Как брать анализы на чуму

Обновлено: 25.04.2024

Протокол сбора разовой порции мочи

Порядок сбора первой порции мочи

Утром, сразу после пробуждения туалет половых органов не проводится.
Мочеиспускание необходимо начать непосредственно в контейнер.
Наполнить контейнер на 2/3 от его объема.
Продолжить мочеиспускание в унитаз.
Плотно закрыть контейнер крышкой.

Порядок сбора средней порции мочи

Утром, сразу после пробуждения проводится туалет половых органов.
Мочеиспускание необходимо начать в унитаз.
Средней порцией мочи наполнить контейнер на 2/3 от его объема.
Продолжить мочеиспускание в унитаз.
Плотно закрыть контейнер крышкой.

Порядок сбора третьей порции мочи

Первая и средняя порции мочи собираются как описано выше. При необходимости, перед сбором первой порции мочи проводится туалет наружных половых органов.
Последнюю (третью) порцию мочи собрать в контейнер, заполнив его на 1/2-2/3 объема.
Плотно закрыть контейнер крышкой.

Протокол получения образца разовой порции мочи

Порядок действий при использовании вакуумной системы с автономным устройством для переноса мочи

Отвинтить крышку контейнера с ранее собранной порцией мочи.
Вставить автономное устройство для переноса мочи (держатель) в контейнер (Рисунок 10). Если моча длительное время находится в контейнере, необходимо перемешать ее с помощью держателя.
Вставить пробирку в держатель. Надавить на пробирку таким образом, чтобы игла держателя проколола резиновую пробку в крышке пробирки (Рисунок 11). Сразу после этого пробирка начнет заполняться мочой.

После прекращения поступления мочи в пробирку, вынуть пробирку из держателя (Рисунок 12).
Несколько раз перевернуть пробирку для смешивания мочи с консервантом (Рисунок 13).

Доставить образец в пробирке в течение дня в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Порядок действий при использовании вакуумной системы со встроенным устройством для переноса мочи

Снять защитную наклейку с крышки контейнера с ранее собранной порцией мочи, обнажив закрытую защитным колпачком иглу встроенного устройства для переноса мочи (Рисунок 14). Если моча уже некоторое время находится в контейнере, необходимо ее перемешать.
Вставить пробирку в отверстие встроенного устройства для переноса мочи. Надавить на пробирку таким образом, чтобы игла встроенного устройства проколола резиновую пробку в крышке пробирки (Рисунок 15). Сразу после этого пробирка начнет заполняться мочой.

После прекращения поступления мочи в пробирку, вынуть пробирку из встроенного устройства.
Несколько раз перевернуть пробирку для смешивания мочи с консервантом (Рисунок 13).
Доставить образец в пробирке в кратчайшие сроки (не более 3 часов с момента окончания сбора) в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Инструкция по сбору и обработке образцов суточной мочи

Протокол сбора суточной мочи

Порядок сбора суточной мочи с использованием набора без консерванта

После пробуждения, при первом утреннем мочеиспускании полностью опорожнить мочевой пузырь (данная порция мочи в контейнер не собирается).
Собирать мочу в контейнер со второго мочеиспускания, время которого необходимо обязательно записать. Допускается сбор мочи в любую чистую емкость с последующим немедленным переливанием ее в контейнер для сбора суточной мочи.
Собирать всю мочу, полученную в течение дня и ночи. Утреннюю порцию мочи следующего дня (до времени, записанного накануне) также собрать в контейнер. Необходимо собирать и ту мочу, которая выходит во время дефекации.
На протяжении всего периода сбора мочи контейнер хранить в холодильнике при температуре +2…+8 °С. Замораживание недопустимо!

Порядок сбора суточной мочи с использованием набора с консервантом

Одним из консервантов является сильная соляная кислота, которая при попадании на кожу может вызвать ожог!
При попадании консерванта на кожу немедленно промыть это место большим количеством воды и обратиться за медицинской помощью!
При попадании консерванта в пищевод необходимо срочно вызвать врача!

После пробуждения, при первом утреннем мочеиспускании полностью опорожнить мочевой пузырь (данная порция мочи в контейнер не собирается).
Перед началом сбора мочи высыпать/вылить консервант из флакона, входящего в состав набора, в контейнер для сбора суточной мочи (Рисунок 16).

Собирать мочу в контейнер со второго мочеиспускания, время которого необходимо обязательно записать. Допускается сбор мочи в любую чистую емкость с последующим немедленным переливанием ее в контейнер для сбора суточной мочи.
Собирать всю мочу, полученную в течение дня и ночи. Утреннюю порцию мочи следующего дня (до времени, записанного накануне) также собрать в контейнер. Необходимо собирать и ту мочу, которая выходит во время дефекации.
На протяжении всего периода сбора мочи контейнер хранить в холодильнике при температуре +2…+8 °С. Замораживание недопустимо!

Протокол получения образца суточной мочи

Порядок отбора образца суточной мочи в транспортную вакуумную пробирку

Плотно закрыть крышку контейнера для сбора суточной мочи.
Перемешать мочу, аккуратно переворачивая контейнер.
Снять защитную наклейку, обнажив закрытую защитным колпачком иглу встроенного устройства для переноса мочи в пробирку.
Перевернуть контейнер крышкой вниз, вставить транспортную пробирку в отверстие встроенного устройства для переноса мочи в пробирку.
Надавить на пробирку таким образом, чтобы игла встроенного устройства проколола резиновую пробку в крышке пробирки (Рисунок 17). Сразу после этого пробирка начнет заполняться мочой.

После прекращения поступления мочи в пробирку, вынуть пробирку из встроенного устройства.
Написать на этикетке пробирки количество выделенной за сутки мочи (в мл).
Доставить образец в пробирке в кратчайшие сроки (не более 2 часов с момента окончания сбора) в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Порядок отбора образца суточной мочи в транспортный контейнер

Плотно закрыть крышку контейнера для сбора суточной мочи.
Перемешать мочу, аккуратно переворачивая контейнер.
Отвинтить крышку контейнера для сбора суточной мочи.
Отобрать порцию мочи объемом не менее 50 мл из контейнера для сбора суточной мочи в транспортный контейнер для мочи (Рисунок 18).

Написать на этикетке транспортного контейнера количество выделенной за сутки мочи (в мл).
Доставить образец в контейнере в кратчайшие сроки (не более 2 часов с момента окончания сбора) в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Инструкция по сбору и обработке образцов кала

Порядок забора кала для микробиологических исследований, исследований методом ПЦР, антигенных и общеклинических исследований (кроме исследований на яйца гельминтов, цисты и вегетативные формы простейших)

Для исследования собирается кал, полученный в день исследования естественным путем.
Полученный контейнер не следует мыть или ополаскивать.
Не допускается касание внутренней поверхности контейнера, крышки, ложечки руками.
Из емкости (судна) кал с помощью прилагаемой ложечки собрать в контейнер.
Контейнер нужно заполнить не более чем на 1/3 объема (не менее двух чайных ложек для взрослых и детей старше 1 года, не менее одной чайной ложки для детей до года).
Кал не должен содержать мочи.
Доставить контейнер с образцом в кратчайшие сроки (не более 3 часов с момента окончания сбора) в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Порядок забора кала для исследований на яйца гельминтов, цисты и вегетативные формы простейших

Для исследования собирается кал из любой чистой емкости немедленно после дефекации!

Необходим специальный контейнер, который можно приобрести в Центрах Хеликс.
Не допускается сбор образцов кала из унитаза.
Для детей возможен сбор образца с пеленки, подгузника или горшка.
Используя ложку в крышке контейнера, собрать не менее, чем из трех точек стула, столько материала в контейнер, чтобы уровень жидкости (консерванта) сравнялся или стал чуть выше отметки на контейнере. Если кала не хватает, поместить в контейнер весь кал, который есть (Рисунок 19).

Убедиться, что образец находится в жидкости, а не на стенках контейнера.
Плотно завинтить крышку и аккуратно потрясти контейнер для того, чтобы перемешать образец с консервантом (Рисунок 20). Если стул твердый, использовать ложку на крышке контейнера для перемешивания образца кала. Допускается сбор образцов кала при диарее, наличии крови и слизи в стуле.
Поместите контейнер в пластиковый пакет (Рисунок 21).

Доставить пакет с образцом в кратчайшие сроки (не более 3 часов с момента окончания сбора) в любой в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Инструкция по получению и обработке образцов эякулята

Порядок сбора эякулята для микробиологических исследований и исследований методом ПЦР

Вымыть руки с мылом.
Провести тщательный туалет половых органов.
Высушить головку полового члена и крайнюю плоть сухой стерильной салфеткой.
Собрать биоматериал путем мастурбации в соответствующий контейнер.
Доставить контейнер с образцом в течение дня в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Порядок сбора эякулята на спермограмму

Вымыть руки с мылом.
Провести тщательный туалет половых органов.
Высушить головку полового члена и крайнюю плоть сухой стерильной салфеткой.
Собрать биоматериал путем мастурбации в стерильный пластиковый контейнер.
Запрещается использовать презерватив для сбора эякулята!
Доставить контейнер с образцом в течение часа в Диагностический центр на Карповке, транспортируя при температуре +20…+37 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов мокроты

Порядок сбора мокроты для исследований методом ПЦР и микробиологических исследований

Собрать не менее 1 мл биоматериала посредством глубокого откашливания в соответствующий контейнер.
Доставить контейнер с образцом в кратчайшие сроки (не более 3 часов с момента окончания сбора) в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Инструкция по получению и обработке образцов волос

Порядок сбора волос для определения наркотических, психотропных и сильнодействующих веществ

Срезать 15–20 волос (прядь шириной около 1 см), длиной 3–4 см, с лобной, теменной, затылочной и правой и левой височных областей волосистой части головы максимально близко к корню. В случае малого количества или отсутствия волос на голове, образец можно взять с других областей: паховая, подмышечная, область груди, ног.
Поместить волосы в гриппер-пакет.
Доставить гриппер-пакет с образцом в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Порядок сбора волос для генетического установления родства

Порядок сбора волос для исследования на микроэлементный состав

Срезать небольшие пучки волос, длиной 3–4 см, с затылочной, задней теменной и задних височных областей волосистой части головы максимально близко к корню. Толщина суммарного пучка волос должна составлять около 1 см. Если пучок остриженных волос длиннее 3–4 см, его необходимо обрезать, оставив для исследования ту часть, которая была ближе к коже головы. Если срезанные волосы короткие, необходимо собрать их в объеме, равном одной чайной ложке.
Поместить волосы в гриппер-пакет.
Доставить гриппер-пакет с образцом в любой Диагностический центр Лабораторной службы Хеликс, транспортируя при комнатной температуре.

Инструкция по получению и обработке образцов ногтей

Порядок сбора ногтей для определения наркотических, психотропных и сильнодействующих веществ

Чума – это высокозаразное заболевание, которое проявляется в виде острой пневмонии или в виде поражения лимфатических узлов, сопровождающегося лихорадкой.

Возбудитель заболевания – чумная палочка.

Первично чума поражает грызунов (крыс, мышей, барсуков, белок и др.). Заражение человека происходит через укусы блох, инфицированных от больных грызунов. От человека к человеку заболевание передается чаще всего при вспышках легочной чумы воздушно-капельным путем.

На протяжении нескольких тысячелетий люди страдали от эпидемий чумы, уносящих огромное количество жизней. На данный момент она встречается очень редко, в основном в развивающихся странах.

Лечение состоит в приеме антибиотиков. Без лечения высок риск смерти больного.

Синонимы русские

Синонимы английские

Симптомы

Симптомы чумы зависят от ее формы.

Бубонная чума проявляется обычно спустя 2-5 дней после заражения:

резким повышением температуры до 40-41 °C, ознобом и головной болью;
бубонами – болезненными, увеличенными лимфатическими узлами в паховой, подмышечной области, в области шеи, которые окружены зоной отека; примерно на второй неделе заболевания они могут нагноиться;
мышечными болями, сильным истощением, слабостью, болями в животе, диареей.

Септическая чума возникает при заражении крови чумной палочкой. Общие симптомы сходны с проявлениями бубонной чумы, однако сами бубоны отсутствуют.

При легочной чуме через 2-3 дня после заражения появляются быстро прогрессирующие симптомы:

высокая температура тела, слабость, головная боль;
кашель с кровавой или гнойной мокротой; , затруднение дыхания;
тошнота и рвота.

Общая информация о заболевании

Чума – это высокозаразное заболевание, которое проявляется поражением легких или лимфатических узлов и сопровождается лихорадкой.

Возбудитель заболевания – чумная палочка.

Люди страдали от эпидемий чумы на протяжении нескольких тысячелетий, раньше погибало до 100 % жителей зараженных мест. На данный момент она встречается редко, как правило, в развивающихся странах.

Изначально чума поражает грызунов (крыс, мышей, кроликов, бурундуков, барсуков, белок, землероек и др.). Человек инфицируется через укусы блох, хозяином которых до этого было зараженное чумой животное.

Кроме того, заразиться можно от укусов и царапин кошек, при разделке тушек животных, воздушно-капельным путем от человека при эпидемиях легочной чумы, от животного путем вдыхания зараженной воздушной взвеси.

Попав с укусом блох в организм, бактерии мигрируют в близлежащие лимфатические узлы и размножаются внутри клеток. Так пораженные лимфоузлы превращаются в бубоны. Затем происходит разрушение структуры и отмирание тканей лимфатических узлов. Без лечения инфекция может распространиться на другие органы.

Выделяются три наиболее распространенных формы чумы.

Бубонная чума – наиболее распространенная форма. Поражаются лимфатические узлы, чаще всего один. При адекватном лечении смертность от бубонной чумы составляет около 20 %. Больной не заразен для окружающих.
Септическая чума – менее распространенная форма. Происходит заражение крови больного. Бубоны не образуются. При полноценном лечении летальность среди больных составляет примерно 25 %.
Легочная чума является редкой формой заболевания, при которой поражаются легкие. При оказании больным медицинской помощи смертность от легочной чумы достигает 50 %.

Чума может приводить к следующим осложнениям:

менингиту – воспалению оболочек головного и спинного мозга;
гангрене (сгустки крови в кровеносных сосудах пальцев, образующиеся при чуме, могут нарушить приток крови к ним и привести к отмиранию конечностей);
септическому шоку – состоянию, угрожающему жизни и характеризующемуся крайне низким кровяным давлением;
смерти (без лечения смертность от чумы составляет примерно 60 %).

Кто в группе риска?

Риск заболеть чумой достаточно низок. В группу риска входят:

лица, контактировавшие с больным животным или человеком;
те, кого часто кусают блохи;
проживающие в местности, где наблюдались вспышки чумы;
люди, чья пища может быть доступна грызунам;
жители местности с плохими санитарными условиями и высокой численностью крыс;
контактирующие с чумной палочкой по роду занятий (ученые, доктора, ветеринары).

Диагностика

При подозрении на чуму незамедлительно проводится взятие материала из пораженных органов и крови, выполняется рентгенография грудной клетки. Лечение начинается до получения результатов исследований.

Исследование под микроскопом мазков из мокроты, крови, пораженных лимфоузлов. С помощью специального окрашивания мазка визуально выявляют бактерии, вызывающие чуму (иерсиния пестис). Для подтверждения диагноза достаточно обнаружить хотя бы одного возбудителя.
Посев крови, мокроты, жидкости из легких, из лимфоузлов на чуму. Исследование предполагает помещение отделяемого в питательную среду, где бактерии начинают размножаться и становятся доступными визуальной оценке. Рост чумной палочки в питательной среде происходит медленно.
Исследование мазка методом иммунофлюоресценции. В ходе данного исследования в полученный материал добавляются меченые антитела (молекулы, специфически связывающиеся с чумной палочкой). Под воздействием ультрафиолетового излучения комплекс из бактерий, "скленных" с антителами, дает характерное зеленоватое свечение, что говорит о присутствии чумной палочки во взятом материале. Метод используется для экспресс-диагностики чумы, обладая относительно высокой специфичностью.
Определение антител к возбудителю чумы. При заражении организма чумой иммунная системы больного начинает вырабатывать специфические молекулы для борьбы с инфекцией. Количество (титр) антител значительно повышается в течение 2-3 недель после инфицирования и снижается в течение нескольких месяцев или лет.
Определение ДНК чумной палочки методом полимеразной цепной реакции (ПЦР). Метод основан на выявлении генетического материала чумной палочки в исследуемом материале.
Выявление генетического материала чумной палочки в исследуемом материале.

В целях оценки общего состояния больного и состояния жизненно важных органов выполняются следующие анализы.

. Для чумы характерно значительное повышение уровня лейкоцитов. Уровень тромбоцитов бывает снижен. и аспартатаминотрансфераза (АСТ). Уровень этих печеночных ферментов может повышаться у значительного количества пациентов с чумой, что отражает вовлечение в патологический процесс печени

Другие методы исследования

Рентгенография органов грудной клетки. При чуме на рентгене могут обнаруживаться затемнения в обоих легких.

Лечение

При подозрении на чуму проводится безотлагательное лечение. Пациенты с бубонной формой подвергаются стандартной изоляции. Легочная чума требует помещения больного в специальный изолятор с фильтрацией воздуха. Лечебные и диагностические мероприятия проводятся врачами в специальных противочумных костюмах.

Применяются высокие дозы антибиотиков. Также проводится симптоматическое лечение. Больной изолируется, проводится лекарственная терапия мощными антибиотиками (стрептомицином, гентамицином, доксициклином и др.).

Отбор проб для вирусологических исследований. Для обнаружения вируса африканской чумы свиней, антигена или генома от павших или убитых с диагностической целью свиней отбирают массой 5-10 г - селезёнку (1/3 часть), портальные, желудочные и подчелюстные (или мезентериальные) лимфоузлы (целиком), лёгкое (5х5 см) и почку (1/3 часть), 3-5 мл крови (или сгусток). Кроме того, рекомендуется в случае аутолизиса трупа отбирать грудинную или трубчатую кость.

Отбор проб для серологических исследований. Минимальное количество проб, которые должны быть отобраны для серологических исследований, рассчитывают с учётом 10%-ой серопревалентности заболевших с 95%ой достоверностью для обследования каждого помещения.

Пробы крови отбирают их полой вены не менее 10 мл от каждой свиньи [3].

Для лабораторных исследований применяют следующие методы: реакцию гемадсорбции (РГАд) в культурах клеток, реакцию прямой иммунофлюоресценции (РПИФ), полимеразную цепную реакцию (ПЦР) в формате электофорезной детекции, ПЦР в формате реального времени, применяют твёрдофазный иммуноферментный анализ (ТФ – ИФА) (сэндвич-вариант). В сомнительных случаях окончательный диагноз устанавливают заражением подозрительным материалом (кровь, суспензия селезенки и лимфатических узлов) свиней, вакцинированных против классической чумы. Заражение свиней (биопроба) проводят в специализированной лаборатории с соблюдением особых мер предосторожности. Серологические типы вируса определяют в реакции преципитации (РП), реакции связывания комплемента (РСК), реакции задержки геамадсорбции (РЗГАд) и другими методами. [2]

Реакция прямой иммунофлуоресценции (РПИФ) ставят в вирусологических лабораториях для прямого обнаружения вирусного антигена в клетках органов свиней, подозреваемых в заражении вирусом африканской чумы свиней. Внутриклеточный антиген обнаруживают люминесцентной микроскопией препаратов мазков-отпечатков, окрашенных ФИТЦ-иммуноглобулинами (специфические антитела к вирусу африканской чумы свиней, меченные флуоресцеинизотиацианатом). Лучшими органами для РПИФ являются селезёнка и лимфоузлы. Исследование может быть выполнено в течение 2-4 час [2].

Оценку результатов микроскопии проводят по условной четырех крестовой шкале при окуляре 10х20-объективе 10. В положительных случаях наблюдают сверкающую, желто-зеленого цвета флуоресценцию клеток с включениями или очаговыми флуоресцирующими комплексами диффузного и гранулярного антигена, в одном из 10-50 полей зрения.

При визуальном учёте реакцию считают положительной при окрашивании хромогенного субстратного раствора в лунках, в которых предварительно инкубировали исследуемые и специфический антиген в сине-зеленый цвет и отсутствии окрашивания субстрата в лунках, в которых предварительно инкубировали нормальный антиген.

Анализ по выявлению вируса АЧС включает выделение ДНК и амплификации специфического фрагмента в полимеразной цепной реакции и электрофорез в агарозном геле [3].

Реакция считается положительной, если полоса в соответствующем треке располагается в геле точно на таком же расстоянии от старта, что и полоса положительного контроля амплификации. Размер апликонов после проведения ПЦР- 485 п.н.

Реакция считается отрицательной, если в соответствующих треках полос не обнаружено или полосы не соответствуют по размеру фрагменту в контрольной пробе (т. е. располагаются на другом расстоянии от старта) [4].

Учёт результатов проводят по анализу кривых накопления флуоресцентного сигнала по каналу FAM с помощью программного обеспечения используемого прибора.

Положительными считают результаты реакции при значениях Ct, не превышающих 35.

Образцы, для которых не определено значение Ct (кривая флуоресценции не пересекает пороговую линию) – результаты считают отрицательными [4].

Белоусова Л.В., Троценко Н.И., Преображенская Э.А. Практикум по ветеринарной вирусологии. М.: КолосС, 2006. — 248 с [Текст] с.131-140.

Госманов Р.Г., Колычев Н.М. Ветеринарная вирусология М.: KoлoсC, 2006. — З04 c. [Текст] с.151-153.

Инфекционные болезни животных / Б.Ф. Бессарабов, А.А., Е.С. Воронин и др.; Под ред. А.А. Сидорчука. - М.: Колосс, 2007.-671с [Текст] с.206-275.

Шевченко А.А., Шевченко Л.В., Черных О.Ю., Шевкопляс В.Н. Лабораторная диагностика инфекционных болезней животных. Учебное пособие. Краснодар. – 2009. – 575 С. [Текст] с.340-402

Чума плотоядных (болезнь Карре) является высококонтагиозной вирусной болезнью семейства псовых и куньих. В настоящее время чума плотоядных не представляет такой сильной угрозы, как прежде. Однако, болезнь регистрируется среди домашних, промышленных и диких плотоядных во всех странах мира и несмотря на достигнутые успехи, продолжаются научные исследования. Болезнь характеризуется лихорадкой, острым катаральным воспалением слизистых оболочек, кожной экзантемой, пневмонией и тяжелым поражением нервной системы. У собак в зависимости от характера протекания чума может быть молниеносной, сверхострой, острой, подострой, абортивной, типичной и атипичной. Также чума может протекать в нескольких формах: легочной, кишечной, кожной, нервной и смешанной [1, 4, 9]

Диагноз устанавливают на основании анализа эпизоотической ситуации, клинических признаков болезни, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований [2].

Чумой плотоядных болеют собаки, серебристо-черные и красные лисицы, песцы, норки, уссурийские еноты, белые африканские и бурые хорьки, куницы, медведи, ласки, горностаи, барсуки, выдры, шакалы, гиены, волки. Для различных видов животных патогенность вируса неодинакова - от скрытого бессимптомного течения болезни до острого, сопровождающегося 100%-ной смертностью. Наиболее чувствительны хорьки и тхорзофретки (помесь белого африканского хоря с черным лесным хорем). Вирус передается от больных и переболевших животных, также животных в инкубационном периоде болезни, выделяющих вирус во внешнюю среду с истечениями из носа, глаз, со слюной, мочой и калом. Инфицирование проходит через слизистые оболочки, может происходить при непосредственном контакте, респираторно и алиментарно. Переносить вирус могут человек, грызуны, а также птицы и насекомые. Возможны передача возбудителя чумы через различные предметы, контаминированные вирусом. Болезнь может возникнуть в любое время года и проявляться эпизоотией или спорадически.

Инкубационный период, при экспериментальном заражении составляет 2-7 дней, при естественном он более длительный - до 40 дней. Болезнь начинается, как правило, с повышения температуры тела на 1-3 ˚С. При этом наблюдается общее, всеохватывающее поражение наиболее важных систем организма: дыхательной, иммунной, кровеносной, лимфатической, нервной, пищеварительной, эндокринной и др. [2,7].

Нервная форма. Проявляется судорогами, спазмами, нервным тиком, животное может начать хромать, постепенно наступает паралич задних конечностей. Проявляется агрессия, повышается температура. Когда болезнь прогрессирует, начинаются эпилептические припадки, паралич мышц.

Легочная форма. Воспаляются миндалины, температура выше на 2-3 градуса, животное не ест и не пьет. Уже через несколько дней оно ослабевает, у него появляются гнойные выделения из носа, может открыться рвота, понос, начаться кашель.

Кишечная форма. Сопровождается поносом, сильной рвотой, отсутствием аппетита и сильной жаждой. Язык животного покрывается белым налетом, на эмали зубов заметны характерные темные пятна, от повышения температуры животное может терять сознание.

Кожная форма. Самая легкая форма болезни, характеризуется появлением нарывов и сыпи на лапах, ушах, носу животного. Язвы превращаются в сухую корку, которая трескается, в нее попадают микроорганизмы – начинается воспалительный процесс [9].

В лабораторном диагнозе на чуму плотоядных, в частности для индикации (обнаружения) возбудителя и его идентификации (определение видовой принадлежности) применяют метод флуоресцирующих антител прямой (МФА), ИФА, обнаружение телец-включений, реакции: РН, РДП, РСК, РНГА, РТГА и биопробу на восприимчивость животных. Реакции выполняются общепринятыми методами. Наличие АТ, выявляемых в любой из указанных реакций, в сыворотке крови животных свидетельствует о переболевании их чумой [4].

Для исследования в ветеринарную лабораторию доставляют: сыворотку крови больных животных, кровь берут в период лихорадочного состояния, как можно быстрее после проявления клинических признаков и повторно спустя 14-21 день. Также берут мазки из носа и конъюнктивы. От свежих трупов берут кусочки легких, трахеи, селезенки, почек, головного мозга и мочевой пузырь с диагностической целью для гистологического исследования.

Метод флуоресцирующих антител прямой (МФА), Иммуноферментный анализ (ИФА) – для установления раннего прижизненного диагноза. МФА - материалом служат мазки-отпечатки; в основе люминесцентная микроскопия соединений антигена, с меченным антителом; ИФА - разработаны промышленные диагностикумы на полистироловых пластинах для выявления специфического антигена вируса; материал – пробы крови, смывы из глаз и глотки. При исследовании недавно вакцинированных, возможны ложноположительные результаты.

Реакция нейтрализации (РН) – для идентификации вируса в культуре клеток.

Реакция диффузной преципитации (РДП) – позволяет обнаруживать возбудитель на 3-4-й день болезни.

Реакция связывания комплемента (РСК) – для обнаружения антигена в органах и тканях больных животных и в культуре клеток.

Реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) – для выявления специфических антител к возбудителю. [6]

Микроскопия телец-включений. Цитоплазматические и реже внутирядерные тельца-включения являются патогномоническими для ЧС. Для обнаружения телец-включений предложен метод окраски мазков гамотоксилином Делафильда с эозином [8].

При вскрытии трупов собак, павших от чумы, вокруг глаз и носа находят корочки засохшего экссудата. Тело истощено, глаза впавшие, зрачок расширен, на роговице, губах и вокруг ноздрей возможны эрозии. Легкие переполнены кровью, с очагами красной и серой гепатизации, возможны отек легких и пневмония. Точечные и полосчатые кровоизлияния отмечают на плевре, в сердечной мышце, корковом слое почек, мочевом пузыре. В сердечной мышце видны сероватые и желтые очаги; печень рыхлая, полнокровная, с желтым оттенком; селезенка по краям имеет инфаркты; почки полнокровные; на слизистой оболочке желудка и двенадцатиперстной кишки эрозии, язвы, признаки катарального воспаления; в мочевом пузыре слизистая оболочка гиперемирована; брыжеечные и мезентериальные лимфатические узлы на разрезе сочные, с кровоизлияниями; сосуды головного мозга инъецированы.[2]

Биопробу ставят на животных того вида, от которых исследуют материал. Лучше ее проводить на щенках через 15 дней после отъема от самок. Животные заболевают на 10-14 день, а иногда и через 1-2 месяца с характерными признаками болезни [8].

При дифференциальной диагностике необходимо исключить болезни, имеющие подобные с чумой клинические признаки: инфекционный гепатит, бешенство, болезнь Ауески, парво - и коронавирусный энтерит, лептоспироз, пастереллез, сальмонеллез, авитаминоз В₁, отравление и др.

Лечение больных животных при чуме, как и при многих других инфекционных болезнях, наиболее эффективно на ранних стадиях заболевания. Учитывая, что чума плотоядных является полисистемной болезнью, поражающей многие важные физиологические системы организма, следует проводить научно обоснованное индивидуальное комплексное лечение больных животных [3].

Комплекс терапевтических воздействий включает:

- введения в организм животного иммунных сывороток, иммуноглобулинов, антибиотиков;

- применение общеукрепляющих медикаментов, средств дезинтоксикации для ослабления и прерывания патологических процессов;

- использование сердечных, болеутоляющих и других средств для воздействия на отдельные проявления заболевания;

- введение в организм водно-солевых растворов и витаминов для возмещения веществ, содержание которых понижено из-за болезни [5].

Важно учитывать, что все химиотерапевтические средства не обладают достоверным свойством, но помогают повысить общий тонус организма [3].

Единственный способ профилактики заболевания – вакцинация, первую прививку делают в 3-х месячном возрасте здоровым щенкам. Перед вакцинацией животным обязательно нужно дать препараты от глистов. Повторную ревакцинацию назначит ветеринар, переносятся прививки хорошо, зачастую это поливалентные вакцины, направленные на создание иммунитета к нескольким заболеваниям [9].

Библиографический список

Госманов Р.Г. Ветеринарная вирусология. [Текст] - Учебники и учеб. Пособия для студентов высш. учеб. Заведений / Р.Г. Госманов, Н .М. Колычев - М.: КолосС, 2006. – С. 157-159.

Читайте также: