Резонансно частотная диагностика гельминтов вирусов

Обновлено: 27.03.2024

МЕДИЦИНА НАСТОЯЩЕГО

Энергоинформационная медицина основана на представлениях о целостности человеческого организма, т.е. необходимости учета взаимосвязей между его органами и системами. Причем основой функционирования организма являются процессы энергоинформационного обмена. Организм рассматривается как сложная самоорганизующаяся система, обладающая всем необходимым для сохранения своего гомеостаза. Сущность энергоинформационной медицины состоит в активизации естественных механизмов, направленных на восстановление и поддержание состояния здоровья.

Длительные исследования Центра "ИМЕДИС" в области энергоинформацион-ного переноса и перезаписи привели к созданию уникального электронного селектора, содержащего 22000 электронных копий гомеопатических препаратов, нозодов и органопрепаратов ведущих фирм производителей: Staufen-Pharma, Wala, Heel, Weleda и др.
Селектор позволяет врачу тестировать, содержащиеся в нем препараты в любых потенциях и сочетаниях, а также осуществлять перезапись их лекарственных свойств на различные носители информации.

ВОЗМОЖНОСТИ ДИАГНОСТИКИ ПО МЕТОДУ Р. ФОЛЛЯ И ВРТ

Методы электропунктурной диагностики основаны на измерении электрических параметров биологически активных точек (БАТ) и биологически активных зон (БАЗ) кожи, позволяющих оценить состояние взаимосвязанных с ними органов и систем организма.

Применение электропунктурных методов диагностики позволяет:

  • выявлять широкий круг патологий органов и систем, используя синдромный, нозологический и топический подходы;
  • оценивать реакцию организма человека на любой стадии медикаментозного или иного метода терапии;
  • подбирать адекватную дозировку для любого лечебного воздействия (например, дозировку лекарственных и гомеопатических препаратов) как в качественном, так и в количественном отношении;
  • формировать индивидуальный рецепт для рефлекторной (электро-, лазеро-, цвето-, магнито- и др.) терапии;
  • выявлять отягощенность пациента электромагнитными, радиоактивными, геопатогенными и др. физическими, химическими и инфекционными факторами;
  • определять биологический возраст различных органов и систем организма пациента;
  • подбирать и тестировать стоматологические материалы, косметические средства, ювелирные изделия и т.д.

Эффективность методов энергоинформационной терапии по нашим и зарубежным данным составляет 75-85% при:

  • заболеваниях бронхо-легочной системы,
  • заболеваниях сердечно-сосудистой системы,
  • заболеваниях желудочно-кишечного тракта,
  • гинекологических и урологических заболеваниях,
  • кожные и аллергические заболевания,
  • хронических дегенеративных заболеваниях,
  • эндокринные нарушения, в том числе диабет,
  • болевых синдромов различной этиологии,
  • до- и послеоперационном лечении,
  • нарушения со стороны иммунной системы,
  • непереносимости стоматологических материалов, эндопротезов,
  • всех видах эндогенной и экзогенной интоксикации и др.

Даже в условиях отсутствия специализированных медицинских учреждений любой врач, имеющий в своем распоряжении аппаратуру Центра "ИМЕДИС", может заменить небольшой терапевтический стационар.
Необходимо отметить, что энергоинформационная терапия прекрасно сочетается с терапевтическими методами классической медицины, в частности, методики "ИМЕДИС" позволяют проконтролировать непосредственно в процессе терапии различные варианты физиотерапевтического или лекарственного лечения, т.е. определять дозировку, кратность и переносимость любого воздействия. Существенная помощь при обычном лекарственном лечении может быть оказана с помощью методик "ИМЕДИС", позволяющих значительно уменьшить побочные эффекты от приема тех или иных медикаментов, а также оптимизировать их подбор и дозировку.
Несомненна значимость энергоинформационной терапии для повышения адаптационных возможностей организма и приспособления его к неблагоприятным условиям окружающей среды. В частности, биорезонансная терапия позволяет изготавливать специфические препараты, усиливающие выведение из организма характерных для данной местности или данного производства токсических веществ.

ПРИНЦИПЫ И МЕХАНИЗМЫ ДЕЙСТВИЯ

Научные исследования 80-х годов доказали, что живой организм излучает электромагнитные колебания в широком спектре частот. Эти колебания управляют всеми биохимическими и морфологическими процессами, протекающими в нем. В процессе адаптивной биорезонансной терапии в организме пациента происходит подавление патологических и усиление физиологических электромагнитных колебаний, что позволяет вернуть пациента к состоянию здоровья за счет использования его собственных резервов. Процесс выздоровления протекает оптимальным для данного пациента образом в результате образования замкнутого контура биорезонансного регулирования между прибором и пациентом, т.е. происходит адаптация прибора под возможности организма пациента.

Центр "ИМЕДИС" совместно с Московской Медицинской Академией им. И.М. Сеченова и НПЦ традиционных методов лечения и гомеопатии МЗ РФ проводит курсы первичной специализации и курсы повышения квалификации по методу Р. Фолля, ВРТ, а также экзогенной и эндогенной биорезонансной терапии.
Обучение проводят преподаватели, имеющие большой стаж практической работы. Занятия проводятся малыми группами или индивидуально. При обучении используются автономные приборы для электропунктурной диагностики и терапии "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ" и автоматизированная компьютерная система "ИМЕДИС-ФОЛЛЬ".

  1. Основы акупунктуры.
  2. Введение в гомеопатию.
  3. Электропунктурная диагностика и терапия по Р. Фоллю.
  4. Медикаментозное тестирование.
  5. Диагностика и терапия нозодами и органопрепаратами.

Курсы повышения квалификации позволят врачам расширить и углубить свои знания в специальных вопросах электропунктурной диагностики и терапии, мезенхимной реактивации, практической работы с нозодами и органопрепаратами. А также ознакомиться с методиками центра "ИМЕДИС" в области цвето-, магнито- и других методов биоэнергоинформационной терапии.

На курсах большое внимание уделяется теоретическим и практическим вопросам применения биорезонансной терапии с использованием приборов, разработанных центром "ИМЕДИС".

За время существования курсов обучение прошли более 7000 врачей, которые работают на аппаратах фирмы "ИМЕДИС" во всех регионах России, СНГ и за рубежом (США, Англия, Германия, Южная Корея, Австрия, Венгрия, Израиль, Италия и др.)

ИСТОРИЯ ЦЕНТРА

ЗДЕСЬ МЫ ОТРАЗИЛИ КЛЮЧЕВЫЕ СОБЫТИЯ В РАЗВИТИИ ЦЕНТРА "ИМЕДИС":

1989 г. Начато формирование коллектива и работы по выполнению постановления СМ СССР №211 от 6 июня 1989г.
1990 г. Начато мелкосерийное производство аппаратов серии "Мини-Эксперт" для электропунктурной диагностики и терапии по методу Р.Фолля.
1993 г. Образован Центр Интеллектуальных Медицинских Систем "ИМЕДИС".
1993 г. Начато производство аппаратов для биорезонансной терапии.
1994 г. Начато производство аппаратно-програмных комплексов "ИМЕДИС-ФОЛЛЬ".
1995 г. Проведена 1-ая Международная конференция "Теоретические и клинические аспекты применения биорезонансной и мультирезонансной терапии", положившая начало традиции ежегодных форумов врачей, практикующих ЭАФ, ВРТ, БРТ, МРТ.
1997 г. Представлено оборудование для вегетативного резонансного теста, разработаны новые тест указатели.
1998 г. Разработана и внедрена резонансно-частотная диагностика и терапия вирусов, бактерий, простейших, грибков, гельминтов.
1999 г. Проведена 5-ая Международная конференция "Теоретические и клинические аспекты применения биорезонансной и мультирезонансной терапии". Среди участников ведущие специалисты Западной Европы - Др. Э.Скотт-Морли (Великобритания), Др.Б. Келлер (Германия).
2001 г. Издана уникальная книга:
Готовский Ю.В. и др. "Цветовая светотерапия" - М.: "ИМЕДИС", 2001 - 432 с.

Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания

Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания и гельминтозы. Экспертная оценка ВОЗ свидетельствует, что более 4,5 млрд человек в мире поражено возбудителями этой группы болезней [1]. Из них 2 млрд человек инфицированы Ascaris lumbricoides [2]. Ежегодно в мире аскаридозом заражаются около 650 млн человек, энтеробиозом — 460 млн [3]. По оценкам специалистов, ежегодно число заболевающих паразитарными болезнями в России превышает 20 млн человек и имеет тенденцию к увеличению [4]. По мнению ряда авторов, в последнее время под воздействием различных факторов происходит изменение картины паразитарных заболеваний, проявляющееся в неспецифичности проявлений глистно-протозойных инвазий у детей [5], в бессимптомном течении паразитарных заболеваний [6, 7, 8], в формировании у паразитов клеточных структур, способных изменять иммунный ответ хозяина на присутствие в организме паразита [9, 10, 11]. Особенностью большинства паразитарных болезней является хроническое течение, не сопровождающееся развитием острых симптомов.

Из числа протозойных инвазий наиболее массовой является лямблиоз. До сих пор проблемой является разработка эффективных лечебных мероприятий в отношении хронически рецидивирующего лямблиоза у детей. Устойчивость к противопаразитарным препаратам может быть обусловлена антигенными различиями видов лямблий с разной восприимчивостью к разным противопаразитарным препаратам [12, 13]. Наиболее массовыми гельминтозами в России являются нематодозы, возбудителями которых служат круглые гельминты: острицы, аскариды и др. [14]. Одной из актуальных задач в борьбе с паразитарными инвазиями на сегодняшний день является разработка эффективных, безопасных, недорогих методов лечения гельминтно-протозойной инвазии у детей. Лечение паразитарных инвазий эффективно при проведении комплексного подхода под контролем исследования кала, т. к. целью лечения является эрадикация паразита из кишечника [15, 16, 17]. Однако применение медикаментов широкого спектра действия не обеспечивает полного излечения при однократном курсе терапии и у ряда больных вызывает побочные эффекты аллергического, диспепсического и неврологического характера.

Учитывая сложности в диагностике паразитарных инвазий у детей, актуальной является проблема поиска новых, чувствительных, экономически эффективных и доступных методов диагностики. Полимеразная цепная реакция [ПЦР] [18, 19] нашла широкую область применения в паразитологии, ДНК-технологии имеют большое значение во многих областях паразитологии включая идентификацию и систематизацию паразитов, анализ генетической структуры, генной организации, изучение лекарственной устойчивости [20, 21, 22]). Метод ПЦР позволяет прямо обнаружить инфекционный агент или генетическую мутацию в любой биологической среде организма (слюна, мокрота, кровь, моча, кал).

Современные взгляды зарубежных и отечественных ученых на взаимоотношения паразит–хозяин с позиции колебательных и волновых процессов, присущих всем живым организмам, позволили разработать новый подход к диагностике различных заболеваний, в том числе и паразитарных. Одним из таких методов является вегетативный резонансный тест (ВРТ), позволяющий определить наличие паразитов в организме человека на разных стадиях развития: яйца, личинки, взрослых особей. Маркерами для диагностики являются резонансные электромагнитные частоты, характеризующие индивидуальный спектр электромагнитного излучения паразитов [23, 24]. Метод является гигиеническим, неинвазивным, безболезненным, что особенно важно для детей. ВРТ официально разрешен и рекомендован к медицинскому применению Министерством здравоохранения Российской Федерации (Методические рекомендации № 98/232, 99/96, 2000/74) [25].

Цель нашего исследования — совершенствование диагностики и лечения паразитозов у детей на современном этапе.

Материалы и методы исследования

В основу работы положены результаты обследования 540 детей в возрасте от 2 месяцев до 17 лет с различными гастродуоденальными заболеваниями: хроническим гастродуоденитом (53,5%), функциональным расстройством желудка (8,2%), дискинезиями желчевыводящих путей (30%). Среди сопутствующих заболеваний были диагностированы: аномалии желчного пузыря (4,8%), аллергические заболевания (10%), последствия перинатальной патологии ЦНС (7,7%), хронический иерсиниоз (1,8%), заболевания ЛОР-органов (1,8%).

Для постановки диагноза использовался тщательный сбор анамнеза, анализ жалоб, объективный осмотр, проведение необходимых лабораторных и инструментальных исследований (копроовоскопический метод диагностики, исследование кала с консервантом Барроуза, ПЦР-диагностика кала, вегетативно-резонансное тестирование).

Результаты исследования и их обсуждение

По возрасту дети были распределены на четыре группы: группа I — дети от 2 месяцев до 3 лет, группа II — от 3 до 7 лет, группа III — от 7 до 12 лет, группа IV — от 12 до 17 лет. Кроме того, в зависимости от наличия или отсутствия подтвержденной гельминтно-протозойной инвазии каждая группа была разделена на две подгруппы: А — без паразитарной инвазии, В — с подтвержденной паразитарной инвазией.

Среди обследованных детей преобладали жалобы на отрыжку, тошноту, рвоту, снижение аппетита, боли в животе в околопупочной области, неустойчивый стул (табл. 1).

Обследованные дети с подтвержденной паразитарной инвазией имели три вида моноинвазий (лямблиоз, аскаридоз, энтеробиоз) и четыре вида сочетанной глистно-протозойной инвазии (лямблиоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз, аскаридоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз). Характеристика жалоб и объективного осмотра детей в зависимости от вида паразитарной инвазии представлена в табл. 3. Как видно из таблицы, лишь головная боль и болезненность в околопупочной области при объективном осмотре достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами инвазий. Кроме того, нарушение сна достоверно (р < 0,05) чаще отмечалось у детей с моноинвазией аскаридами, а боли в околопупочной области достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами глистно-протозойной инвазии. Различия между группами паразитарных инвазий в преобладании тех или иных диспептических жалоб не достигали уровня значимости.

В нашем исследовании мы изучали диагностическую значимость различных методов диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей.

При диагностике лямблиоза при копроовоскопии 540 мазков цисты лямблий были обнаружены менее чем в 1% случаев. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей. Методом ПЦР кала лямблии были обнаружены у 28,83% обследованных детей. Методом ВРТ обследованы 136 детей, лямблии обнаружены у 31,62% детей (рис. 1).

Наиболее ценным диагностическим методом при исследовании на лямблиоз оказался метод исследования кала с консервантом Барроуза, данный метод был принят нами в качестве стандарта. Диагностические характеристики других методов диагностики определяли относительно стандарта с помощью четырехпольной таблицы. Для оценки эффективности диагностических тестов рассчитывали следующие показатели: чувствительность (Se), специфичность (Sp), точность (test eff.), прогностическая ценность отрицательного результата теста (–PV), прогностическая ценность положительного результата теста (+PV).

Как известно, от значений чувствительности и специфичности зависит прогностическая ценность (посттестовая вероятность) положительного и отрицательного результатов теста. Чем чувствительнее тест, тем выше прогностическая ценность его отрицательного результата (т. е. возрастает уверенность врача в том, что отрицательные результаты теста отвергают наличие заболевания). Чем специфичнее тест, тем выше прогностическая ценность его положительного результата (то есть врач может с большей уверенностью считать, что положительные результаты теста подтверждают предполагаемый диагноз).

Как видно из табл. 3, методы ПЦР и ВРТ обладают хорошими диагностическими показателями и высокими показателями точности теста (для ПЦР — 82,42%, для ВРТ — 69,92%). Копроскопический метод диагностики характеризовался чрезвычайно низкими диагностическими показателями (все показатели менее 1%), что ставит под сомнение целесообразность его использования для диагностики лямблиоза у детей.

При диагностике аскаридоза мы исследовали кал на яйца глист микроскопическим методом у 540 детей, аскариды обнаружены в 2,04% исследований. Методом ПЦР кала обследовано 434 ребенка, аскариды обнаружены у 1,15% детей, а методом ВРТ обследовано 135 детей, аскариды обнаружены у 7,14% детей (рис. 2).

В качестве стандарта в диагностике аскаридоза в нашем исследовании использовали ПЦР-диагностику кала.

Как известно, не существует абсолютно чувствительных и абсолютно специфичных тестов. Стопроцентные показатели получены, вероятно, из-за того, что в исследовании принимало участие относительно небольшое количество инфицированных аскаридами пациентов (табл. 4). Вероятно, с этим связаны и низкие показатели прогностической ценности положительного результата теста (12,5%). Тем не менее, полученные нами данные позволяют сделать вывод о высокой информативности ВРТ-диагностики аскаридоза у детей (чувствительность теста — 100%, специфичность — 93,96%). При оценке диагностических показателей копроскопического метода диагностики все показатели оказались менее 1%, что не позволяет рекомендовать копроскопический метод для диагностики аскаридоза у детей.

При диагностике энтеробиоза проводились однократные соскобы у 540 детей, острицы диагностированы у 0,2% детей. При исследовании кала на яйца глист у всех обследованных детей, острицы были обнаружены также у 0,2% детей. При проведении ПЦР-диагностики кала у 434 пациентов, острицы обнаружены у 9,68% детей, при вегетативно-резонансном тестировании (обследовано 135 детей) — у 12,59% (рис. 3).

В нашем исследовании стандартом в диагностике энтеробиоза являлась ПЦР-диагностика кала.

Как видно из табл. 5, копроскопический метод диагностики энтеробиоза и однократные соскобы на энтеробиоз не имеют диагностической значимости в диагностике энтеробиоза у детей. Вместе с тем метод ВРТ обладает высокой специфичностью (93,2%) и точностью теста (88,88%) в диагностике энтеробиоза.

При лечении лямблиоза процент успешной эрадикации паразита при использовании метронидазола (20 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) составил 58%, макмирора (15 мг/кг/сут в 2 приема 10 дней) — 53%, албендазола (200 мг/сут в 2 приема 7 дней) — 50%, фуразолидона (10 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) — 20%.

При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей были назначены биорезонансные препараты (Танаксол с Пара-уолнат-плас или инверсионный нозод лямблий — предварительно протестированные гомеопатические препараты) с положительным эффектом. Эрадикация простейших при использовании Танаксола с Пара-уолнат-плас оказалась успешной в 47,5% случаев. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза инверсионным нозодом лямблий эффективность терапии была еще выше и составила 71,95% (различия между эффективностью данных методов лечения были достоверными (p < 0,01%)).

При лечении аскаридоза — у 4 детей применялся Вермокс (мебендазол) (для детей от 2 до 10 лет 0,05 г/сут в 3 приема, детям старше 10 лет — 0,1 г в сутки в 3 приема во время еды. Курс лечения 3 дня), у 1 ребенка — Пирантел (12,5 мг/кг однократно), при лечении энтеробиоза 22 ребенка получали Вермокс, 20 детей — Пирантел. Данные препараты оказались эффективными у всех детей с нематодозами. Пациенты с сочетанной паразитарной инвазией получали терапию препаратом Немозол (альбендазол) в случае сочетанной гельминтно-протозойной инвазии (лямблиоз/аскаридоз, лямблиоз/энтеробиоз) в дозе 15 мг/кг/сут в 1 прием 10 дней; при сочетанной инвазии аскаридоз/энтеробиоз Немозол назначался в дозе 400 мг внутрь однократно.

Выводы

Для детей с паразитарной инвазией наиболее характерными клиническими проявлениями являются жалобы на тошноту и боли в околопупочной области. Головная боль и болезненность в околопупочной области достоверно более характерны для детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз. Нарушение сна достоверно чаще отмечается у детей с моноинвазией аскаридозом, а боли в околопупочной области — у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз.

Число эозинофилов в периферической крови у обследованных детей во всех возрастных группах было в пределах нормы и существенно не отличалось у детей с подтвержденной гельминтно-протозойной инвазией и у детей без паразитарной инвазии.

Метод копроовоскопии без использования консерванта для диагностики лямблиоза малоинформативен, что не позволяет использовать его в широкой практике. Наиболее информативными в диагностике лямблиоза оказались метод исследования кала с консервантом Барроуза и метод ВРТ. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей, методом ВРТ лямблии обнаружены у 31,62% детей.

ВРТ является неинвазивным, высокоинформативным, удобным и недорогим методом диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей. В диагностике энтеробиоза и аскаридоза метод ВРТ имел высокую диагностическую значимость наряду с методом ПЦР.

Стандартное медикаментозное лечение лямблиоза было эффективным лишь у 20–58% детей. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей максимальной эффективностью обладал инверсионный нозод лямблий (71,95%).

Литература

Savioli L., Gabrielli A. F., Ramsan M. et al. Soil-transmitted helminths and haemoglobin status among Afghan children in World Food Programme assisted schools // J. Helminthol. 2005. Vol. 79 (4). P. 381–384.

Chan M. S. The global burden of intestinal nematode infections — fifty years on // Parasitol. Today 1997. Vol. 13 (11). P. 438–443.

Онищенко Г. Г. О мерах по усилению профилактики паразитарных болезней в России // Медицинская паразитология. 2003. № 3. С. 3–7.

Озерецовская Н. Н., Зальнова Н. С., Тумольская Н. И. Клиника и лечение гельминтозов. М.: Медицина.1985. 183 с.

Horowicz M., Korman S., Shapiro M. et al. Asymptomatic Giardiasis in children // Pediatr. Inf. Dis. 1989. Vol. 87. P. 733–779.

Morrow A. L., Reves R. R., West M. S. et al. Protection against infection with Giardia lamblia by breast-feeding in a cohort of Mexican infants // J. Pediatr. 1992. Vol. 121. P. 363–370.

Pickering L. K., Engelkirk P. G. Giardia lamblia // Pediatr. Clin. Nort. Am. 1988. Vol. 35. P. 565–577.

Kulakova L., Singer S. M., Conrad J., Nach T. E. Epigenetic mechanisms are involved in the control of Giardia lamblia antigenic variation // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 61 (6). 1533–1542.

Nash T. E. Antigenic variation in Giardia lamblia and the host’s immune response // Philos. Trans. R. Soc. London Ser. B. 1997. Vol. 352. P. 1369–1375.

Sun C. H., McCaffery J. M., Reiner D. S., Gillin F. D. Mining the Giardia lamblia genome for new cyst wall proteins // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278 (24). P. 21701–21708.

Carnaby S., Ketelaris P. H., Neem A., Farthing M. J. G. Genotypic heterogeneity within Giardia lamblia isolates demonstrated by M13 DNA fingerprinting // Infect. Immun. 1994. Vol. 62. P. 1875–1880.

Majewska A. C., Kasprzak W., De Jonckheere J. F., Kaczmarek E. Heterogeneity in the sensitivity of stocks and clones of Giardia to metronidazole and ornidazole // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1991. Vol. 85. P. 67–69.

Тимченко В. Н., Леванович В. В., Абдукаева Н. С., Васильев В. В., Михайлов И. Б. Паразитарные инвазии в практике детского врача. СПб. ЭЛБИ 2005. С. 60–68.

Озерецовская Н. Н. Современные проблемы терапии гельминтозов // Мед. паразитология. 1975. 33. С. 271–276.

Lohiya G. S., Tan-Figueroa L. et al. Epidemiology and control of enterobiasis in a developmental center // West. J. Med. 2000. Vol. 172 (5). P. 305–308.

Saiki R. K., Scharf S., Faloona F., Mullis K. B. et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia // Science. 1985. Vol. 230 (4732). P. 1350–1354.

Mullis K., Faloona F., Scharf S. et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction // Cold. Spring. Harb. Symp. Quant. Biol. 1986. Vol. 51. P. 263–273.

Zhu X., Chilton N. B., Jacobs D. E. et al. Characterisation of Ascaris from human and pig hosts by nuclear ribosomal DNA sequences // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (3). P. 469–478.

Gasser R. B., Rossi L., Zhu X. Identification of Nematodirus species (Nematoda: Molineidae) from wild ruminants in Italy using ribosomal DNA markers // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (11). P. 1809–1817.

Zhang L., Gasser R. B., Zhu X., McManus D. P. Screening for different genotypes of Echinococcus granulosus within China and Argentina by single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1999. Vol. 93 (3). P. 329–334.

Электропунктурный вегетативный резонансный тест. Под ред. А. М. Василенко, Ю. В. Готовскиго, Е. Е. Мейзерова, Н. А. Королевой, В. С. Каторгина. Метод. реком. № 99/96. М.: МЗ РФ, ИПЦ ТМГФ, 2000. 27 с.

В. А. Александрова, доктор медицинских наук, профессор
В. Е. Одинцева

СПб МАПО, Санкт-Петербург

11 случаев церебральных нематодозов наблюдались в течение 2014–2017 гг. Во всех случаях нематодозов отмечались специфические радиологические симптомы туннеля и визуализации гельминта; в 9 из 11 случаев отмечен ранее не описываемый симптом «клубка в разрез

Церебральные гельминтозы могут быть представлены как цестодами, так и нематодами. У детей за последние годы церебральные гельминтозы диагностируется все чаще, и не только в развивающихся странах [1–4].

Церебральная симптоматика гельминтозов различна, зависит от расположения гельминта (в паренхиме мозга, субарахноидальном пространстве, желудочковой системе) и характера и распространенности травматической или воспалительной иммунной реакции (при гибели паразита).

Из нейровизуализационных симптомов нематод абсолютными диагностическими критериями являются симптомы:

Ниже приводятся критерии валидности параклинической диагностики церебральных гельминтозов, правда, для плоских червей (в данном случае это пристрастие автора к определенному роду паразитов), но это положение справедливо для всего семейства гельминтов (точно так же, как принципы параклинической диагностики справедливы для любой инфекции — вирусной, бактериальной, протозойной и т. д.).

Диагностические критерии и их валидность при нейроцистицеркозе (плоские черви), предложенные Del Brutto [7, 8].

Абсолютные критерии:

А. Гистологическая демонстрация паразита в мозге.
Б. Наличие кисты со сколексом при нейровизуализации.
В. Визуализация паразита при офтальмоскопическом исследовании.

Большие критерии:

А. Наличие высокоподозрительного на паразитарный генез очага поражения мозга при нейровизуализации.
Б. Позитивный серологический анализ (иммуноблот) на антипаразитарные антитела.
В. Разрешение внутричерепного кистозного образования после лечения альбендазолом или празиквантелом.

Малые критерии:

А. Наличие подозрительного на паразитарный генез очага поражения мозга при нейровизуализации.
Б. Наличие клинической симптоматики, подозрительной на цистицеркоз.
В. Позитивный анализ ликвора (ELISA) на паразитарный антиген или антипаразитарные антитела.
Г. Наличие цистицерка вне нервной системы.

Эпидемиологические критерии:

А. Проживание в эндемичном районе.
Б. Частое посещение эндемичного района.
В. Наличие домашнего контакта с паразитарной инфекцией.

Степени диагностической валидности (достоверности) критериев:

А. Наличие одного абсолютного критерия.
Б. Наличие двух больших и одного эпидемиологического критерия.

А. Наличие одного большого и двух малых критериев.
Б. Наличие одного большого, одного малого и эпидемиологического критерия.
В. Наличие трех малых и одного эпидемиологического критерия.

Анализируя приводимые диагностические критерии, несложно сделать вывод, что нейровизуализационное обнаружение характерного для гельминтов симптома является абсолютным критерием для достоверного диагноза и прочих критериев уже не требуется.

Серологическая диагностика гельминтоза осуществляется только методами иммуноблота и ELISA. Чувствительность данных методик достаточно низкая — не более 50% (о банальном иммуноферментном методе речь вообще не идет) [2, 7–10]. Высокую чувствительность и специфичность показал метод полимеразной цепной реакции (ПЦР) к паразитарным антигенам в ликворе, но в РФ отсутствует ПЦР на гельминты и антигеном служит митохондриальная ДНК только погибшего паразита, но не живого.

Материал и методы исследования

Методы исследования: основной — МРТ (Тoshiba Aquilon 1,5 Т, Mаgnetom Vision 1,5 Т, GENSOV 1,5 Т); дополнительные — ЭЭГ; стандартный анализ ликвора; рентгенография легких; УЗИ внутренних органов; исследование прозрачных сред глаза и глазного дна; общий анализ крови; исследования кала на яйца глист.

Полученные результаты

Пациент Д., 9 лет, находилась в ДКБ № 9 с 27.07.16 по 03.09.16.

Анамнез жизни — без особенностей.

Проводится дифференциальный диагноз между парциальными эпилептическими приступами и преходящими нарушениями мозгового кровообращения.

При поступлении: в соматическом и неврологическом статусе патологии не выявлено. Общий анализ крови, мочи, биохимия крови — патологии не выявляют. Анализ кала на простейшие, яйца глист — без патологии.

Осмотр окулиста — без патологии.

С момента установления (по данным клиники и МРТ) диагноза ОНМК пациенту проводится лечение в соответствии со стандартами медицинского обязательного страхования, в том числе с профилактикой тромбообразования антикоагулянтами.

А что надо делать в действительности? Проводить на фоне парентерального введения кортикостероидов (для профилактики и коррекции воспаления, которое неизбежно возникнет при гибели паразита) антипаразитарную терапию — альбендазол парентерально.

Симптом туннеля (специфический симптом!) вдоль стенки левого бокового желудочка от лобной доли в затылочную трактовки не получает. Очаг корково-подкоркового отека с геморрагией в левой гемисфере, соответствующий некротизирующему васкулиту [11, 12], — ситуация, давно известная при гельминтозах [6], трактовки не получает. На представленных снимках гельминт уже не визуализируется (погиб), но имеется текущее воспаление (в теменной, затылочной областях мозга), на которые можно и должно воздействовать — кортикостероиды парентерально.

Анализ на наиболее частые мутации митохондриальной ДНК (№ 11) при тромбофилиях патологии не выявил.

Через полгода пациент поступает снова для контроля состояния и реабилитации. В статусе — левосторонний грубый гемипарез, сила в руке — 3 балла, в ноге — 3 балла, спастический тонус в левых конечностях, поза Вернике–Манна, ходьба с костылем.

На МРТ головного мозга картина очагов локальной атрофии в лобной, теменной и затылочной долях слева, сохраняется линейная атрофия на месте хода нематоды из лобной доли в затылочную (туннель) (рис. 4, нижний ряд). Имевшееся сегментарное сужение проксимальной части левой средней мозговой артерии сохраняется без динамики. Степень расстройства функции (теперь уже невзирая на данные МРТ) не позволяет надеяться на клиническое восстановление, пациент обречен на инвалидизацию…

Прочие параклинические данные (кроме МРТ) наблюдавшихся 11 пациентов уже не имеют значения для обсуждаемого материала, как не несущие достоверной информации [3, 4].

Паразитарное поражение мозга гельминтами составило неожиданно актуальную проблему детской неврологии. Только за 2014–2017 гг. на двух клинических базах кафедры (многопрофильные детские больницы г. Москвы) выявлен 31 случай заболевания с поражением мозга. Откуда возникло такое количество пациентов — вопрос не к неврологу, а скорее к санитарному врачу; материал наблюдений (наличие у всех абсолютных диагностических критериев церебрального гельминтоза) ставит нас перед фактом.

Клиническая картина была чрезвычайно разнообразной, и ее описание не входит в задачи данной публикации.

Вернемся к публикациям Del Brutto (только потому, что он предложил развернутые критерии диагностики церебральных гельминтозов. Диагностические критерии нейроцистицеркоза — профессиональное увлечение Del Brutto, но, что справедливо для одних гельминтов, справедливо и для других (аналогично методам диагностики различных инфекционных агентов — вирусов или бактерий), и они подчеркивают приоритет методов нейровизуализации перед серологическими исследованиями.

В то же время у клиницистов бытует мнение, что для диагностики паразитоза обязательно серологическое подтверждение.

Следует подчеркнуть, что для серологических исследований рекомендуются методики ELISA и иммуноблота как более чувствительные, чем обычный иммуноферментный анализ. В г. Москве ни в одной лаборатории (как находящейся на бюджетном финансировании, так и коммерческих) методики ELISA и иммуноблота для гельминтов не применяются. Предвидя реакцию инфекционистов по вопросам серологической диагностики, позволительно задать вопрос, насколько достоверным является иммуноферментный анализ (ИФА) при диагностике, скажем, церебрального боррелиоза или туберкулеза [13, 14]. Например, мы в сентябре 2016 г. наблюдали только в одном стационаре 7 случаев классического нейроборрелиоза (острый менингит, поражение черепных нервов и радикулопатия с периферическими парезами конечностей), и ни в одном случае в остром периоде заболевания ИФА не дал положительного результата.

При отсутствии своевременного противоотечного (при живом) и противовоспалительного (при погибающем паразите) лечения высок риск развития стойких морфологических изменений мозговой ткани — атрофии и склероза, соответственно могущих приводить к стойкому дефекту нарушенной в остром периоде функции.

В то же время специфическое лечение назначает паразитолог или инфекционист (по существующим стандартам обязательного медицинского страхования невролог самостоятельно не имеет права как ставить диагноз церебрального нематодоза, так и назначать антипаразитарные препараты), незнакомый с абсолютными диагностическими критериями церебральных гельминтозов и ориентирующийся исключительно на серологическую диагностику. И если паразит погиб, то на имеющееся воспаление невролог может воздействовать, а как быть в том случае, если паразит жив, — воздействовать только на травматический (оставляемый движением паразита по мозговой ткани) отек и оставлять в покое инфекционный агент?

Данная проблема может быть решена только усилением внимания радиологов к нейровизуализационным проявлениям гельминтозов, а также санкцией инфекционистов на проведение антипаразитарной терапии.

Вывод

Литература

  1. Del Brutto O. H. Neurocysticercosis in infants and toddlers: report of seven cases and review of published patients // Pediatr. Neurol. 2013; 48; 6: 432–435.
  2. Del Brutto O. H. Neurocysticercosis // Neurophospitalist. 2014; 4; 4: 2005–2012.
  3. Чучин М. Ю. Церебральные гельминтозы и рассеянный склероз у детей. Дифферен­циальная диагностика и лечение // Клиническая неврология. 2015; 2: 23–30.
  4. Чучин М. Ю. Нейроцистицеркоз и другие церебральные гельминтозы у детей. Проблемы диагностики и лечения // Современная медицина. 2016; 4: 37–42.
  5. Song W. S., Wang B. R., Zhou W. W. et al. CT and MR characteristics of cerebral spranganosis // Am. J. Neuro Radiology. 2007; 28; 9: 1700–1705.
  6. Xinou E., Lefkopoulos A., Gelagoti M. et al. CT and MR imaging findings in cerebral toxocaral disease // Am. J. Neuroradiology. 2003; 24: 714–716.
  7. Del Brutto O. H. Neurocysticercosis // Continuum (Minneap. Minn.). 2012; 18: 1392–1416.
  8. Del Brutto O. H. Diagnostic criteria for neurocysticercosis, revisited // Pathol. Glob. Health. 2012; 106; 5: 299-30-45.
  9. Zibaci M., Frovech F., Bahrami P., Sadjadi S. M. Investigation of anti-toxocara antibodies in epileptic patients and comparison of two methods: ELISA and Western Blotting // Epilepsy Res. Treat. 2013. PMC 3654325; Pub. Online 2013; Apr. 22. DOI: 10. 1155/2013/156815.
  10. Zibaci M., Sadjadi S. M., Sarcari B., Uga S. Evoluation of Toxocara catis excretory-secretory larval antigens in serodiagnosis of human toxocariasis // J. Clin. Lab. Anal. 2016; 30; 3: 248–253.
  11. Aviv R. I., Benseler S. M., Silverman E. D. et al. MR imaging and angiography of primary CNS vasculities in childhood // Am. Journal Radiology. 2006, 27: 192–199.
  12. Benseler S. M, Silverman E., Aviv R. I. et al. Primary central nervous system vasculitis in children // Arthritis Rheumatology. 2006; 54: 1291–1297.
  13. Sousa V. M., de Carvalho L. I., Nucio S. M., Conceicao C., Silva R., Gouveia C. Meningomyeloradiculitis as an unusual presentation of neuroborreliosis in children // Pediatr. Infect. Des. 2015; 34; 10: 1132–1133.
  14. Ramachandran R., Muniyandi M., Iver V., Sripiya T., Priva B., Gouvindaraja T. G. Dilemmas in the diagnosis and treatment of intracranial tuberculomas // J. Neurol. Sci. 2017; 15; 381: 256–264.

М. Ю. Чучин, кандидат медицинских наук

ФГБОУ ДПО РМАНПО, Москва

К диагностике церебрального поражения нематодами/ М. Ю. Чучин
Для цитирования: Лечащий врач № 10/2018; Номера страниц в выпуске: 63-66
Теги: церебральный нематодоз, поражение мозга, серологический анализ

Скрининговый метод выявления паразитозов у детей при массовых осмотрах.
Кадочникова Г.В., Мерзлова Н.В., Горбань Л.Я., Колесник Н.В.
(ГОУ ВПО "Пермская Государственная медицинская академия Минздрава России", г. Пермь, Россия)

Гельминты и обитатели кишечника - простейшие, продолжают оставаться наиболее распространенными паразитарными болезнями человека и занимают важное место в проблемах гастроэнтерологии, особенно у детей [5, 6, 7, 8]. В Пермском регионе среднемноголетний показатель заболеваемости паразитозами составляет 1380 на 100000 населения. По данным статистического исследования, за период с 1988 года по 2001 г. отмечается неуклонная тенденция роста этого показателя с 657,7 до 1209 на 100 тыс., населения. Основной контингент заболевших (77,1%) составляют дети до 14 лет. Одной из особенностей гельминтов является их способность паразитировать не только в организме определенного хозяина, но и избирательно локализоваться в том или ином органе, где они находят оптимальные условия для существования и размножения [5, 10]. В процессе своего жизненного цикла многие гельминты (аскарида, токсокара, эхинококк, цистицеркус, трихинелла и др.) проходят личиночную стадию развития в организме человека. Мигрирующие личинки повреждают на своем пути органы и ткани: висцеральные оболочки, мозг, глаза, легкие, нервную систему, паренхиматозные органы, их называют "личиночными мигрантами" [10, 11].

Считают, что 5-7% личиночных мигрантов попадают в головной мозг, личинки более 30 видов паразитов поражают легочную ткань [10], Локализация личинок в органах и тканях может быть как стадиоспецифической (необходимой для развития личинки), так и циклоспецифической. Постоянно поступающие в организм метаболитные и соматические антигены паразитов, вызывают аллергические реакции немедленного и замедленного типа. Кроме того, существует феномен "молекулярной (антигенной) мимикрии", когда хозяин "не распознает" антигены гельминта как "чужие" и поэтому не вырабатывает к ним антитела. Возникает супрессия иммунного ответа [3, 5]. В последнее время среди гельминтозов большое место занимают так называемые "микст-инвазии", диагностика которых особенно трудна. Известные способы диагностики глистных инвазий и протозоозов, такие как метод толстого мазка фекалий по Като, метод формалин-эфирного осаждения, перианальный соскоб, иммуноферментный анализ сыворотки крови на инвазии/инфекции, микроскопия пузырной и печеночной желчи имеют ряд определенных недостатков, связанных как с особенностями развития паразита, так и с состоянием макроорганизма и его реактивностью. Например, периодичность яйцекладки самками остриц определяет неинформативность перианального соскоба при 1-2-кратном методе обследования; периоды положительной фазы при лямблиозе, когда лямблии массивно выделяются в дуоденальное содержимое,, сменяются отрицательной фазой, длящейся от 2-3 суток до 2-3 недель, когда паразиты не будут найдены путем микроскопии дуоденального содержимого и желчи (порций А, В, и С) и в пробах фекалий; проходя сложный цикл развития от яйца до взрослого состояния, гельминты меняют свой антигенный состав [2].

Антитела в организме хозяина вырабатываются в основном в ответ на поступление экскретов и секретов гельминта, тогда как в иммунодиагностических реакциях используются соматические антитела. Возникающая неспецифическая сенсибилизация организма, общность некоторых антигенов трематод, простейших и человека создают высокий удельный вес ложноположительных серологических реакций в титрах ниже достоверно диагностических [2, 3]. Таким образом, ИФА на гельминты является высокочувствительным методом, но низкоспецифичным. В связи с отсутствием специфичных методов диагностики гельминтозов и протозоозов разработан новый скрининговый метод тестирования на наличие в организме паразитов - резонансно-частотная диагностика (РЧД). Любая форма жизни обладает своим уникальным специфическим частотным спектром электромагнитных колебаний, что успешно использовалось в разработке этого метода. В основе метода РЧД лежит электропунктурный вегетативный резонансный тест (ВРТ), разрешенный к медицинскому применению Минздравом России [1, 4, 9].

Цель данной работы - провести сравнительную оценку выявления гельминтозов у детей методом РЧД и традиционными лабораторными методами диагностики паразитарных болезней (эфир-формалиновый метод с использованием консерванта Турдыева, метод Грехеля, ИФА сыворотки крови на паразитозы). Изучить на примере аскаридоза фазы развития паразитов (фату миграции личинок, период паразитирования аскарид в кишечнике).

Материалы и методы

Метод РЧД гельминтов и простейших основан на явлении биологического резонанса, возникающего между внешним (подающимся с прибора) сигналом и изучаемым объектом (макроорганизмом). При взаимодействии волновых источников организма человека (система, орган, ткань), с одной стороны, и эталонной частотой, характеризующей частотный спектр паразита, с другой стороны, в точке измерения возникает явление волновой интерференции, проявляющейся на шкале прибора по нахождении стрелки в определенном диапазоне. Диагностические эталонные частоты, характеризующие различные паразитозы, заданы в аппарате в виде номеров программ. Экспериментальным путем определены частотные характеристики 46 видов гельминтов и 35 видов простейших. Характерно, что разные стадии развития паразитов имеют различные частотные характеристики, что позволяет распознавать заражение макроорганизма на разных этапах развития паразитов [1, 9].

Материально-техническое обеспечение метода

Аппарат электропунктурной диагностики и электро-, магнито-, цветотерапии по БАТ и БАЗ "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ" в 2-х видах исполнения:"МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ" и "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ-ПК", совместимый с ПЭВМ с программным обеспечением, регистрационный номер 95/311-121, разработанный ООО "ЦИМС ИМЕДИС", г. Москва [1].

Показания к применению РЧД: скрининговое обследование на глистные инвазии (инфекции) при массовых обследованиях населения, оценка паразитологической эффективности антигельминтных препаратов, заболевания гастродуоденохолецистопанкреатической зоны. Различными методиками традиционными методами паразитологических исследований и РЧД одновременно было обследовано 100 детей в возрасте от 3 до 6 лет.

Результаты и обсуждения

Получены следующие результаты: истинно положительные - 28 (совпадение результатов исследования РЧД и результатов лабораторных методов), ложно-положительные - 14 (результаты, положительные по РЧД, и не подтвержденные лабораторными методами), ложно-отрицательные - 2 (глистная инвазия подтверждена лабораторно, но не выявляется РЧД), истинно-отрицательные - 56 (отсутствие патологии при лабораторном обследовании и методом РЧД). Проведение сопоставления результатов различных паразитологических методов обследования выявила достаточно высокую информативность РЧД (84%). Однако, в связи с отсутствием единой, высокоспецифической методики выявления гельминтозов и протозоозов, особенно незрелых и личиночных форм, не исключается некоторая возможность гипердиагностики.

Метод РЧД нами применялся в 2001-2002 гг. в программе проведения Всероссийской диспансеризации детского населения с целью оценки зараженности гельминтозами и протозоозами. Всего было обследовано 2120 детей от 2-х до 16 лет, проживающих в Пермской области. Положительный результат получен у 395 человек, что составило 18,63%, Среди выявленных паразитозов в 33,1% (n = 131) случаев встречается энтеробиоз, у 25,2% (n = 99) детей - аскаридоз, у 2,2% (n = 9) - токсокароз. Значительно реже у детей встречается дефиллоботриоз - 1% (n = 4), эхинококкоз - 1% (n = 4), стронгилоидоз - 1% (n = 4) и тениоз - 0,5% (n = 2) случаев. Из протозоозов у 18% (n = 71) детей выявлены лямблии. Микст-инвазии диагностировались у 18% (n = 71) детей. Из них: аскаридоз и энтеробиоз составляли 7%, аскаридоз и лямблиоз - 5%, энтеробиоз и лямблиоз - 3%, токсокароз и лямблиоз - 2% и токсокароз и энтеробиоз - 1%.

При диагностике аскаридоза была проведена попытка выявления различных фаз развития паразита. Проведено тестирование по следующей схеме: РЧД через F118 и F119 указывала на заражение аскаридами (n = 99); использование специфических частот, характеризующих разные стадии развития выявили наличие личинок (т = 21), взрослые особи, самки + яйца (n = 33), взрослые особи, самцы (n = 22), взрослые особи (самки + cамцы + яйца) (n = 23). Локализация личинок определялась путем фильтрации ее частотной характеристики через частотную характеристику внутренних органов. В легких найдены личинки у 22% детей, в стенках кровеносных сосудов - у 74%, в стенке тонкого кишечника личинки тестировались у 26% обследуемых, в бронхиолах - у 58%. в лимфоузлах - у 18% детей. Также была определена локализация личинок в придаточных пазухах носа у 8%, среднем ухе - 8%, головном мозге - 3%, сердце - 16%, почках - 16%, печени - 8%, селезенке и поджелудочной железе - в 8% случаев. Использование метода РЧД при аскаридозе в зависимости от фазы развития паразита показал большую его информативность и способность уточнять особенности патогенеза этой инвазии у детей на разных этапах инвазии, а также позволяет выявить причины снижения клинического эффекта химиотерапии. Данный подход к диагностике гельминтозов позволяет дифференцированно проводить специфическую терапию антигельминтными средствами, а также выявить патогенетическое звено в случаях плохо поддающихся лечению бронхитов, трахеитов, синуситов, аллергических синдромов, патологии гепатобилиарной системы и заболеваний желудочно-кишечного тракта, сомато-вегетативных нарушений со стороны внутренних органов,

Таким образом, проведенные исследования и опыт применения метода РЧД подтверждают его высокую диагностическую эффективность, безопасность, специфичность, неинвазивность и экономическую эффективность при скрининговых обследованиях детского и взрослого населения.

4. ИНДУКЦИОННАЯ ТЕРАПИЯ ЧАСТОТАМИ ТОКОВ МОЗГА

Организм человека является открытой кибернетической сис­темой регулирования, которая постоянно подвергается обмену информацией с внешней средой. Это означает, что регулирование смещенных частотных спектров позволяет лечить не только пси­хические, но и физические расстройства. Таким образом, индук­ция (наведение) - это лишь стимул к выравниванию заданных, но нарушенных функциональных ритмов.

Вытекающий отсюда обу­чающий эффект, связанный с таламусом, предоставляет собой определенный признак индукционной терапии, так как он делает излишним применение внешних раздражений, инородных по от­ношению к системе. В классическом смысле функциональной ме­дицины организму предлагается помощь в стимулировании са­морегуляции. Далее он становится способным лечить себя своими собственными средствами. Индукционная терапия реализуется с помощью электрических или магнитных воздействий, подводи­мых с помощью электродов или индукторов.

• программа №1. Альфа-ритмы;

• программа №2. Бета-ритмы;

• программа №3. Тета-ритмы;

• программа №4. Дельта-ритмы;

• программа №5. Программа покоя;

• программа №6. Программа сна I;

• программа №7. Детская программа;

• программа №8. Программа стресса I;

• программа №9. Программа стресса II;

• программа №10. Программа стресса III;

• программа №11. Программа стресса IV;

• программа №“12. Программа депрессии I;

• программа №13. Программа депрессии II;

• программа №“14. Программа депрессии III;

• программа №“15. Церебральная программа;

• программа №“16. Программа обучения;

• программа №“17. Программа запоминания;

• программа №“18. Программа сна II;

• программа №“20. Программа мышечной релаксации;

• программа №“21. Программа прояснения разума;

• программа №“22. Программа волн Шумана;

• программа №“23. Программа управления состоянием соз­нания;

• программа №“24. Программа развития творческих способ­ностей;

• программа №“25. Программа ситуационного моделирова­ния;

• программа №“26. Программа развития созерцательности;

• программа №27. Программа развития деловых способностей;

• программа №28. Программа преодоления своего страха;

• программа №30. Программы развития самоуважения;

• программа №31. Энергизирующая программа;

• программа №32. Спортивная программа;

• программа №33 Событийное регулирование 1;

• программа №34 Событийное регулирование 2;

• программа №35 Увеличение ресурсов адаптации 1;

• программа №36 Увеличение ресурсов адаптации 2;

• программа №37 Увеличение ресурсов нейрогуморальной регуляции;

• программа №38 Сексуальная регуляция 1;

• программа №39 Сексуальная регуляция 2;

• программа №40 Увеличение ресурсов иммунной адапта­ции 1;

• программа №41 Увеличение ресурсов иммунной адапта­ции 2;

• программа №42 Увеличение ресурсов адаптации селезен­ки и ретикулоэндотелиальной формации;

• программа №43 Увеличение ресурсов адаптации произ­вольного движения 1;

• программа №44 Увеличение ресурсов адаптации произ­вольного движения 2;

• программа №45 Увеличение ресурсов адаптивной деятель­ности;

• программа №46 Увеличение ресурсов адаптации чакр, при сублимации жизненной энергии;

• программа №47 Увеличение ресурсов адаптации чакр, при ресублимации жизненной энергии;

• программа №48 Увеличение ресурсов адаптации опорно­двигательного аппарата;

• программа №49 Увеличение ресурсов адаптации крови;

• программа №50 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 1;

• программа №51 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 2;

• программа №52 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 3;

• программа №53 Увеличение ресурсов адаптации мышеч­ной системы;

• программа №54 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани и тимуса 1;

• программа №55 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани и тимуса 2;

• программа №56 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 1;

• программа №57 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 2;

• программа №58 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 3;

• программа №59 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 4;

• программа №60 Увеличение ресурсов адаптации тимуса, гипофиза и нервной ткани 24;

• программа №61 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани;

• программа №62 Регуляция сексуальной энергии 1;

• программа N“63 Регуляция сексуальной энергии 2;

• программа №64 Регуляция сексуальной энергии 3;

• программа №65 Регуляция сексуальной энергии 4;

• программа №66 Регуляция сексуальной энергии 5;

• программа №67 Регуляция сексуальной энергии 6;

• программа №68 Регулирование сна;

• программа №69 Хроносемантическая функциональ Солн­ца 1;

• программа №70 Хроносемантическая функциональ Солн­ца 2;

• программа №71 Хроносемантическая функциональ Луны;

• программа №72 Хроносемантическая функциональ Мер­курия 1;

• программа №73 Хроносемантическая функциональ Мер­курия 2;

• программа №74 Хроносемантическая функциональ Вене­ры 1;

• программа №75 Хроносемантическая функциональ Вене­ры 2;

• программа №76 Хроносемантическая функциональ Вене­ры 3;

• программа №77 Хроносемантическая функциональ Марса 1;

• программа №78 Хроносемантическая функциональ Марса 2;

• программа №79 Хроносемантическая функциональ Юпи­тера 1;

• программа №80 Хроносемантическая функциональ Юпи­тера 2;

• программа №81 Хроносемантическая функциональ Сатурна;

• программа №82 Хроносемантическая функциональ Урана;

• программа №83 Хроносемантическая функциональ Непту­на 1;

• программа №84 Хроносемантическая функциональ Непту­на 2;

• программа N“85 Хроносемантическая функциональ Плу­тона 1;

• программа Ns86 Хроносемантическая функциональ Плу­тона 2;

• программа №87 Хроносемантическая функциональ Плу­тона 3.

5. ЭЛЕКТРОННО-ИОННАЯ РЕФЛЕКСОТЕРАПИЯ

Электронно-ионная рефлексотерапия (ЭИРТ) - разновидность электропунктурной терапии, разработанной одним из ведущих оте­чественных рефлексотерапевтов Ф.Г.Портновым [11].

В отличие от зарубежных методов ЭАТ, при данном способе используется дозированный, постоянный гальванический ток, а также введение лекарственных средств в БАТ с помощью микро­электрофореза.

Ток срабатывания системы светодиодной индикации поиска БАТ в аппаратах ЭЛАП составляет 10-25 мкА, а ток лечения 0- 500 мкА при напряжении 9 В. Сила тока лечебного воздействия подбирается в зависимости от места локализации БАТ. Так, для

БАТ, расположенных под массивным мышечным слоем, напри­мер, в ягодичной области, рекомендуется использовать величины тока порядка 350-500 мкА; для БАТ, локализованных в области спины, пояснично-крестцовой области и нижних конечностей - 250-350 мкА, в области груди и живота - 75-100 мкА, в области ушной раковины и лица - 25-50 мкА.

Для тормозного воздействия (седирования) на БАТ рекомен­дуется использовать электрический ток положительной полярности (30-120 сек на каждую БАТ), а для стимулирующего - ток отри-

Лекарственные препараты для электрофореза, Таблица 19 вводимые с отрицательного полюса - катода

Ион или частица лекарственного вещества Концентрация раствора, %
Адреналин 0,10
Акрихин 1,00
Амидопирин от 1,00 до 3,00
Аминазин от 0,50 до 1,00
Антипирин от 1,00 до 5,00
Атропин 0,10
Ацетилхолин 0,10-0,50 ex temporae
Барбамил от 2,00 до 5,00
Бензогексоний от 1,00 до 2,00
Витамин В1 от 1,00 до 5,00
Галантамин от 0.25 до 0,50
Ганглерон от 0,20 до 0,50
Гексоний 1,00
Гистамин 0,01
Дибазол от 0,50 до 2,00
Дикаин от 0,50 до 1,00
Димедрол от 0,50 до 2,00
Дионин от 0,10 до 1,00
Дипразин 1,00
Кальция хлорид (Кальций) от 1,00 до 5,00
Калия хлорид, бромид (Калий) от 1,00 до 5,00
Карбохолин 1,00
Кодеин от 0,10 до 0,50
Лития хлорид (Литий) от 1,00 до 5,00
Лидокаин от 0,25 до 0,50
Лобелии 1,00
Магния сульфат (Магний) от 2,00 до 10,00
Меди сульфат (Медь) от 0,50 до 2,00
Мезатон 1,00
Натрия хлорид (Натрий) от 1,00 до 5,00
Новокаин от 0,50 до 5,00
Но-шпа 1,00

Таблица 19 (продолжение)

Ион или частица лекарственного вещества Концентрация раствора, %
Папаверин от 0,50 до 1,00
Пахикарпин 1,00
Пентамин 5,00
Пилокарпин от 0,10 до 0,50
Пирилен от 0,10 до 0,50
Платифиллин от 0,03 до 0,05
Прозерпин 0,10
Резерпин 0,10
Серебра нитрат (Серебро) от 0,50 до 1,00
Совкаин от 0,50 до 1,00
Стрихнин 0,10
Строфантин 0,05
Тримекаин от 0,25 до 0,50
Фенамин 0,20
Фенобарбитал от 1,00 до 2,00
Физостигмин 0,10
Хинин от 1,00 до 4,00
Цинка сульфат (Цинк) от 0,50 до 2,00
Эфедрин от 0,10 до 1,00

цательной полярности или гальванический ток с изменяющейся полярностью в течение каждых 5-10 с.

С целью усиления лечебного эффекта в ЭИРТ используется введение лекарственных средств в БАТ с помощью микроэлек­трофореза. Для его осуществления на активный электрод аппа­рата одевается специальная насадка, внутрь которой помещается гигроскопическая вата, смоченная соответствующим лекарствен­ным средством.

Согласно исследованиям Ф.Г.Портнова, при электрофорезе происходит депонирование лекарственных средств в области БАТ с последующим тормозным или возбуждающим воздействием на периферические рефлекторные элементы и взаимосвязанные с ни­ми органы и тканевые системы.

По мнению автора, данный способ введения лекарственных веществ не имеет побочных эффектов и способствует их более дли­тельному действию, составляющему: для гепарина 1-2 суток; пе­нициллина - 2; пилокарпина - 3; новокаина - 3-6; адреналина - до 20 суток.

Более чем 20-летний опыт клинического применения ЭИРТ показал его высокую эффективность в лечении болевых синдро­мов при остеохондрозе позвоночника, бронхиальной астме, аллер­гической риносинусопатии, ринофарингитах, заболеваниях паро- донта, нейроциркуляторной дистонии, патологии зрительного ап­парата и др.

Аурикулотерапия, осуществляемая с помощью воздействия на биологически активные точки ушной раковины электрическими и световыми сигналами с определенной частотой следования, а так­же постоянным магнитным полем, способна оказывать выражен­ный лечебный эффект при различных формах патологии.

Основоположником аурикулотерапии является П. Ножье, об­наруживший на ушной раковине 7 рефлексогенных зон, на кото­рых проявляется одинаковая реакция к стимулу определенной частоты.

В качестве воздействующего сигнала автором использовался источник электрического тока и некогерентного светового излуче­ния (красный светодиод), который модулировался с частотой от 1 до 200 Гц.

По степени изменения пульсовой волны на лучевой артерии при той или иной частоте электро- или фотостимуляции на определен­ные аурикулярные БАТ были установлены следующие резонансные частоты для различных отделов ушной раковины: зона А (подкозелковая зона) - 2,28 Гц;

зона Б (полость ушной раковины) - 4,56 Гц;


зона В (верхняя часть ушной рако­вины) - 9,125 Гц;

зона Г (задняя часть завитка) - 18,25 Гц;

зона Д (внешняя часть козелка) - 36,5 Гц;

зона Е (задняя часть мочки уха) - 7,3 Гц;

зона Ж (передняя часть мочки уха) - 146 Гц.

Следует отметить, что анало­гичные рефлекторные зоны с раз­личными резонансными реакциями на электро- и фотостимуляцию так­же были обнаружены на коже головы,

Например, кожа лба - 146 Гц; волосистая часть головы и за­тылка - 18,25 Гц; верхние и нижние конечности - 9,125 Гц; по­лость рта, мочеиспускательный канал, влагалище, анус, проекция переднего срединного меридиана - 2,28 Гц.

Читайте также: