Какой из методов стерилизации не избавляет от вирусов

Обновлено: 23.04.2024

Эффективность стерилизации в медицинских учреждениях. Оценка риска инфицирования

В последние годы вопросам предстерилизационной очистки уделялось значительное внимание: разработан и внедрен в практику ЛПУ ряд химических средств для ее проведения; получены средства, обладающие как моющими, так и антимикробными свойствами, что позволяет использовать их для предстерилизационной очистки, совмещенной с дезинфекцией. Возможность многократного применения рабочих растворов для предстерилизационной очистки позволяет существенно сократить материальные затраты, труд и время персонала.

Многоплановой проблемой стерилизации в ЛПУ остается обеспечение защиты стерилизованных изделий от реинфицирования. Причинами реинфицирования стерилизованных изделий могут быть:
• применение не отвечающих современным требованиям упаковок;
• несоблюдение персоналом правил упаковки и укладки изделий;
• неисправность стерилизационного оборудования;
• повреждение упаковок при разгрузке в стерильной зоне;
• влажные упаковки;
• несоблюдение правил транспортировки стерилизованных изделий.

Следует рассмотреть вопрос о создании крупных межбольничных ЦСО или кустовых центров стерилизации, обслуживающих группу ЛПУ.
Внедрение в практику организационных и методических мероприятий по совершенствованию стерилизации способствует значительному снижению уровня НКИ, повышению качества лечебных мероприятий.

Медицинские работники входят в группу риска по многим инфекционным заболеваниям, поэтому проведение профилактических прививок против дифтерии, вирусного гепатита В, краснухи, кори и гриппа в соответствии с действующими нормативными правовыми документами считается обязательным, особенно в отношении гриппа, т. к. медицинские работники первыми встречают надвигающуюся волну гриппа и других острых респираторных вирусных инфекций и имеют более тесные контакты с больными на протяжении предэпидемического и эпидемического периода.

По всем указанным выше инфекциям охват профилактическими прививками медицинского персонала из группы риска составляет более 95%, что соответствует рекомендациям ВОЗ. Анализ заболеваемости медицинского персонала показал, что частота острых респираторных вирусных инфекций достигает 12 случаев на 100 работающих.

Все медицинские работники из группы риска привиты против вирусного гепатита В, что обусловлено сложившейся неблагоприятной эпидемической ситуацией по заболеваемости населения данной инфекцией (каждый больной рассматривается как потенциальный источник инфекции), а также возможностью передачи этой инфекции парентеральным путем на всех этапах оказания медицинской помощи, в т. ч. при повреждении кожных покровов (уколы, порезы) и других аварийных ситуациях (загрязнения кожи, слизистых оболочек, одежды биологическими жидкостями).
Придается большое значение соблюдению правил личной гигиены медицинского персонала, т. к. это мероприятие представляется одним из основных по предотвращению передачи инфекции от медицинского персонала пациенту и обратно.

Инфицирование медицинского персонала чаще всего может происходить через руки, контаминированные патогенными и условно-патогенными микроорганизмами в результате прямого контакта с материалами и пациентом. В этой связи в больнице имеется достаточное количество моющих средств и кожных антисептиков для обработки рук медицинского персонала и дозаторов при их использовании. Во всех эпидемически значимых объектах (операционные, перевязочные, процедурные и др.) установлены краны с локтевым управлением. Постоянно проводится работа с персоналом по повышению уровня знаний по технологии обработки рук.

Медицинский персонал в соответствии с нормативами, предусмотренными МЗСР РФ, в полном объеме обеспечен средствами индивидуальной защиты, в т. ч. и одноразового пользования, т. к. каждый пациент рассматривается как потенциально опасный в отношении инфекционных заболеваний, в первую очередь с парентеральным путем передачи инфекции. В этой связи в каждом отделении имеются укомплектованные в установленном порядке специальные аптечки на случай аварийной ситуации (уколы, порезы, прокол перчаток, загрязнение биологическими жидкостями слизистых оболочек, кожи и одежды).

Редактор: Искандер Милевски. Дата обновления публикации: 18.3.2021

Стерилизации подлежат все инструменты многократного использования, которые контактируют с кожей и слизистыми оболочками клиента и могут их травмировать, а также изделия, непосредственно контактирующие с кровью.

Исходя из этого утверждения, стерилизационной обработке подлежат:

Хирургический инструментарий;
Стоматологический инструментарий;
Маникюрный инструментарий;
Инструменты для тату, перманентного макияжа и пирсинга;
Косметологические инструменты.

Кроме того, в медицинских учреждениях обработке подвергаются белье, перевязочные материалы, медицинские тапочки и перчатки, дренажные трубки, зонды и пр.

Добиться полной стерильности инструментов можно лишь путем проведения последовательной обработки, включающей дезинфекцию, предстерилизационную очистку (ПСО) и стерилизацию. Каждый из этих этапов выполняет свою функцию. Нельзя приступать сразу же к стерилизации, игнорируя предварительное проведение дезинфекции и ПСО. Такой подход лишь помешает качественному проведению обеззараживания инструментов. А это чревато заражением инфекциями, как клиентов, так и сотрудников.

Методы стерилизации

Существует несколько методов. При выборе метода необходимо учитывать материал, из которого изготовлено изделие/инструмент, количество обрабатываемых изделий, финансовые возможности учреждения и прочие факторы.

Различают такие методы стерилизации изделий и инструментов:

Физический;
Химический;
Газовый.

Каждый из методов обладает своими преимуществами и недостатками.

Особенности физических методов стерилизации

Физические методы, по сути, представляют собой обработку инструментов высокой температурой. К этой категории относят паровую, воздушную и гласперленовую стерилизацию. Проведение физической стерилизации требует использования определенного оборудования. В целом, это наиболее часто используемый метод обработки, который помогает добиться качественного обеззараживания инструментов.

Суть паровой стерилизации заключается в обработке инструментария водяным паром, подаваемым под высоким давлением. Для этого используют паровые стерилизаторы — автоклавы. Это достаточно громоздкое и дорогое оборудование, которое могут себе позволить большие учреждения, например, больницы. Температурный режим в автоклавах варьирует в пределах 110-135°С, время обработки — всего лишь 5-20 минут. Это самый эффективный и быстрый метод стерилизации.

Воздушный метод обработки это не что иное, как обработка инструментов сухим горячим воздухом. Стоит отметить, что воздушные стерилизаторы (они же сухожаровые шкафы) меньше в размере и дешевле автоклавов. Поэтому большинство салонов красоты и студий ногтевого сервиса практикуют этот вид дезинфекции. Впрочем, у воздушного метода есть и свои относительные недостатки. Так, для стерилизации сухим воздухом требуются еще большие значения температуры — 160-180°С, а время стерилизации увеличивается до 30-150 минут.

Особенность проведения гласперленовой стерилизации заключается в использовании аппарата, заполненного кварцевыми шариками. При включении аппарата шарики нагреваются до 180-240°С, благодаря чему происходит оббезараживание. Гласперленовые стерилизаторы имеют небольшие размеры, а поэтому подходят для обеззараживания только мелких инструментов. Этот метод обладает существенными недостатками. Во-первых, в аппарат невозможно погрузить большой инструмент целиком, а значит, его обработка будет неполной. Во-вторых, не существует методов контроля работы гласперленовых стерилизаторов. Учитывая эти нюансы, контролирующие органы не рекомендуют использовать этот вид стерилизации в профессиональной деятельности.

Особенности химического метода стерилизации

Химический метод — обеззараживание инструментов и изделий различными химическими средствами. Этот метод особенно ценен для обработки изделий, изготовленных из термолабильных материалов (к примеру, из стекла, пластмасс или резины). В частности его применяют для стерилизации эндоскопов. Еще одним преимуществом метода можно назвать его дешевизну. Однако химический метод стерилизации достаточно трудоемкий, что можно расценивать как недостаток.

Для проведения стерилизации используют контейнер, который наполняют раствором химического средства. В наполненную емкость полностью погружают использованные инструменты, при этом они не должны лежать плотно друг к другу. Время экспозиции зависит от используемого химического средства и может составлять от 60 до 600 минут. По завершению обработки инструменты вынимают стерильными пинцетами и промывают в стерильной воде. Обработанные изделия хранят в стерильных контейнерах не более трех дней.

Особенности газового метода

Газовый метод в РФ нельзя назвать популярным. Обработка в газовых стерилизаторах производится при температурах до 80°С и с использованием газов: оксида этилена, озона, паров раствора формальдегида. Одной из причин непопулярности газовой стерилизации можно назвать дороговизну самого стерилизационного оборудования.

Газовую стерилизацию, главным образом, проводят для обработки термолабильных изделий из резины и пластмассы, инструментов с зеркальной поверхностью, оптических эндоскопов, кардиостимуляторов. Но стоит отметить и тот факт, что обработка газом требует значительного времени экспозиции. Так, время стерилизационной выдержки при обработке парами формальдегида составляет 120-180 минут, озоном — 240-960 минут. Еще одним недостатком метода является токсичность газов.

Контроль качества стерилизации

От соблюдения методики проведения стерилизации и исправности оборудования зависит качество обеззараживания инструментов. Оценить качество проведения позволяют методы контроля.

Проведение физического метода контроля невозможно без использования приборов, фиксирующих показатели температуры, давления и времени. Например, соответствие температурного режима нормам оценивают с помощью максимальных термометров, которые помещают в стерилизатор вместе с обрабатываемыми инструментами.

Химический метод контроля базируется на использовании специально разработанных химических полосок с индикаторами. Тест-полоски укладывают в стерилизаторе в определенных точках. После проведения стерилизационной обработки осматривают тест-полоски, которые при правильном проведении стерилизации меняют цвет. Если же тест-полоски не изменили цвет — значит, инструменты остались нестерильными.

Биологический метод контроля представляет собой использование биотестов. Это флаконы, обсемененные тест-микроорганизмами, которые во время проверки размещают в стерилизаторе. Далее биотесты подвергаются бактериологическому исследованию. Если на исследуемых образцах отсутствует рост культур — это говорит в пользу эффективного проведения стерилизации.

Контроль качества — это один из основных моментов, на который обращают внимание контролирующие органы. Стоит отметить, что руководителям медицинских учреждений и салонов красоты стоит внедрить эти методы контроля в свою будничную практику. Это позволит выявить и устранить возможные ошибки при проведении стерилизации, а также гарантировать клиентам стопроцентную стерильность используемых инструментов.

Стерилизации подлежат все поверхности, которые могут соприкасаться с повреждёнными кожными покровами, слизистыми оболочками, раной или биологическими жидкостями (например, кровью). Обычно это – инструменты (хирургические, стоматологические, косметологические), медицинские изделия (катетеры, эндоскопы, воздуховоды и др.), материал (бинты, вата, салфетки, перчатки и т. п.).

Методы стерилизации

В зависимости от того, из какого материала изготовлено изделие и для чего предназначено, применяются следующие методы деконтаминации:

При физическом методе производится обработка высокотемпературными режимами, повышенным давлением и ионизирующим излучением. Примеры физической стерилизации:

паровая – выполняется в автоклавах (паровых стерилизаторах) подачей водяного насыщенного пара под давлением 2,9 атм. и t = 132°C, таким путём обрабатывают упакованные в биксы или бумагу резиновые, стеклянные, текстильные, некоторые пластиковые и стойкие к коррозии металлические изделия, лекарства и питательные среды; преимущества:

высокие бактерицидные свойства;
удобство;
надёжность;
быстрое время (от 20 минут до 45 при щадящем режиме);
сохранение стерильности от 3 до 20 суток;

воздушная – выполняется в сухожаровых стерилизаторах сухим горячим воздухом 180° и 160°C; обработке подлежат сухие и упакованные силиконовые, не стойкие к коррозии металлические инструменты, изделия и детали аппаратов; преимущества:

надёжность;
эффективность;
доступность;
не вызывает коррозию;
время 0т 60 до 150 мин. в зависимости от режима;
можно обрабатывать на сетках без упаковки;
срок хранения от 3 до 20 суток (только в упаковке);

инфракрасная – производится в специальных стерилизаторах импульсным инфракрасным излучением, которое создаёт температуру около 200°C, в течение 10-25 мин.; недостатки:

отсутствие упаковки;
нет индикаторов контроля;
повреждаются резина и полимеры;

ультразвуковая – выполняется в специальных ваннах с дезинфицирующим раствором, через который пропускаются волны ультразвука; недостатки:

ограниченность применения (обработка некоторых инструментов и подготовка рук медперсонала);
сложность;
отсутствие упаковки и длительного хранения;

лучевая – обработка гамма-лучами в специальных установках; недостатки:

ограниченность использования (на заводах одноразовых инструментов);
значительная доза радиации не позволяет применять в стационарах;

гласперленовая – в среде нагретых до 190-240°стеклянных шариков в течение 5-15 секунд; недостатки:

применяются только в стоматологии (мелкие изделия);
невозможен качественный контроль;

Химический метод стерилизации бывает:

растворами химических средств в стерильных ёмкостях деконтаминируют термолабильные изделия, предварительно прошедшие этапы дезинфекции, предстерилизационной очистки и просушки, после чего промывают их стерильной водой; недостатки:

отсутствие упаковки;
небольшой срок хранения (до 3 суток);
невысокая эффективность при нарушении правил асептики;
трудоёмкость;

можно стерилизовать термолабильные материалы;
дешевизна;

газовая — использование смеси окиси этилена, озона, паров формальдегида в этиловом спирте при 80°; обрабатывают термолабильные инструменты (зеркала, эндоскопы); недостатки:

токсичность;
дороговизна;
длительность (от 120 до 960 мин.);

плазменная – выполняется в низкотемпературных плазменных стерилизаторах 20% пероксидом водорода при 35-50°в течение 90-120 минут; недостатки:

дороговизна;
отсутствие упаковки;

высокая эффективность;
можно стерилизовать любые изделия с труднодоступными местами.

Обязательно проводится контроль стерилизации физическим (с помощью термометров), химическим (индикаторные тест-полоски), биологическим (биотесты) методами.

Химические средства дезинфекции и стерилизации

Дезинфекция производится ручным и автоматизированным способами (в специальных аппаратах для дезинфекции: дез. камеры, бактерицидные излучатели, опыливатели, стерилизаторы и др.).

Для дезинфекции и стерилизации инструментов используются различные химические вещества (перекисные, альдегиды, галоидсодержащие, фенолы, хлорсодержащие и др.).

Это дезсредство на основе аммониевых соединений убивает большинство патогенных микроорганизмов. Хорошие моющие свойства позволяют использовать его для дезинфекции, объединённой с ПСО. Кроме того рабочий раствор применяется для стерилизации изделий и инструментария в ЛПУ, в косметологии, лабораториях и др.

Хлорсодержащие средства

Действие хлорсодержащих средств основано на эффекте выделения при контакте с водой свободного хлора и кислорода, которые оказывают губительное действие на микроорганизмы.

Это хлорсодержащие таблетки. При растворении их в воде получается дезинфицирующий раствор, эффективный в отношении бактерий, вирусов, грибков, спор. Применяется для обеззараживания любых поверхностей, дезинфекции и стерилизации инструментов и изделий.

Стерилизовать необходимо все изделия, контактирующие с раневой поверхностью, кровью, а также изделия, которые во время использования касаются слизистой оболочки и могут ее травмировать. В частности, такий обработке подлежат хирургические и стоматологические инструменты, эндоскопы, маникюрный и косметологический инструментарий.

Различают несколько методов:

Термический; ;
Радиационный;
Плазменный.

Несмотря на то, что все перечисленные методы стерилизации обеспечивают полное уничтожение микроорганизмов на обрабатываемых объектах, в определенных ситуациях все же необходимо отдавать предпочтение одному из них. Так, согласно санитарным нормам хирургические, а также маникюрные инструменты необходимо стерилизовать термическим способом, то есть в паровом или воздушном стерилизаторе.

Что же касается химического метода стерилизации, его применяют для обеззараживания изделий из термолабильных материалов, когда невозможно использовать другие методы. В частности, химическим методом стерилизуют эндоскопы.

Особенности химической стерилизации

Она представляет собой обеззараживание объектов при помощи химических веществ. При этом в качестве стерилизующего агента могут выступать газы и растворы химических веществ.

Газовая стерилизация осуществляется в газовых стерилизаторах оксидом этилена или его смесями. Это достаточно эффективный метод, однако он обладает серьезными недостатками — высокой токсичностью и дороговизной оборудования.

Гораздо более доступным методом является обработка изделий растворами химических средств. Для стерилизации могут использоваться только такие группы химических веществ, которые обладают спороцидной активностью. В частности, такими свойствами обладают такие дезсредства:

Кислородсодержащие дезсредства (перекись водорода);
Альдегидсодержащие дезинфицирующие средства; .

Все работы по стерилизации проводятся в асептических условиях. Персонал работает в стерильной спецодежде и перчатках. Из этого следует, что основная сложность этого метода заключается в необходимости строгого соблюдения асептики, ведь в противном случае может произойти вторичное обсеменение обработанных изделий.

Согласно инструкции к дезсредству готовят рабочий раствор в концентрации, необходимой для проведения химической стерилизации. Затем в емкость, изготовленной из материала, устойчивого к действию химических веществ, наливают дезсраствор. В раствор полностью погружают изделие, предварительно прошедшее дезинфекцию и ПСО. При этом изделия погружают в разобранном виде, каналы заполняют дезраствором. Засекают время дезинфекционной выдержки.

По завершению дезинфекционной выдержки изделия вытягивают стерильными пинцетами и перекладывают в другую стерильную емкость со стерильной водой. Затем тщательно промывают их в воде, высушивают и выкладывают в стерильный бикс, хранение в котором возможно в течение трех суток.

Центральная клиническая больница с поликлиникой Управления делами Президента РФ, Москва

Низкотемпературные методы стерилизации в профилактике хирургической инфекции

Журнал: Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2011;(6): 43‑47

Корнев И.И., Баранов Г.А., Ульянов В.И. Низкотемпературные методы стерилизации в профилактике хирургической инфекции. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2011;(6):43‑47.
Kornev II, Baranov GA, Ul'ianov VI. Low-temperature sterilization for the surgical infection prophylaxis. Pirogov Russian Journal of Surgery = Khirurgiya. Zurnal im. N.I. Pirogova. 2011;(6):43‑47. (In Russ.).

Центральная клиническая больница с поликлиникой Управления делами Президента РФ, Москва

В статье дана сравнительная характеристика используемых в лечебных учреждениях низкотемпературных методов стерилизации изделий медицинского назначения. Подчеркивается их значение в профилактике хирургической инфекции. Авторами убедительно показана эффективность и экономическая целесообразность применения газовой стерилизации с использованием этиленоксида, а также ее безопасность для больных и персонала. Наряду с другими низкотемпературными методами стерилизации рекомендовано использование в лечебных учреждениях плазменного метода.

Центральная клиническая больница с поликлиникой Управления делами Президента РФ, Москва

В ЛПУ Москвы за последние годы ИОХВ после чистых и условно-чистых операций возникали в 9,8% наблюдений [11]. В Санкт-Петербурге ИОХВ выявлена у 9% больных из 1500 оперированных [4]. Известно, что хирургическая ВБИ увеличивает продолжительность пребывания в стационаре в США в среднем на 7,4 дня, в ЛПУ Российской Федерации этот срок составляет от 6 до 10 дней, в отдельных профильных стационарах (травматология, кардиохирургия) - до 38 дней [8].

По данным американских авторов, в США затраты на один случай ИОХВ составляют 3152 доллара, в целом по стране материальный ущерб от всех ВБИ достигает 10 млрд. долларов в год, включая непрямые затраты [8].

Учитывая высокую медицинскую и экономическую значимость проблемы, многие специалисты признают ИОХВ ведущей госпитальной инфекцией.

Применяемые в медицинской практике различные термолабильные изделия, в том числе имплантаты, инструменты, оптика, эндоскопы и принадлежности к ним, диализаторы, сосудистые и урологические катетеры и т.п., могут явиться фактором передачи внутрибольничных инфекций бактериальной и вирусной этиологии. Особенно возросло количество термолабильных инструментов в последние два десятилетия, когда в лечебную практику были внедрены новые технологии, такие как оперативные вмешательства и сложные диагностические методики с применением эндоскопических инструментов и оборудования, операции по пересадке органов и тканей.

При внедрении в лечебную практику новых технологий специалисты столкнулись с проблемой надежного обеззараживания и стерилизации применяемых инструментов. Наличие в этих инструментах полимерных материалов, стекловолоконной оптики и других деликатных компонентов требует применения низкотемпературных методов стерилизации.

В практике ЛПУ используются: 1) стерилизация растворами химических соединений; 2) газовый метод; 3) плазменный метод.

Стерилизация растворами химических соединений

Используемые для этих целей препараты имеют общий недостаток - длительную экспозицию для достижения стерилизующего эффекта - от 6 до 10 ч. Кроме того, некоторые препараты вызывают коррозию металлов. Проведение стерилизации растворами химических соединений представляет собой трудоемкий процесс, связанный с большими трудностями и неудобствами: стерилизация должна проводиться в специальных, предварительно простерилизованных контейнерах; изделия, имеющие каналы и полости, должны заполняться стерилизуемым раствором; по окончании стерилизации необходима обязательная нейтрализация стерилизующего раствора путем 2-3-кратного промывания стерильной дистиллированной водой; персонал, проводящий стерилизацию, должен готовиться к ней как к работе в операционной; раcтворы нередко повреждают инструменты, не обеспечиваются даже минимальные сроки сохранения стерильности; затруднен контроль эффективности стерилизации.

Эффективное применение растворов химических соединений для проведения дезинфекции и стерилизации возможно, на наш взгляд, только при условии использования оборудования с автоматическим режимом прохождения цикла.

Указанное оборудование обеспечивает максимальную эффективность дезинфекции высокого уровня и стерилизации, полную безопасность для пациентов и персонала, так как исключается контакт с действующим веществом за счет его эффективной отмывки.

В качестве стерилянта обычно используется концентрированный раствор надуксусной кислоты с последующим введением буферного раствора для нейтрализации и предотвращения повреждений инструментов. Стерилизация проводится при температуре 55 °С. Цикл стерилизации, промывка стерильной водой и высушивание стерильным воздухом продолжаются 30 мин.

Стерилизация газами

В нашей стране накоплен 35-летний опыт использования низкотемпературной стерилизации изделий медицинского назначения. Наиболее детально изучены вопросы газовой стерилизации с использованием окиси этилена. Этот метод широко применяется в практике ЛПУ. Изучались также возможности низкотемпературной стерилизации другими альтернативными методами, а именно формальдегидом, плазмой, озоном. Практика показала, что ни один из альтернативных методов не является универсальным. Каждый имеет те или иные ограничения [7].

Стерилизация формальдегидом стоит на втором месте после этиленоксида. Оптимальный диапазон температуры для формальдегидной стерилизации должен быть в пределах 60-80 °С. Этот режим нежелательно использовать для стерилизации электрокардиостимуляторов, других имплантируемых изделий, эндоскопического оборудования, оптических инструментов и ряда других изделий.

Озон - дешевый и экологически безопасный дезинфектант. Вместе с тем он является сильным окислителем, вызывает коррозию низкосортных сталей, разрушает некоторые виды резиновых изделий. Использование озона для стерилизации в условиях лечебных учреждений, с нашей точки зрения, является перспективным. Однако предлагаемое для этих целей оборудование не соответствует необходимым требованиям. Решить вопросы создания надежного оборудования для стерилизации озоном возможно после проведения углубленных исследований по отработке оптимального режима стерилизации (взаимодействие концентрации газа, температуры, влажности, экспозиции, изучение совместимости газа с различными материалами и т.д.).

Окись этилена является основным химическим соединением для стерилизации термолабильных изделий. Она оказывает бактерицидное, вирулицидное, фунгицидное, спороцидное действие. Во время стерилизации не повреждает оптические изделия, изделия из полимерных материалов, резины, пластмасс, не вызывает коррозии металлов.

По данным американских исследователей, в лечебных учреждениях США окисью этилена стерилизуется более 50% всех изделий медицинского назначения [6, 16, 17]. К сожалению, в Российской Федерации только около 3% ЛПУ используют этот метод.

Уникальным свойством окиси этилена является ее высокая проникающая способность. Она обеспечивает надежную инактивацию микроорганизмов. В то же время эта способность, как ни парадоксально, является недостатком стерилизации этиленоксидом. Простерилизованные изделия необходимо подвергать относительно длительной дегазации, поэтому они вынужденно изымаются из оборота.

Десорбцию газа из простерилизованных изделий можно значительно ускорить за счет повышения температуры и принудительной вентиляции [2, 6, 10, 18].

В целях профилактики неблагоприятного воздействия остатков газа на организм и четкого определения сроков дегазации изделий после газовой стерилизации нами была изучена динамика десорбции газа при комнатной температуре (20-22 °С) и в условиях форсированной дегазации при температуре 55 °С в специальных аэраторах с принудительной вентиляцией. Определены и рекомендованы для практического использования сроки полного освобождения простерилизованных этиленоксидом изделий от остаточных количеств газа (см. таблицу).

Многолетний опыт использования газовой стерилизации позволил нам выработать основные требования и условия ее применения: проведение тщательной предстерилизационной очистки, выполнение правил загрузки изделий, использование современных упаковочных материалов, проведение достаточной дегазации простерилизованных изделий.

В течение последних 12-15 лет нами разработаны и внедрены в практику методики стерилизации имплантируемых материалов (электрокардиостимуляторы, интраокулярные линзы, эндопротезы клапанов сердца, протезы сосудов), аппаратов экстракорпорального кровообращения, оптических материалов, эндоскопического оборудования, инструментов для лапароскопических операций и других изделий.

Бактериологический контроль эффективности стерилизации, а также оперативный контроль с помощью физических и химических методов показали высокую надежность стерилизации изделий медицинского назначения этиленоксидом [6].

Эффективность газовой стерилизации подтверждается многолетними клиническими данными. После более чем 5000 эндоскопических операций, операций по имплантации протезов сосудов, электрокардиостимуляторов и др., выполненных за последние годы в лечебных учреждениях УД Президента РФ инструментами, простерилизованными окисью этилена, не отмечалось послеоперационных гнойно-воспалительных осложнений [6].

Полученные нами результаты показывают, что газовый метод стерилизации этиленоксидом отвечает основным требованиям, предъявляемым к стерилизации термолабильных изделий. Метод обладает высокой надежностью, при соблюдении необходимых требований безопасен для больных и персонала и может быть рекомендован для широкого практического использования в лечебных учреждениях.

Плазменная стерилизация

В настоящее время проведено довольно большое количество исследований, подтверждающих бактерицидные свойства плазмы [1, 3, 5, 9, 12-15]. Известно несколько компаний, производящих оборудование для плазменной стерилизации.

Возможно использование двух программ. Стандартная программа, применяемая для большинства изделий медицинского назначения, имеет продолжительность цикла 55 мин. Специальная программа, используемая для стерилизации гибких оптико-волоконных эндоскопов, имеет более продолжительный цикл - 72 мин.

Опыт эксплуатации плазменых стерилизаторов СТЕРРАД 100S в лечебных учреждениях показал несомненные преимущества плазменного метода стерилизации.

При эксплуатации стерилизаторов СТЕРРАД 100S в клиниках Москвы не было отмечено случаев неудовлетворительной стерилизации. Все исследования на стерильность, проведенные в течение 1999-2009 гг., дали благоприятные результаты [5].

Кроме моделей СТЕРРАД 100S, в лечебных учреждениях эксплуатируются плазменные стерилизаторы СТЕРРАД 200, которые выпускаются как в однодверном, так и в двухдверном варианте, наиболее востребованном в современных центральных стерилизационных отделениях (ЦСО).

Одним из последних достижений технологии СТЕРРАД является модель СТЕРРАД NX. Современные плазменные стерилизаторы (СТЕРРАД NX) имеют сокращенное время цикла - всего 28 мин. Компактные габариты стерилизатора и простота использования позволяют устанавливать их как в помещении ЦСО, так и в операционном блоке.

В практических условиях большое значение имеет совместимость стерилизуемых изделий с применяемым методом. Более 95% исследованных изделий оказались полностью совместимыми с технологией СТЕРРАД. Плазменный метод может использоваться для стерилизации практически всех изделий медицинского назначения, которые стерилизуются паром под давлением, окисью этилена и формальдегидом, за исключением хирургического белья, перевязочного материала, порошков и жидкостей. Однако не следует стерилизовать плазменным методом наборы хирургических инструментов массой 10 кг и более. Во-первых, сведений о влиянии плазмы пероксида водорода на большие массы изделий из металла пока недостаточно. Во-вторых, в этих случаях целесообразно и нужно использовать более доступный и дешевый метод - стерилизацию паром под давлением.

Нами в течение всего периода эксплуатации системы СТЕРРАД не было отмечено случаев повреждающего действия на инструменты и дорогостоящее оборудование.

Токсикологические исследования изделий, простерилизованных с использованием системы СТЕРРАД, показали, что эти изделия не представляют риска для здоровья пациентов и обслуживающего персонала.

Высокая эффективность плазменной стерилизации, короткое время цикла, отсутствие токсичных продуктов стерилизации, а также безопасность технологии СТЕРРАД для пациентов, персонала и окружающей среды позволяют рекомендовать этот метод наряду с другими низкотемпературными методами стерилизации для практического использования в лечебных учреждениях.

Таким образом, из применяемых в настоящее время низкотемпературных методов стерилизации, по нашему мнению, основным должен быть газовый с использованием окиси этилена, показавший эффективность в течение 35-летнего практического применения в лечебно-практических учреждениях, а плазменный метод - вспомогательным. Эти методы удачно дополняют друг друга и могут быть рационально использованы с учетом текущих потребностей лечебных учреждений.

Читайте также: