Взятие крови на туберкулез у крс

Обновлено: 25.04.2024

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

Условия взятия крови и ее сохранность до начала лабораторных исследований имеют важное значение при получении достоверных результатов. Во многом эти результаты зависят от техники взятия крови и используемых при этой инструментов.

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием.

На результаты лабораторных исследований могут влиять факторы, связанные с индивидуальными особенностями и физиологическим состоянием организма животного, такие как: возраст; эмоциональное состояние и психический стресс; климатические и метеорологические условия и др.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных.

Рекомендуется произвести дегельминтизацию животных за 2 недели до взятия крови.

В целях отсутствия получения ложно-положительных результатов исследований рекомендуют брать кровь не позднее, чем за три недели до отела и не ранее чем через 3 недели после отела.

На точность и правильность результатов также оказывает влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, шприцы и др.), пробирки, в которые берется, а в последующем хранится и транспортируется кровь, а также условия хранения и подготовки пробы к анализу.

Традиционные и широко используемые в настоящее время способы взятия крови с помощью иглы и/или шприца оказываются основными источниками лабораторных ошибок, приводящих к низкому качеству результатов анализов. Кроме того, эти методы не могут быть стандартизованы и не обеспечивают безопасность персонала, берущего кровь.

При взятии проб венозной крови методом самотека с использованием иглы и обычных пробирок высока вероятность попадания крови животного на руки ветеринарного специалиста. В этом случае руки ветеринарного работника могут стать источником передачи и распространения возбудителей гемоконтактных инфекций другому животному путем контаминации кровью инъекционной ранки. Ветеринарный работник сам может заразиться от источника инфекции.

Использование медицинского шприца с иглой для взятия крови следует также избегать из-за его недостаточной безопасности для ветеринарного персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе пробы под давлением в пробирку.

Взятие крови с использованием вакуум-содержащих систем:

Для взятия проб венозной крови наиболее предпочтительно использовать вакуум-содержащие системы. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт ветперсонала с кровью животного.

Речь идёт не только об упрощении процедуры взятия крови, что само по себе немаловажно, но и о значительном снижении процента преаналитических ошибок, увеличении безопасности процедуры, снижении риска заражения скота, сохранения уровня надоев после процедуры и отсутствия осложнений у животных после взятия крови.

Вакуум-содержащая система представляет собой закрытую двухкомпонентную систему - вакуумный шприц-контейнер и специальную иглу. Выделение сыворотки или соединение крови с антикоагулянтом происходит в том же объёме шприца, в который берётся кровь, то есть после взятия крови сам шприц является транспортной пробиркой с антикоагулянтом или сывороткой.

Под действием вакуума кровь втягивается через иглу вакуумной системы напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

На основе возможностей вакуум-содержащихх систем был разработан новый метод взятия крови у крупного рогатого скота из хвостовой вены:

Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).
Для взятия крови животное не фиксируют.
Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают вверх.
Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода.
Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

1. Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)

2. Отсутствие фиксации животного;

3. Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;

4. Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС)

5. Минимизация осложнений и стресса у животных;

6. Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений

7. Возможность получения стерильной крови.

Взятие крови с использованием кровобрательных игл и пробирок:

Иглы для взятия крови должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не травмировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения эритроцитов. Иглы перед взятием крови обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, а кожу дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

У крупного рогатого окота кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Брать кровь для получения сыворотки надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования берут по 7-10 мл крови от крупного рогатого скота.

При взятии крови из яремной вены иглу вкалывают на границе перехода верхней трети шеи в среднюю. Чтобы вызвать достаточное наполнение вены и уменьшать ее подвижность, вену сдавливает в середине шеи резиновым жгутом или пальцем. При проколе вены необходимо держать иглу в руке так, чтобы направление ее совпало с линией хода вены и чтобы срез иглы был направлен вверх, к голове. Иглу вкалывают под острым углом – в 20–30°. При попадании в вену из иглы вытекает кровь.

Кровь должна стекать по стенке пробирки по избежании разрушения эритроцитов и при необходимости немедленно смешиваться с достаточным количеством антикоагулянта.

Перед извлечением иглы из вены резиновый жгут снимают, пережимают вену пальцем выше места вкола, иглу извлекают, а место вкола некоторое время сдавливают тампоном для предотвращения образования гематомы. В заключении область венепункции дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).
Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).
Необходимость фиксации животного.
Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).
Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).
Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Хранение проб крови и сыворотки крови:

Цельную кровь, плазму и сыворотку для непродолжительного хранения помещают в холодильник (+2…+4°С), длительное хранение сыворотки требует температуры – 20°С.

Сыворотку крови получают методом отстоя. Для свертывания крови и отстаивания сыворотки пробирки с кровью выдерживают 30-60 мин при 20-30°С или 37-38°С, сгусток крови от стенок отделяют стальной спицей, а затем пробирки выдерживают при 4-10°С 20-24 ч.

Отстоявшуюся сыворотку сливают в сухие стерильные пробирки, закрывают пробками и направляют в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

Нарушение условий хранения проб может стать причиной погрешностей анализа. В результате длительного стояния сыворотки, над эритроцитами могут наступить сдвиги в концентрации ряда компонентов: повышается концентрация калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы, понижается содержание глюкозы вследствие гликолитических процессов.

При температуре около 20°С в цельной крови возрастает содержание аммиака, многие ферменты даже при температуре холодильника быстро теряют свою активность (креатинкиназа, кислая фосфатаза), в лактатдегидрогеназа, напротив, быстрее теряет активность при низких температурах.

Возникший при взятии или хранении гемолиз эритроцитов приводит к повышению концентрации калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы.

Неумелое встряхивание проб при перемешивании их содержимого или при транспортировке также может вызвать гемолиз эритроцитов.

Сыворотка крови должна быть доставлена в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом, её необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки.

Раствор карболовой кислоты необходимо подливать по каплям при постоянном встряхивании пробирки с сывороткой.

Сыворотку или кровь можно консервировать также борной кислотой (в порошке) из расчета 0,05-0,07 г (на кончике скальпеля) на одну пробирку с кровью (сывороткой).

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного.

Пробирки с кровью и сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах

Взятие крови для гематологических исследований

Кровь для гематологических исследований берут из ярёмной или каудальной (хвостовой) вены в специальные системы забора крови с антикоагулянтом или в пробирки с антикоагулянтами. В качестве антикоагулянтов используют трилон Б (ЭДТА-динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты) из расчета 0,1 мл 10 %-ного раствора на 1 мл крови, гепарин (5ед. на 1 мл крови) или 6%-ный раствор лимоннокислого натрия (0,1 мл на 1 мл).

Для предотвращения свертывания крови содержимое пробирки сразу же тщательно перемешивают. Стабилизированную кровь до исследования хранят в холодильнике при температуре 2-4 0 С и исследуют не позднее, чем через 36 часов с момента взятия.

В своей практической деятельности ветеринарным специалистам при выполнение плана противоэпизоотических мероприятий, а также при исключении тех или иных инфекционных заболеваний приходится проводит взятие проб крови от животных. При этом у лошадей, крупного рогатого скота, верблюдов, оленей, овец и коз кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи. Иглы для взятия крови обязательно стерилизуются кипячением. Кровь берется от каждого животного отдельной иглой. В последние годы забор крови от животных проводится вакуумными пробирками или одноразовыми шприцами из подхвостовой вены.

1. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригается, кожа дезинфицируется 70% спиртом.

2. При взятии крови специалист должен следить, чтобы кровь стекала по стенке пробирки струей, а не каплями. Кровь, взятая каплями и вспененная, скорее гемолизируется и часто дает неправильные результаты показаний при исследовании. Во время взятия крови ветспециалист должен следить, чтобы кровь не попадала в кормушку и на землю. Для этого ветспециалист при взятие крови из вены должен пользоваться тазиком с дезинфицирующей жидкостью, куда спускают первую порцию крови.

У свиней кровь берется из уха (иглой или шприцем) или из кончика хвоста. Хвост перед взятие крови обмывают водой с мылом и дезинфицируют 70% спиртом, затем кончик отрезают ножницами. После взятия крови кончик хвоста обрабатывают йодом, перевязывают или прижигают.

У птиц кровь берут из вены крыла или гребешка. Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животного.

3. Объем: Для серологического исследования от крупных животных кровь берут в количестве 7-10мл, а от мелких животных в объеме 2-4мл.

4. Взятую кровь выдерживают около часа при температуре 30-35 градусов для свертывания, а затем выносят в прохладное помещение для отстаивания.

5. Сроки доставки: сыворотка крови должна быть доставлена в ветлабораторию, в течение первых суток. И в исключительных случаях не позднее третьего дня после ее взятия.

6. При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом ее необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9мл сыворотки 1мл раствора карболовой кислоты или 1-2капли раствора на 1мл сыворотки.

Сыворотку можно консервировать также высушиванием. Для высушивания сыворотку наносят на фильтровальную бумагу размером 5*5см в количестве 0,4мл и выдерживают в комнате при рассеянном свете до полного высыхания. После этого на каждой бумаге с высушенной сывороткой делают соответствующие записи карандашом и завертывают в пергаментную бумагу (каждую пробу отдельно), а затем упаковывают в конверт и в таком виде отсылают в лабораторию.

7. Для серологического исследования в лабораторию особенно от вблизи расположенных хозяйств можно отправлять и цельную кровь, не отделяя сыворотку, но при условии, что в пути ее не будут встряхивать и она не подвергнется гемолизу.

8. Маркировка: на каждой пробе сыворотки крови или крови указывают ее порядковый номер, инвентарный номер животного (кличку животного, фамилию владельца животного).

9. Оформление: к сопроводительному письму на пробы крови, направляемые в плановом порядке для серологического или гематологического исследования, прилагается опись проб в 2-х экземплярах. Смотри приложение №1. (doc)

Материал для лабораторных исследований отбирают от каждого животного в отдельности, отдельными инструментами Для бактериологического исследования и ПЦР – диагностике направляют в обязательном порядке л/узлы : подчелюстные, заглоточные, бронхиальные, средостенные, портальные, брыжеечные, лимфоузлы илеоцекального соединения и подвздошной кишки, кусочки внутренних органов (легкие, печень, почка) направляют только при наличии туберкулезных изменений вместе с участком со здоровой тканью :

Парные л/узлы берут с обоих сторон туши(трупа) животных

л/узлы, не имеющие при прощупывании очагов уплотнения, направляют в лабораторию целиком, без надрезов.

Отобранные от каждого животного материал группируют и упаковывают по пробам отдельно в пакеты.

1. л/узлы подчелюстные, заглоточные, бронхиальные, средостенные и кусочки легких с изменениями

2. л/узлы портальные, области илеоцекального соединения и подвздошной кишки, брыжеечные и кусочки пораженной печени

трупы (тушки) птиц, пушных зверей в лабораторию направляют целиком.

для ПЦР диагностике.

Материал для бактериологического и ПЦР исследования доставляют в свежем виде в день взятия или на следующий день сохраняя при Т от 2 до 8°С. Допускается замораживание материала на несколько дней при температуре не выше -16°С весь отобранный материал доставляется в лабораторию в сумке холодильнике вместе с хладоэлементами

Гистологического исследование проводят только при дифференциальной диагностике патологоанатомических изменений, которые могут быть характерны как для туберкулеза, так и для актиномикоза, нокардиоза, коринебактериоза, паразитарных поражениях, паратуберкулезе.

Материал отбирают от свежих трупов или убитых животных не позднее 12ч., а летом 2-3ч. После смерти или убое.

Пат материал отбирают аналогично как для ПЦР диагностике и бактериологическом исследовании

фиксируют в 10%-ном нейтральном водном растворе формалине.

Весь отобранный материал маркируют, указывая № пробы.

На отправленный в лабораторию материал составляют сопроводительный документ установленной формы с указанием результатов аллергических и патологоанатомического вскрытия. К сопроводительной обязательно прилагается опись проб с указание № пробы, дата отбора, ФИО владельца, адрес, названия хозяйства.

Сроки исследования на ПЦР диагностику по мере поступления материала, но не более 2-х нед.

Бактериологическое исследования при положительном результате 6 мес

При отрицательном 3мес

Гистологичесское исследования до 20 дней.

Исследование проб объектов внешней среды на наличие атипичных микобактерий

Исследование проводят для выявления источника сенсибилизации животных в хозяйствах, где выявлены атипичные микобактерии.

Отбор проб

Пробы сена, соломы, концентрированных кормов, торфа, почвы, опилок, воды, смывов с поверхности различных предметов помещают в стерильную посуду. В лабораторию направляют среднюю пробу массой до 200г.

Пробы почвы (земля, навоза, торфа) берут на глубину до 15 см лопаткой в 3-5 местах по 50-100г., из них составляют среднюю пробу, которую помещают в широкогорлую банку или полиэтиленовый пакет.

Первичные пробы грубых кормов (сена, солома) берут из разных мест скирды (стога) при помощи ножниц и пинцетов из расчета 1 проба массой не менее 40г. на 4 м 2 площади скирды.

Корнеплоды (клубнеплоды) в зависимости от величины отбирают из расчета 1-3 шт. на 4 м 2 площади бурта, отсека хранилища. С отобранных корнеплодов скальпелем срезают поверхностный слой в местах, где имеются остатки земли, помещают полиэтиленовый пакет.

Пробы силоса, хранящегося в ямах, отбирают как и пробы почвы, а вынутого из траншеи- как пробы зеленой массы.

Пробы зернофуража берут из поверхностных слоев со стороны устья мешка (совочком, шпателем) и из нескольких мест с боков и снизу (металлическим щупом). Отобранную навеску (500-1000г.) помещают в стерильную банку (полиэтиленовый мешок).

Первичные пробы фуража, хранящегося насыпью в закормах, открытых ларях, ящиках и пр., массой не менее 100г. отбирают из расчета 1 проба на 4 м 2 поверхности, но не менее 5 проб из каждого закрома, партии, как из поверхностных, так и из глубоких слоев корма, равномерно по всему объему.

Из брикетированного комбикорма вынимают отдельные, соприкасающиеся с тарой брикеты, срезают их поверхностный слой и помещают в стерильную банку.

При отборе проб травы ее срезают ножницами или скальпелем и пинцетом помещают в стеклянные банки, которые плотно закрывают.

Пробы воды из естественных и искусственных водоемов берут у поверхности (на глубине 10-15 см) и у дна при помощи батометра или специально приспособленной бутыли с грузом. Объем каждой пробы -не менее 0,5л, общий объем – не менее 1л. Кроме того, берут пробы придонного осадка у береговой кромки, которые исследуют как пробы почвы.

Из шахтных колодцев пробы воды берут чистым ведром или другой посудой после перемешивания воды в колодце многократным погружением ведра.

Из водопроводного крана набирают в стерильную посуду около 0.5л. воды, а затем в течении 5-10мин спускают застоявшуюся в трубах воду. После этого край обжигают горящим спиртово-ватным тампоном, набирают в другую стерильную посуду еще около 0,5л воды.

Первичные пробы торфа, опилок, навоза (100г каждая)отбирают из расчета 1 проба на 4 м 2 поверхности, но не менее 5 проб для каждой партии. Первичные пробы берут из поверхностных и глубоких слоев торфа или опилок равномерно по всей площади.

Отбор проб торфа, хранящегося в мешках, проводят так же, как проб зернофуража. С открытых поверхностей различных предметов ухода за животными, стен, пола, кормушек животноводческих помещений делают соскобы, а из автопоилок пробы берут при помощи тампонов.

На всех пробах указывают наименование хозяйства (фермы), место и дату отбора. Пробы доставляют в лабораторию в день отбора.

Лечебно-профилактические мероприятия в скотоводческой сфере требуют особого внимания и регулярности. Для этого выполняют периодический забор крови у КРС, чтобы проверить здоровье животного. От техники выполнения процедуры зависит качество исследования и будущая производительность племенного поголовья скота.

Как правильно подготовить животное

Кровь у коров берут на анализ для исследования ее биохимического состава. Это помогает исключить инфекционные болезни, подтвердить возможный диагноз ветеринара. Для этого нужна венозная кровь, которую проверяют на лейкоз, бруцеллез, туберкулез. Чтобы не травмировать сильно животное, важно правильно его подготовить к медицинской процедуре.

Обычно забор берут утром перед кормлением. После приема пищи нельзя брать анализ в течение 5 ч. Для серологического исследования берут по 7-10мл материала от КРС. Место для взятия пробы бреют электрической машинкой для стрижки коров для удаления волосяного покрова. Если нужно, то скотину предварительно фиксируют, а после участок нужно обработать антисептическим средством.

Иглы для забора материала должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не повредить противоположную стенку вены, не вызвать повреждения эритроцитов. Перед использованием иглы нужно прокипятить в дезинфекционном кипятильнике.

Методики, которые не требуют фиксации животного, легче переносятся коровами. Любой стресс скажется на количестве удоя, а это принесет финансовые потери. Нельзя брать кровь у самок за 3 недели до отела или в течение этого же времени после родов. Чтобы не было проблем в будущем, соблюдайте технику забора крови, выбирая менее травматичный вариант для животного и самый безопасный для ветеринара.

Все популярные техники забора крови у скота

Взять кровь на анализ у животного можно из хвостовой, яремной и молочной вен. Процедура имеет свои особенности для каждой из зон, но все зависит от скорости и местоположения кровотока.

Из молочной вены

Она находится на животе коровы с 2-х сторон, сбоку от вымени. Лучше всего ее видно у взрослых особей. Этот вариант менее предпочтителен, так как у животного эта зона считается очень чувствительной. Плюс ко всему эта вена залегает более глубоко, чем это кажется на первый взгляд. Корову придется фиксировать, удерживать с разных сторон. А если нет специального оборудования, то для забора крови придется привлекать несколько человек.

Процесс проходит таким образом после удаления волос и обработки антисептиком:

Прощупывают пальцами венозный бугорок.
Вводят плавно иглу шприца параллельно поверхности кожи.
Берут биологический материал.

Такая методика может быть травматичной для крупного рогатого скота, что скажется на удоях. Обычно фермеры стараются использовать другие методики.

Из яремной вены

Для этого используют кровопускательную иглу и стерильную пробирку, куда набирают биоматериал по стенке. Сосуд следует расположить к нижней трети шеи животного. Голову придется зафиксировать, что тоже является стрессом для коровы. Чтобы вызвать быстрое наполнение вены, уменьшить ее подвижность, кровеносный сосуд можно сдавить резиновым жгутом в середине шеи.

Зажимают большим пальцем сосуд на яремной вене.
Вводят иглу под острым углом в направлении 20–30° к поверхности кожи в направлении к голове. При этом глубина введения – 1 см.
Собирают нужное количество крови. Она должна стекать по стенке пробирки во избежание разрушения эритроцитов. При необходимости можно сразу смешивать жидкость с нужным количеством антикоагулянта.
Перед извлечением иглы из яремной вены снимают жгут, а вену пережимают пальцем выше места прокола.
После извлечения иглы место укола некоторое время сдавливают тампоном, чтобы не было гематомы.
После снова используем в обрабатываемой зоне дезинфицирующий раствор.

Материал в таких условиях считается нестерильным, а жидкость во время забора может разбрызгиваться.

К минусам этой методики можно отнести:

Большой риск распространения инфекции на ферме. Пострадают не только животные, но и люди. Это такие болезни как туберкулез, бруцеллез, лейкоз крупного рогатого скота.
Нужно фиксировать животное.
Будут осложнения после процедуры – гематома, абсцесс.
Стресс у скота, снижение удоев минимум на 5%.
Разбрызгивание крови, которая обязательно попадет на руки ветеринара, кормушку или др. объекты в хозяйстве.

В конце нужно добавить, что полученные пробы – нестерильные.

Из хвостовой вены

Такой метод отличается высокой скоростью забора биологического материала. Животное в этом случае фиксировать не нужно, а сама процедура легко переносится КРС. Последние методики в заборе крови как раз нацелены на взятие материала из хвостовой вены у коров.

Как проходит процедура:

Берем хвост коровы на середине длины, а после – поднимает его вверх.
Дезинфицируем спиртом область между 2 и 5 позвонком, а также прилегающую к ним зону.
Берем стерильную иглу или систему для забора крови в 1 руку, а в другой держим хвост.
Иглу нужно вводить перпендикулярно к поверхности хвоста, а глубина введения должна быть от 0,5 до 1 см.
Делаем забор биоматериала.

Методика исключает контакт ветеринара с биоматериалом животного, а это является самым большим преимуществом. Трудности в заборе крови в сосуде создает слабый кровоток в этой части тела скота, но вакуумные системы помогают решить эту проблему. В результате процедура выходит эффективной и максимально безопасной.

В чем плюсы вакуумных систем

Применение вакуумных технологий для получения анализа помогает выполнить процедуру КРС максимально быстро и безопасно. Эта методика отлично работает на хвостовой вене. Процесс никак не травмирует скот, убирает прямой контакт ветеринара и животного с биологическим материалом.

Оборудование состоит из иглы и шприца с контейнером. Диаметр иглы обычно составляет 0,9 мм, она снабжается клапаном, который блокирует вытекание крови, а это снижает вероятность появления осложнений. Корпус шприца сделан из прочного пластика, само приспособление играет роль транспортного контейнера. В этой же емкости легко выделить сыворотку или добавить антикоагулянт.

Плюсы вакуумной системы:

Не нужно фиксировать скот.
Снижение стресса у животного.
Можно взять стерильную пробу.
Удобство использования, так как не нужно позже материал переливать в другую тару.
Нет прямого контакта ветеринара с биоматериалом.
Исключается риск разнесения инфекции среди поголовья скота.

Маркировка на таком изделии разрешает использование цветового кодирования, а это позволит сортировать полученные пробирки.

Какие могут быть ошибки

При выполнении обычной методики получения крови на анализ, например, из яремной вены скота, есть вероятность попадания материала на людей и окружающие вещи. Если скот заражен, то появляется риск расползания инфекции по ферме. При этом открытый способ отнимает много времени, требует определенной подготовки (минимум – фиксации животного), сноровки и предельной аккуратности.

Если нарушить нормы асептики и техники получения анализа у КРС, то готовый образец может не отвечать нужным требованиям. У коровы же могут появиться гематомы и абсцессы. Не нужно форсировать забор, так как произойдет частичный гемолиз кровяных клеток.

Как хранить пробу и сыворотку крови

Материал нужно поместить в холодильник при температуре +2…+4°С. Если придется длительное время хранить сыворотку, то нужна температура +20°С. Любое нарушение этих условий привлечет за собой погрешности в анализе. Неумелое встряхивание пробирок во время перемешивания их содержимого или в процессе транспортировки тоже вызывает гемолиз эритроцитов.

Читайте также: