посторонних частиц, коррозии металла и остатков дезинфектантов.

Используют распылитель постоянного давления, способный производить крупнокапельное распыление, при среднем диаметре капель от 130 до 150 микрон.

Количество воды на 1000 птиц будет зависеть от используемого оборудования.

Необходимо руководствоваться инструкцией по использованию распылителя.

Рекомендуется для цыплят суточного возраста брать 0,25-0,5 л воды на 1000 голов птиц.

Восстановленную в воде вакцину следует распылять с высоты 30-40 см над головами птиц, предпочтительно, когда птицы сидят вместе при тусклом освещении.

Контролем правильно проведенной иммунизации должно служить слегка намокшее оперение птиц.

Спрей-обработку можно применять только в случае, когда известно, что это безопасно для птиц.

Также необходимо отключить все системы вентиляции и обогрева и закрыть вентиляционные шахты.

Включить вентиляцию и отопление и восстановить уровень освещения через 15 минут после вакцинации.

3.2.2 Интраназальный/окулярный метод.

Каждой птице на конъюнктиву глаза или в ноздрю наносят с помощью капельницы, входящей в комплект с растворителем, 1 каплю (0,03 мл) восстановленной вакцины.

Следует избегать контакта капельницы с конъюнктивой глаза, а также убедиться, что капля была втянута птицей.

Следует применять для вакцинации такие же объемы, как и для одного препарата.

Срок хранения восстановленных вакцин — 2 часа.

3.5 Вакцинация может вызвать легкую транзиторную респираторную реакцию, длящуюся в течение нескольких дней.

3.6 Убой птиц на мясо разрешается без ограничений.

4. МЕРЫ ЛИЧНОЙ ПРОФИЛАКТИКИ

4.1 После проведения вакцинации необходимо вымыть и продезинфицировать руки, а оборудование вымыть без применения дезинфектантов и моющих средств.

4.2 При применении вакцины аэрозольным способом необходимо использовать индивидуальные средства защиты, в частности, маску для защиты глаз.

5. ПОРЯДОК ПРЕДЪЯВЛЕНИЯ РЕКЛАМАЦИЙ

5.1 В случае возникновения осложнений после применения препарата его использование прекращают, и потребитель обращается в Государственное ветеринарное учреждение, на территории которого он находится.

Ветеринарными специалистами этого учреждения производится изучение соблюдения всех правил по применению препарата в соответствии с инструкцией.

6. ПОЛНОЕ НАИМЕНОВАНИЕ ИЗГОТОВИТЕЛЯ

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Изображение отсутствует

СЕВАК®Ай Берд, CEVAC® ІBird - вакцина живая лиофилизированная против инфекционного бронхита птицы.

Одна доза вакцины содержит:

  • Вирус инфекционного бронхита птицы,
  • вариантный штамм "1/96" - по меньшей мере 2,8 log10 ЭИД50.
  • Вспомогательные вещества:
  • Желатин - не больше 10 мкг,
  • Гидроксипропилбетадекс - не более 100 мкг,
  • Сахароза - не более 200 мкг.

Фармацевтическая форма

Иммунобиологические свойства

Вакцина применяется для активной иммунизации птицы против инфекционного бронхита.

После вакцинации иммунитет формируется в течение 21 суток и продолжается в течение 6 недель.

Вид животных

Показания к применению

Вакцина предназначена для активной иммунизации птицы против инфекционного бронхита.

Противопоказания

Меры предосторожности

Вакцинировать только клинически здоровую птицу.

Вся птица, которая содержится в одном помещении, должна быть вакцинирована одновременно.

Растворенную вакцину использовать в течение 2-х часов.

Взаимодействие с другими средствами

Способ применения и дозы

Вакцину применяют однократно цыплятам-бройлерам, начиная с односуточного возраста и старше, курам-несушкам - начиная с 10-суточного возраста и старше.

Цыплятам-бройлерам вакцину применяют спрей-методом или окулярним / интраназальным методом, курам-несушкам вакцину применяют методом выпаивания.

Окулярный / интраназальный метод.

Вакцину растворяют из расчета 1000 доз вакцины на 30 мл стерильной дистиллированной воды.

Каждой птице при помощи глазной пипетки наносят на конъюнктиву глаза или в носовую щель 1 каплю (0,03 мл) растворенной вакцины.

Спрей-метод.

Для крупнокрапельного распыления вакцины используют специальные генераторы (распылители), которые обеспечивают образование и распыление капель диаметром 70-120 мкм при постоянном давлении 2 бар.

Распылители должны быть коррозийно-устойчивы и не содержать остатков дезинфектантов.

Рабочий раствор вакцины готовят каждый раз непосредственно перед применением вакцины, используя чистую питьевую воду, свободную от ионов хлора и железа, из расчета 250-400 мл на 1000 доз вакцины, в зависимости от возраста птицы.

При вакцинации суточных цыплят их помещают в ящики, которые плотно устанавливают в один ряд и равномерно распыляют вакцину.

Можно использовать специальные спрей-кабинеты (боксы), оборудованные стационарными распылителями.

При вакцинации цыплят в птичниках систему вентиляции и обогрева необходимо отключить, закрыть вентиляционные отверстия, снизить уровень освещения.

Вакцину распыляют над птицей на расстоянии 30-40 см.

Показателем правильно проведенной иммунизации является слегка намокшее оперение птицы.

Через 15 минут после вакцинации следует включить систему вентиляции и отопления, восстановить уровень освещения.

Метод выпаивания.

Пластиковые поилки, используемые для выпаивания вакцины, тщательно моют без применения дезсредств.

Количество поилок должно обеспечивать свободный доступ к вакцине всего поголовья птицы.

Для растворения вакцины используют чистую питьевую воду, свободную от ионов хлора и железа, температурой не выше +20°C и пластиковую посуду.

Объем вакцинного раствора рассчитывают в соответствии с объемом потребления воды птицей в течение 2-х часов.

Флаконы с вакциной следует открывать под водой.

Перед вакцинацией птицу выдерживают без воды и корма в течение 1,5-3 часов.

Кормление и поение птицы разрешается через 2 часа после проведения вакцинации.

Побочные эффекты

При строгом соблюдении инструкции никаких системных или местных реакций не отмечают.

Период выведения

Специальные предостережения для лиц и обслуживающего персонала, которые применяют ВИП

При работе с вакциной пользуйтесь средствами индивидуальной защиты (перчатки, защитные очки, маска для лица), соблюдайте правила личной гигиены.

Особые меры безопасности при обращении с неиспользованным ВИП, способы его обезвреживания и утилизации

Неиспользованный продукт или его остатки необходимо обезвредить согласно местным (государственным) правилам.

Упаковка

Стеклянные флаконы по 500, 1000, 2500, 5000 и 8000 доз, закупоренные резиновыми пробками и алюминиевыми колпачками, упакованные в коробки, по 20 флаконов в каждой.

Условия хранения и транспортировки

В защищенном от света месте при температуре от +2 °C до +8°C.

Срок годности

Растворенную вакцину следует использовать в течение 2 часов.

Название, местонахождение и место осуществления деятельности владельца регистрационного удостоверения

Сева Санте Анималь, 10 авеню де ла балластиере, 33500 Либурн, Франция.

Название, местонахождение и место осуществления деятельности производителя

Сева-Филаксия Ветеринари Байолоджикалс Ко Лтд, 1107 Будапешт, Сзаллас 5, Венгрия.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Читайте также: