Мониторинг по африканской чуме свиней
Обновлено: 24.04.2024
Геополитические изменения, произошедшие в Европе в 80-90 гг. ХХ века привели к значительной свободе передвижения людей, в том числе и в торговых отношениях. Быстрота трансграничной и внутренней транспортировки разнообразных средств и объектов животноводства за короткое время на дальние расстояния требуют изменения отношения к эмерджентным и экзотическим болезням. Трансконтинентальный занос вируса АЧС в Грузию в 2007 г. является ярким подтверждением о реальной угрозе заноса возбудителей, независимо их природного или географического происхождения.
В работе авторами, спользуя данные диагностических и мониторинговых исследований, описаны проявление и интенсивность распространения АЧС в неблагополучных территориях ЮФО и подтверждения благополучия свиноводства в остальной части РФ.
1. Распространение АЧС и типизация эпизоотического процесса среди диких свиней в республиках Северного Кавказа
Несмотря на то, что в республиках Закавказья официально ни один случай АЧС среди диких свиней не был подтверждён, всё же предполагается их роль в заносе вируса в Армению (D. Beltrán-Alcrudo, J. Lubroth, K. Depner, S. De La Rocque, ( EMPRES), 2008). В настоящее время сведения о роли диких свиней в персистенции вируса АЧС в республиках Закавказья отсутствуют и эпизоотический статус данных стран неизвестен.
Таблица 1
Результаты вирусологического мониторинга АЧС в популяциях диких свиней
в Чеченской Республике (2007-2009)
Район
Рис.1. распространение АЧС среди диких свиней в Чеченской республике
и республике Ингушетия (2007-2009 гг.)
Обозначения : – территории вторичных вспышек АЧС среди популяций кабанов
В Шатойском, Курчалоевском, Веденском, Щёлковском, Наурском, Грозненском и Гудермесском районах были установлены вторичные вспышки с интервалом между инфицированием от нескольких недель до нескольких месяцев и даже лет (на рисунке 1 инфицированные территории, где установлены вторичные вспышки, обозначены штрихом).
Распространение АЧС на восток Северного Кавказа было подтверждено лабораторными исследованиями у диких свиней в 4-х охотохозяйствах Тарумовского, Кизлярского и Бабаюртовского районов Республики Дагестан в сентябре – октябре 2009 г. и в марте 2010 г.
Факторами, способствовавшими передаче вируса на дальние расстояния, могли также быть:
- антропогенные (охота, несанкционированный отстрел), которые приводят к распугиванию популяций и вынужденной миграции.
Проводимые мониторинговые исследования позволили своевременно заподозрить и лабораторно подтвердить новые случаи АЧС среди популяций кабанов в районах, близко прилегающих к Чёрному морю и территории Абхазии. Так, с октября 2009 г. по февраль 2010 г. были установлены 10 вспышек АЧС среди диких свиней, обитающих в горах на территориях Сочинского природного заказника, Кавказского заповедника, охотохозяйств и урочищ Апшеронского, Майкопского и Туапсинского районов. Несмотря на локальный характер этих вспышек, инфицированные вирусом дикие свиньи в этом районе с высокой плотностью обитания представляют очевидную угрозу для формирования новой эндемичной природно-очаговой зоны АЧС.
На основании регулярности отбора проб была сделана попытка сгруппировать данные лабораторных исследований по сезонам года. Из результатов, представленных в табл. 2, видно, что павшие или отстрелянные животные, в органах и тканях которых обнаружен вирус АЧС, на инфицированных территориях Северного Кавказа (Чечня, Ингушетия, Кабардино-Балкария, Дагестан) были обнаружены в любое время года, но чаще – в зимние месяцы (42%).
Отбор проб для вирусологических исследований. Для обнаружения вируса африканской чумы свиней, антигена или генома от павших или убитых с диагностической целью свиней отбирают массой 5-10 г - селезёнку (1/3 часть), портальные, желудочные и подчелюстные (или мезентериальные) лимфоузлы (целиком), лёгкое (5х5 см) и почку (1/3 часть), 3-5 мл крови (или сгусток). Кроме того, рекомендуется в случае аутолизиса трупа отбирать грудинную или трубчатую кость.
Отбор проб для серологических исследований. Минимальное количество проб, которые должны быть отобраны для серологических исследований, рассчитывают с учётом 10%-ой серопревалентности заболевших с 95%ой достоверностью для обследования каждого помещения.
Пробы крови отбирают их полой вены не менее 10 мл от каждой свиньи [3].
Для лабораторных исследований применяют следующие методы: реакцию гемадсорбции (РГАд) в культурах клеток, реакцию прямой иммунофлюоресценции (РПИФ), полимеразную цепную реакцию (ПЦР) в формате электофорезной детекции, ПЦР в формате реального времени, применяют твёрдофазный иммуноферментный анализ (ТФ – ИФА) (сэндвич-вариант). В сомнительных случаях окончательный диагноз устанавливают заражением подозрительным материалом (кровь, суспензия селезенки и лимфатических узлов) свиней, вакцинированных против классической чумы. Заражение свиней (биопроба) проводят в специализированной лаборатории с соблюдением особых мер предосторожности. Серологические типы вируса определяют в реакции преципитации (РП), реакции связывания комплемента (РСК), реакции задержки геамадсорбции (РЗГАд) и другими методами. [2]
Реакция прямой иммунофлуоресценции (РПИФ) ставят в вирусологических лабораториях для прямого обнаружения вирусного антигена в клетках органов свиней, подозреваемых в заражении вирусом африканской чумы свиней. Внутриклеточный антиген обнаруживают люминесцентной микроскопией препаратов мазков-отпечатков, окрашенных ФИТЦ-иммуноглобулинами (специфические антитела к вирусу африканской чумы свиней, меченные флуоресцеинизотиацианатом). Лучшими органами для РПИФ являются селезёнка и лимфоузлы. Исследование может быть выполнено в течение 2-4 час [2].
Оценку результатов микроскопии проводят по условной четырех крестовой шкале при окуляре 10х20-объективе 10. В положительных случаях наблюдают сверкающую, желто-зеленого цвета флуоресценцию клеток с включениями или очаговыми флуоресцирующими комплексами диффузного и гранулярного антигена, в одном из 10-50 полей зрения.
При визуальном учёте реакцию считают положительной при окрашивании хромогенного субстратного раствора в лунках, в которых предварительно инкубировали исследуемые и специфический антиген в сине-зеленый цвет и отсутствии окрашивания субстрата в лунках, в которых предварительно инкубировали нормальный антиген.
Анализ по выявлению вируса АЧС включает выделение ДНК и амплификации специфического фрагмента в полимеразной цепной реакции и электрофорез в агарозном геле [3].
Реакция считается положительной, если полоса в соответствующем треке располагается в геле точно на таком же расстоянии от старта, что и полоса положительного контроля амплификации. Размер апликонов после проведения ПЦР- 485 п.н.
Реакция считается отрицательной, если в соответствующих треках полос не обнаружено или полосы не соответствуют по размеру фрагменту в контрольной пробе (т. е. располагаются на другом расстоянии от старта) [4].
Учёт результатов проводят по анализу кривых накопления флуоресцентного сигнала по каналу FAM с помощью программного обеспечения используемого прибора.
Положительными считают результаты реакции при значениях Ct, не превышающих 35.
Образцы, для которых не определено значение Ct (кривая флуоресценции не пересекает пороговую линию) – результаты считают отрицательными [4].
Белоусова Л.В., Троценко Н.И., Преображенская Э.А. Практикум по ветеринарной вирусологии. М.: КолосС, 2006. — 248 с [Текст] с.131-140.
Госманов Р.Г., Колычев Н.М. Ветеринарная вирусология М.: KoлoсC, 2006. — З04 c. [Текст] с.151-153.
Инфекционные болезни животных / Б.Ф. Бессарабов, А.А., Е.С. Воронин и др.; Под ред. А.А. Сидорчука. - М.: Колосс, 2007.-671с [Текст] с.206-275.
Шевченко А.А., Шевченко Л.В., Черных О.Ю., Шевкопляс В.Н. Лабораторная диагностика инфекционных болезней животных. Учебное пособие. Краснодар. – 2009. – 575 С. [Текст] с.340-402
Cегодня в России отрасль свиноводства развивается интенсивными темпами, однако по-прежнему сдерживающими ее становление факторами остаются сложная эпизоотическая ситуация и неблагополучие по африканской чуме свиней. Их совокупность может существенно замедлить рост данного сегмента животноводства.
Эффективные биопрепараты, которые могли бы обеспечить надежную защиту восприимчивого поголовья от африканской чумы свиней (АЧС), до сих пор не были разработаны, поэтому в случае возникновения этого заболевания, согласно ветеринарным инструкциям, всех особей в очаге инфекции необходимо уничтожить. При отсутствии надежных профилактических и лекарственных средств для защиты свиней распространение АЧС может привести к потере животных не только на отдельных предприятиях, где выявлены вспышки, но и на уровне региона или даже страны.
МЕРЫ ПРОТИВОДЕЙСТВИЯ
Обозначенные мероприятия не дают желаемых результатов, потому что пункты 22.1 и 22.2 правил предусматривают возможность невыполнения противоэпизоотических процедур для свиноводческих предприятий (СВП) четвертого и третьего уровней компартмента. Такая ситуация при определенных обстоятельствах может способствовать распространению АЧС. Подобные фермы исключаются из угрожаемых зон, если на момент принятия решения на них не были выявлены несоответствия хотя бы одному из критериев компартментализации, указанных в правилах определения зоосанитарного статуса свиноводческих хозяйств, а также организаций, осуществляющих убой, переработку и хранение продукции свиноводства, утвержденных приказом Министерства сельского хозяйства РФ от 23 июля 2010 года № 258. В результате производства третьего и четвертого уровней искусственно изолируются из общей системы мер, даже если находятся в пятикилометровой зоне от очага инфекции, что способствует ее более быстрому распространению, из-за чего поддерживается сохранение эпизоотической цепи.
ПРИНЦИП РАБОТЫ
Принцип работы цифровой системы базируется на общей схеме биологического цикла возбудителя болезни, что необходимо для учета всех особенностей ее развития. Механизм позволяет увидеть местонахождения на карте региона СВП и границы пятикилометровых зон безопасности вокруг каждого из них. Помимо этого, можно акцентировать внимание на способах и факторах передачи чумы в обозначенных рамках и контактировании этих областей безопасности с другими предприятиями, находящимися в непосредственной близости друг от друга и соответственно влияющими на эпизоотическую ситуацию в случае возникновения очага заболевания около данных хозяйств.
ЗОНЫ РИСКА
Другой анализ ситуаций на территориях показал, что в Прохоровском районе наблюдается максимальная плотность расположения СВП, далее следуют Ракитянский, Борисовский и Ивнянский районы. В них отмечается повышенная степень вероятности возникновения АЧС, поэтому необходима коррекция дополнительных противоэпизоотических мероприятий в целях обеспечения благополучия по данной болезни. Наименьшее количество свиноводческих предприятий размещается в Старооскольском районе, они расположены на большом удалении от остальных хозяйств, что не требует новых мер для сохранения благоприятной обстановки по африканской чуме с применением созданной цифровой системы.
ОСТАНОВИТЬ РАСПРОСТРАНЕНИЕ
КОНТРОЛЬ ПЕРЕНОСЧИКОВ
Как известно, хозяйственно-экономическая деятельность животноводческих ферм может способствовать сохранению возбудителя инфекции. Кроме того, на данных предприятиях можно увидеть как поля с кормовой базой для диких кабанов, так и открытые источники ЖОУ, где могут находиться биологические переносчики АЧС. В этом качестве выступают синантропные животные — грызуны и птица, влияющие на интенсивность развития эпизоотического процесса и распространения инфекции в другие СВП, что дает возможность своевременно учесть риски, исходящие из других организаций, и принять меры для разрыва эпизоотической цепи.
РАЗРЫВ ЦЕПИ
Таким образом, принцип действия отечественной цифровой системы с использованием разработанных алгоритмов анализа механизмов и способов передачи АЧС позволяет не только спрогнозировать перемещение инфекции из очага, но и определить основные звенья эпизоотической цепи, разрыв которых будет способствовать снижению рисков попадания заболевания на свиноводческое предприятие. На базе изучения основных факторов распространения чумы и созданного алгоритма расчета шансов передачи АЧС от разных хозяйств в цифровой системе формируются карты угроз с рассчитанными значениями вероятности для каждого хозяйства на территории региона. Данная методика управления эпизоотической ситуацией дает возможность в автоматизированном режиме определять риски распространения чумы и сокращать сроки принятия решений по разработке противоэпизоотических мероприятий в целях недопущения попадания инфекции на фермы.
Читайте также: