Вакцина против чумы крупного рогатого скота

Обновлено: 28.03.2024

Производство химически инактивированных вакцин. Современные химически инактивированные вакцины.

Вакцину против клещевого энцефалита готовили из культурального вируса, инактивированного формалином после фильтрации, затем его очищали, концентрировали градиентным центрофугированием. Полученный препарат не обладал реактогенностью и обнаружил выраженную антигенность на добровольцах и иммуногенность на мышах.

В производстве инактивированных антирабических вакцин наиболее часто применяют бета-пропиолактон. Высокоиммуногенным безопасным препаратом является вакцина из концентрированного и очищенного культурального вируса бешенства, инактивированного бета-пропиолактоном (в течение 18 ч при температуре 4°С, а затем 2 ч при 37°С). Такую вакцину производили в США, Франции, Германии. Аналогичная инактивированная вакцина получена из очищенного вируса, выращенного в культуре клеток Vero. Сорбированную вакцину против бешенства для ветеринарной практики готовили из ткани мозга инфицированных мышей, крыс или из культурального вируса. Вирус инактивировали бета-пропиолактоном.

Инактивированные вакцины против эпидемического паротита менее эффективны, чем живые. Формолвакцина вызывала образование антител к HN гликопротеину и к денатурированному F-белку и по-видимому ограничивалась индукцией IgG и слабым клеточным иммунным ответом.

Вирус восточного энцефаломиелита лошадей, выращенный в суспензии свежеизолированных клеток куринного эмбриона, инактивировали формалином или бета-пропиолактоном. Наибольшим защитным эффектом для морских свинок обладала бета-пропиолактоновая вакцина.

химически инактивированные вакцины

Вирус геморрагической болезни кроликов, инактивированный формальдегидом, вызывал у привитых животных выраженный протективный эффект. Инактивация вируса бета-пропиолактоном сопровождалась менее выраженным снижением гемагглютинирующей активности и отчетливой иммуногенностью.

Вирус чумы крупного рогатого скота, инактивированный формальдегидом в сочетании с неполным адъювантом Фрейнда, индуцировал у крупного рогатого скота иммунитет продолжительностью один год.

Высокоиммуногенная эмульгированная вакцина получена из вируса болезни Ауески, инактивированного формальдегидом или глутаральдегидом. Не менее эффективные культуральные вакцины получены с использованием для инактивации вируса этиленимина или этилэтиленимина. По иммуногенной активности они не уступали живой вакцине против болезни Ауески.

Инактивированную вакцину против PC-инфекции крупного рогатого скота удалось приготовить из инфицированных вирусом клеток, обработанных глютаральдегидом. При испытании на телятах эта вакцина оказалась более иммуногенной, чем живая вакцина из аттенуированного штамма PC-вируса крупного рогатого скота и ts-мутанта PC-вируса человека. Для изготовления вакцины против лейкоза крупного рогатого скота использовали постоянную линию клеток FLK, персистентно инфицированную этим вирусом. Клетки инактивировали формальдегидом или глютаральдегидом и добавляли адъювант. Только препарат, инактивированный формальдегидом, обладал протективным действием.

Инактивация вируса катаральной лихорадки овец КЛО димером этиленимина (0,04-0,06 %; 37°С; в течение 3-5 дней) позволила получить безопасный высокоиммуногенный препарат. Повышение концентрации ДЭИ и продолжительности обработки вируса в 2—3 раза не снижало заметно его иммуногенности и гарантировало получение безопасного препарата, что свидетельствует о мягком инактивируюшем действии ДЭИ на вирус КЛО.

Формолвакцина против артеривирусной инфекции лошадей оказалась достаточно эффективным препаратом. Выраженный иммунный статус поддерживался ревакцинацией через каждые 6 мес.

Вирусы, инактивированные сернокислой медью, сохраняли антигенные и иммунногенные свойства, а также целостность вирионной ДНК.

При инактивации парвовируса свиней формальдегидом гемагглютинирующая активность практически исчезла, тогда как при инактивации ДЭИ снижалась незначительно. Однако по антигенности препараты в обоих случаях практически не различались между собой.

Один из способов повышения безопасности инактивированных вакцин на случай неполной инактивации вируса — использование аттенуированных штаммов. Классический пример этого — изготовление инактивированных вакцин из аттенуированных штаммов вируса бешенства. Иммуногенные инактивированные вакцины были получены также из аттенуированных штаммов вируса ньюкаслской болезни, парвовирусов энтерита кошек и собак, вируса болезни Ауески. Изготовление инактивированных вакцин из аттенуированных или частично аттенуированных штаммов вируса усиливает безопасность производства вакцин, что представляет большой интерес при работе с возбудителями опасных болезней.

При изготовлении инактивированных вакцин с учетом непредвиденного распространения болезней и резкого возрастания потребности в средствах специфической профилактики целесообразна разработка методов длительного хранения концентрированных вирусных антигенов при низких температурах. Создание резерва такого вирусного сырья кажется более перспективным, чем создание резерва готового продукта. Аналогичные соображения высказывались в связи с рассмотрением перспективных направлений в специфической профилактике ящура. Установлено, что инактивированная вакцина против ящура, приготовленная из вирусных концентратов, хранившихся в жидком азоте на протяжении года, обладала высокой протективной активностью.

- Вернуться в оглавление раздела "Микробиология."

Информация на сайте подлежит консультации лечащим врачом и не заменяет очной консультации с ним.
См. подробнее в пользовательском соглашении.

Чума крупного рогатого скота. Возбудитель чумы крупного рогатого скота.

Чума крупного рогатого скота — остропротекающая контагиозная болезнь, характеризующаяся высокой лихорадкой, катарально-геморагическим и крупозно-дифтерическим воспалением слизистых оболочек и гибелью до 90—100% животных. В естественных условиях к вирусу чувствительны крупный рогатый скот, зебу и буйволы. Дикие жвачные животные болеют в легкой форме и распространяют болезнь на огромные пространства. Домашние свиньи могут проявлять признаки болезни и являются важным резервуаром вируса в Азии. Из диких животных восприимчивы олени, антилопы и гиппопотамы.

Чума крупного рогатого скота продолжает оставаться бедствием для многих стран Африки и тропической Азии. Вирус размножается в лимфоузлах, а после развития виремии, длящейся 2—3 дня, обнаруживается в лимфоузлах, селезенке, костном мозге, дыхательных и пищеварительных органах. В результате размножения вируса и разрушения клеток в лимфоидных органах развивается лейкопения и иммунодефицит.

Антигенная вариабельность у вируса чумы крупного рогатого скота не установлена. Все его штаммы иммунологически идентичны.

Животные-реконвалесценты приобретают пожизненный иммунитет. ВНА появляются через 6—7 дней и достигают максимума через 3—4 недели после инфицирования. Вирус чумы крупного рогатого скота имеет выраженную антигенную активность и индуцирует синтез нейтрализующих, комплементсвязывающих, преципитирующих и подавляющих гемагглютинацию антител. Колостральный иммунитет у телят от коров, иммунизированных активно или вследствие переболевания, сохраняется 6-8 мес. Поскольку колостральные антитела тормозят образование иммунитета, телят нельзя вакцинировать раньше этого срока.
Вирус чумы крупного рогатого скота имеет близкое антигенное родство с вирусами чумы мелкого рогатого скота, чумы плотоядных и кори.

чума крупного рогатого скота

Вакцину против чумы крупного рогатого скота можно использовать для иммунизации овец и коз, которые могут иметь субклиническую инфекцию. Сыворотка против вируса чумы плотоядных или против кори человека нейтрализует in vitro вирус чумы крупного рогатого скота, а сыворотка против вируса чумы крупного рогатого скота нейтрализует вирусы чумы плотоядных и кори. Однако иммунизация крупного рогатого скота против чумы дает эффект только при введении высоких доз вируса чумы плотоядных и не дает результатов при введении вируса кори. Гемагглютинирующий антиген у вируса чумы крупного рогатого скота выявляют только после специальной обработки. Антисыворотка к вирусу чумы крупного рогатого скота нейтрализует гемагглютинирующую активность вируса кори.

Для специфической профилактики чумы крупного рогатого скота в настоящее время используют живые культуральные вакцины, которые по безопасности и иммуногенности отвечают современным требованиям.

Вакцины против чумы крупного рогатого скота являются одними из наиболее эффективных вирусных вакцин. Три типа аттенуированных вакцин использовали для ликвидации ЧКРС: лапинизированную, капринизированную и культуральную. Лапинизированную вакцину размножали на кроликах — штамм Накамура-III. Затем его адаптировали к куриным эмбрионам. Лапинизированно-авинизированную (LA) вакцину в основном применяли в Азии. Капринизированная вакцина из штамма Муктесвар была первой вакциной против ЧКРС и использовалась до недавнего времени в Индии.

При сравнительном анализе нуклеотидной последовательности геномов вакцинного штамма RBOK и вирулентного изолята вируса чумы КРС выявлено 87 замен, расположенных в областях кодирующих белки, а также в нетранслируемых участках, которые являются значимыми в проявлении вирулентных свойств.

С целью снижения возможной спонтанной контаминации вакцины RBOK вирусами КРС для размножения вакцинного вируса используют перевиваемую линию клеток Vera (не пермиссивную для вируса диареи КРС). Отрицательным качеством вакцины является ее термолабильность. Она может длительно храниться лишь при -20°С. Используя более совершенную лиофилизационную технику и среду высушивания, удалось получить термостабильную вакцину, которая оставалась активной в течение месяца при 37°С.

После однократной прививки (100 ИД100) иммунитет наступает через 72 часа. Быстрый защитный эффект после вакцинации обеспечивается за счет интерференции, поскольку нейтрализующие антитела проявляются через семь дней и достигают максимума через три недели. У вакцинированных животных, в отличие от больных, в органах не выявляют преципитирующего антигена, что дает возможность дифференцировать вакцинированных от больных животных. С увеличением дозы вакцины в 100 раз титр ВНА у крупного рогатого скота повышался всего в 5 раз. Прививка в дозе 100 ИД100 вызывала образование ВНА у всех животных, титр которых сохранялся на максимальном уровне в течение 64 мес, что соответствовало также продолжительности напряженного иммунитета.

У крупного рогатого скота зараженного через 7 дней после вакцинации, не отмечено клинических признаков заболевания, не обнаружен вирус в крови и не отмечена его экскреция во внешнюю среду. Однако у некоторых животных отмечено выраженное повышение титра специфических антител.

Определяющее значение в борьбе с чумой КРС придается вакцинации. Обычно считается, вакцинация не менее 90% популяции скота прекращает заболевание. Однако наиболее эффективной будет 100%-ная иммунизация скота с учетом продолжительности колострального иммунитета у телят (3—8 мес).

Рекомбинантные векторные вакцины были созданы путем вставки Н и/или F генов вируса ЧКРС в вирус осповакцины в качестве вектора. Лиофилизированная рекомбинантная вакцина (RRV), так же как сухая осповакцина, сохраняла активность 1 месяц при 45°С, а после восстановления (растворения) — 1 неделю при 37°С или 1 день при 45°С. RRV вакцина не вызывала реакции у привитых животных и не передавалась контактно КРС при совместном содержании в течение года. Привитые животные были полностью защищены от заболевания и гибели при экспериментальном заражении. RRV (рекомби-нантный вирус) обладал генетической стабильностью в течение 5 пассажей на КРС. Вставка Н гена вируса ЧКРС в область гена гемагглютинина вируса осповакцины вызвала его инсерционную инактивацию. Эта потеря ГА стала своеобразным фенотипическим маркером рекомбинантного вируса RRV. Рекомбинантный вирус с аналогичными свойствами (CPV) получен при использовании вируса оспы канареек в качестве вектора.

Информация на сайте подлежит консультации лечащим врачом и не заменяет очной консультации с ним.
См. подробнее в пользовательском соглашении.

Лиофилизат для приготовления суспензии для инъекций, накожного скарификационного нанесения и ингаляций.

Дата последнего изменения

Состав

Одна доза вакцины содержит:

Действующее вещество

Живая культура вакцинного штамма Yersinia pestis EV линии НИИЭГ — (2,4–3,6)×10 8 живых микробных клеток (м.к.) в 0,5 мл для подкожного введения взрослым, или (2,4–3,6)×10 8 живых м.к. в 0,1 мл для внутрикожного введения, или (2,4–3,6)×10 9 живых м.к. в 0,15 мл для накожного скарификационного нанесения, или (2,0–8,0)×10 6 живых м.к. в 0,15 мл для ингаляционного введения;

Вспомогательные вещества (стабилизаторы)

Сахароза — (0,00143 ± 0,00097) г, желатин — (0,000143 ± 0,000097) г, тиомочевина — (0,000143 ± 0,000097) г.

Характеристика

Вакцина представляет собой живую культуру вакцинного штамма Yersinia pestis EV линии НИИЭГ, лиофилизированную в растворе стабилизаторов (сахарозы, желатина, тиомочевины) из объема 1 мл или 2 мл.

Описание лекарственной формы

Пористая масса серовато-белого цвета. Восстановленный препарат — гомогенная суспензия серовато белого цвета без посторонних примесей и хлопьев.

Показания

Профилактика чумы. Прививкам подлежат дети с 2-х лет и взрослые, проживающие на энзоотичных по чуме территориях, а также лица, работающие с живыми культурами возбудителя чумы.

Противопоказания

Детский возраст до 2-х лет.

Острые инфекционные и неинфекционные заболевания, хронические заболевания в стадии обострения — прививки проводят не ранее, чем через 1 месяц после выздоровления (ремиссии).

Первичные и вторичные иммунодефициты. При лечении кортикостероидными препаратами, антиметаболитами, химио- и рентгенотерапии — прививки проводят не ранее, чем через 6 месяцев после окончания лечения.

Системные заболевания соединительной ткани.

Злокачественные новообразования и злокачественные болезни крови.

Распространенные рецидивирующие заболевания кожи (при накожной иммунизации).

Хронические заболевания органов дыхания (при ингаляционной иммунизации).

Аллергические заболевания (бронхиальная астма, анафилактический шок, отек Квинке в анамнезе).

Беременность и период грудного вскармливания.

Применение при беременности и кормлении грудью

Нет достаточных доказательств безопасности применения препарата во время беременности. Чтобы избежать неблагоприятного воздействия на плод, не следует проводить вакцинацию в период беременности и грудного вскармливания.

Способ применения и дозы

Вакцинацию проводят однократно подкожным, накожным, внутрикожным или ингаляционным способами. Ревакцинацию осуществляют накожным способом через 1 год после вакцинации, при неблагоприятной эпидемической обстановке — через 6 месяцев после вакцинации.

Перед вскрытием каждую ампулу просматривают. Не подлежит применению препарат, целостность упаковки которого повреждена, с истекшим сроком годности, при нарушении режима хранения. Восстановленный препарат должен полностью раствориться в течение 3 мин. Растворенная вакцина — гомогенная взвесь без посторонних примесей и хлопьев.

Вскрытие ампул и процедуру введения препарата осуществляют при строгом соблюдении правил асептики. Перенос вскрытой ампулы из одного помещения в другое не допускается.

В зависимости от возраста прививаемых и способа введения используют следующие дозы вакцины.

Дозы для вакцинации

Доза вакцины (количество живых микробных клеток)

для введения способом…

1 доза — 300 млн живых микробных клеток (ж.м.к.) в 0,1 мл

1 доза — 300 млн ж.м.к. в 0,5 мл

1 доза — 3 млрд ж.м.к. в 0,15 мл (3 капли)

1 доза — 5 млн ж.м.к. в 0,15 мл

1/3 дозы — 100 млн ж.м.к. в 0,1 мл

1 доза — 3 млрд ж.м.к. в 0,15 мл (3 капли)

1/2 дозы — 150 млн ж.м.к. в 0,1 мл

1 доза — 3 млрд ж.м.к. в 0,15 мл (3 капли)

1/3 дозы — 100 млн ж.м.к. в 0,1 мл

2/3 дозы — 2 млрд ж.м.к. в 0,1 мл (2 капли)

1/3 дозы — 100 млн ж.м.к. в 0,1 мл

1/3 дозы — 1 млрд ж.м.к. в 0,05 мл (1 капля)

Для накожного применения используют вакцину с содержанием в ампуле не менее 6 накожных (60 подкожных) доз!

Непосредственно перед иммунизацией вакцину восстанавливают внесением в ампулу 0,9% раствора натрия хлорида для инъекций в объеме, указанном для накожного применения на этикетке коробки.

Вакцинацию проводят на наружной поверхности средней трети плеча следующим образом: взрослым оспопрививательным пером слегка соскабливают (до покраснения) поверхностный слой эпидермиса на 3‑х участках кожи, предварительно обработанной 70° этиловым спиртом. Расстояние между участками составляет от 3‑х до 4 - х см, площадь участка от 1 до 1,5 см 2 . При вакцинации детей эпидермис соскабливают на 1 или 2 участках кожи.

На каждый участок скарифицированной кожи пипеткой наносят по 1 капле вакцины, после чего индивидуальным оспопрививательным пером через каждую каплю вакцины крестообразно наносят 4 горизонтальные и 4 вертикальные линейные насечки длиной 1 см. Затем оспопрививательным пером в течение нескольких секунд тщательно втирают капли вакцины в скарифицированную кожу и дают подсохнуть в течение 5 мин. Насечки следует делать неглубокие, чтобы они не кровоточили (кровь может выступать только в виде мелких росинок). Для каждого прививаемого используют отдельное одноразовое оспопрививательное перо. Запрещается взамен перьев пользоваться иглами, скальпелями и т.п.

Категорически запрещается использовать для подкожного применения вакцину, разведенную для накожного применения!

Непосредственно перед иммунизацией вакцину восстанавливают в зависимости от объема лиофилизата: при объеме лиофилизата 2 мл вакцину восстанавливают 1,8 мл 0,9% раствора натрия хлорида; при объеме лиофилизата 1 мл вакцину восстанавливают 0,9 мл 0,9% раствора натрия хлорида. Полученную взвесь отбирают с помощью стерильного шприца из ампулы и переносят в стерильный флакон, содержащий 0,9% раствор натрия хлорида для инъекций в объеме, указанном для подкожного применения на этикетке коробки. При этом учитывают объем 0,9% раствора натрия хлорида, использованного для восстановления препарата.

Кожу в месте инъекции предварительно обрабатывают 70° этиловым спиртом. Вакцину вводят шприцем ниже угла лопатки или безыгольным инъектором БИ‑ЗМ с протектором противоинфекционным ППИ‑2 в верхнюю треть плеча позади дельтовидной мышцы.

Непосредственно перед иммунизацией вакцину восстанавливают в зависимости от объема лиофилизата: при объеме лиофилизата 2 мл вакцину восстанавливают 1,8 мл 0,9% раствора натрия хлорида; при объеме лиофилизата 1 мл вакцину восстанавливают 0,9 мл 0,9% раствора натрия хлорида. Полученную взвесь отбирают с помощью стерильного шприца из ампулы и переносят в стерильный флакон, содержащий 0,9% раствор натрия хлорида для инъекций в объеме, указанном для внутрикожного применения на этикетке коробки. При этом учитывают объем 0,9% раствора натрия хлорида, использованного для восстановления препарата.

Количество доз и объем растворителя для подростков с 14 лет и взрослых до 60-ти лет указаны на этикетке коробки. Для вакцинации детей в возрасте 10–13 лет объем растворителя при втором разведении удваивают, для вакцинации детей в возрасте от 2 до 9 лет и взрослых старше 60 лет объем растворителя утраивают. Вакцину взрослым и детям вводят в объеме 0,1 мл внутрикожно в область наружной поверхности плеча левой руки после обработки кожи 70° этиловым спиртом с помощью безыгольного инъектора БИ‑ЗМ с протектором противоинфекционным ППИ‑2 или шприцем объемом 1 мл с тонкой иглой с коротким срезом.

Вакцинация ингаляционным способом

Вакцинацию проводят в специальных помещениях стационарного или временного типа объемом от 50 до 150 м 3 , высотой от 2,5 до 4,5 м (соотношение длины и ширины не более чем 2:1). Указанные помещения должны быть приспособлены для быстрого проветривания, а стационарные кабинеты ингаляционной терапии должны быть оборудованы вытяжной вентиляцией.

Используется только вакцина в объеме 2 мл препарата. Вакцину в объеме 2 мл лиофилизата разводят 2 мл стерильного 10% раствора лактозы. Ампулу встряхивают до получения гомогенной взвеси. Полученную взвесь переносят в стерильный флакон с необходимым для дальнейшего разведения объемом 10% раствора лактозы (согласно указанию на коробке). При этом учитывают объем 10% раствора лактозы, использованный для приготовления исходного разведения. Температура 10% раствора лактозы должна соответствовать температуре, при которой хранился сухой препарат перед разведением.

Полученную микробную суспензию в количестве, определяемом объемом помещения (0,1 мл на 1 м 3 помещения), заливают в резервуар распылителя. Распыление производится с помощью пневматического распылителя эжекционного типа. Распылитель устанавливается вертикально, соплом вверх, в центре помещения на высоте 80–120 см от пола. Распыление производят сжатым воздухом под давлением 1,2 атм до полного израсходования суспензии, залитой в резервуар. Сжатый воздух подается на распылитель до конца сеанса иммунизации. Продолжительность сеанса иммунизации 5 мин. Одна доза для ингаляционного применения составляет (5 ± 3)?10 6 живых микробных клеток.

Число людей, иммунизированных за один сеанс, определяется из расчета от 1,4 до 2 м 3 помещения на одного человека.

После каждого сеанса иммунизации кабинет ингаляционной терапии вентилируют не менее 5 мин. При проведении иммунизации в палатке после каждого сеанса откидывают пологи не менее, чем на 5 мин. Персонал, проводящий вакцинацию, в случае необходимости входа в кабинет ингаляционной терапии в течение сеанса и первых 5 мин после его окончания, должен быть одет в специальную одежду (нательное белье, носки, хлопчатобумажный комбинезон, противогаз, тапочки).

Проведенные разными способами прививки регистрируют в установленных учетных формах с указанием наименования препарата, изготовителя, даты прививки, дозы, способа введения, номера серии, срока годности, реакции на прививку.

Чума мелких жвачных. Респираторно-синтициальная инфекция крупного рогатого скота.

Чума мелких жвачных (ЧМЖ) - тяжелое заболевание, поражающее овец и коз в Западной Африке. Она сходна с чумой крупного рогатого скота. Наиболее чувствительны к заболеванию козы, смертность среди них доходит до 95%. ЧМЖ проявляется в сверхострой, острой и хронической формах. Инкубационный период пять дней. Первым признаком заболевания является повышение температуры тела до 42°С, затем развивается ларингофарингит, язвенный гингивит и диарея с гнойно-слизистыми выделениями.

Биологические и физико-химические характеристики вируса чумы мелких жвачных свидетельствуют, что он близкородственен вирусам кори, чумы крупного рогатого скота и чумы плотоядных, составляющим род морбилливирусов, что дает основание считать вирус ЧМЖ четвертым представителем рода. Вирус не патогенен для крупного рогатого скота, в то время как вакцина против чумы крупного рогатого скота предохраняет овец и коз от клинических проявлений ЧМЖ, не препятствуя персистированию вируса среди мелких жвачных. У ягнят иммунитет длится не менее 4 мес.

Респираторно-синтициальная инфекция крупного рогатого скота (PC-инфекция КРС)

В большинстве случаев PC-вирус вызывает инапарантную инфекцию. Хотя у новорожденных и молодых телят вызывает пневмонию, отек легких и эмфизему. Заболеваемость высокая, смертность низкая.

Заболевание наиболее сильно проявляется у телят в возрасте 1—3 мес. и характеризуется повышением температуры, сильным кашлем, серозным ринитом, пневмонией или бронхопневмонией.

чума мелких жвачных

PC-инфекция широко распространена в мире. Она часто осложняется вторичной бактериальной инфекцией, особенно пастереллёзом. В этиологии массовых пневмоний молочных телят видная роль принадлежит респираторно-синциальному (PC) вирусу, который в ряде случаев обнаруживали гораздо чаще, чем инфекционный ринотрахеит, вирусную диарею и парагрипп-3.

В стадах крупного рогатого скота с респираторными заболеваниями ВН-антитела к PC-вирусу выявляли чаще (41%), чем к ПГ-3 (17%). У телят РС-вирус выделяли из носоглотки на 2— 11 -й день после заражения. Методом иммунофлюоренсценции вирус обнаруживали в клетках бронхиального эпителия и альвеолярного экссудата в течение 11 дней после заражения; антитела в сыворотке крови — на 7—11 день. Эпителиальные клетки легких, очевидно, являются клеткамимишенями для вируса, индуцирующего образование эпителиально-клеточного синцития во многих участках легких. Интратрахеальное заражение 4-недельных ягнят PC-вирусом сопровождалось легким респираторным заболеванием с кратковременным повышением температуры у некоторых животных.

Продолжительность и напряженность иммунитета у переболевших животных не определены. Материнские антитела слабо предохраняют потомство от инфекции, но частота и тяжесть болезни обратно пропорциональны уровню специфических материнских антител. Для PC-инфекции характерны повторные заболевания даже при наличии в крови антител, что свидетельствует о второстепенной роли сывороточных антител в иммунитете. Важное значение в иммунитете принадлежит секреторным антителам слизистой оболочки респираторного тракта и клеточным факторам, в частности зависимому от антител иммунному лизису инфицированных клеток.

Для специфической профилактики используют живые вакцины; эффективные инактивированные вакцины не разработаны. Телят вакцинируют внутримышечно двукратно с интервалом три недели. Вакцинный вирус не экскретируется привитыми животными. Реинфекция вакцинированных телят возможна, но она протекает обычно бессимптомно. Живая вакцина из аттенуинованного нереверсибельного штамма после двукратного введения (3,3 lg ТЦД50) с интервалом 21 день вызывала сероконверсию у всех телят и снижала клиническое проявление болезни после заражения вирулентным штаммом вируса.

Серологические исследования и клинические наблюдения показали безопасность и эффективность живой вакцины, особенно при двукратном применении. Среди вакцинированных животных заболеваемость была значительно ниже. В результате вакцинации животных в течение ряда лет экономические потери снизились в несколько раз.

Живую комбинированную вакцину против PC-инфекции и вирусной диареи крупного рогатого скота испытывали на телятах 2—14 месячного возраста. Вакцину вводили внутримышечно с 3-недельным интервалом. На некоторых фермах у небольшой части привитых телят наблюдали кратковременные респираторные или лихорадочные симптомы. Сероконверсия к PC-вирусу установлена у 98% животных, а к вирусу диареи — у 96%. Иммуноинтерференции между аттенуированными штаммами обоих вирусов не установлено. Защитный эффект вакцинации против тяжелых респираторных симптомов, обусловленных полевым штаммом PC-вируса, составил 81%. Уровень сероконверсии был обратно пропорционален уровню колостральных антител. Одновременное введение живых вакцин против PC-инфекции, вирусной диареи, ринотрахеита и ПГ-3 сопровождалось напряженным гуморальным иммунитетом на каждую из вакцин.

Создана рекомбинантная вакцина, вектором которой служит вирус инфекционного ринотрахеита КРС, несущий ген G-белка PC-вируса КРС, вызывающий образование иммунитета слизистых и защиту телят. Мутант, лишенный гена NS2, не обладает реверсией и представляет особый интерес в использовании в качестве живой вакцины.

На основе ДНК-технологии получен химерный вирус, одновременно экспрессирующий гликопротеины PC-вируса подгрупп А и В.

В НПО НАРВАК (Москва) создана инактивированная комбинированная вакцина (Комбовак) против 6 вирусных заболеваний крупного рогатого скота: инфекционного ринотрахеита, вирусной диареи, парагриппа-3, рота- и коронавирусных болезней и PC-инфекции. Эта вакцина широко применяется с положительным результатом в России.

Следует отметить, что, кроме PC-вируса, у крупного рогатого скота обнаружен синтициальный вирус. Между этими двумя вирусами отсутствует антигенное родство. Синтициальный вирус выделен от клинически здорового скота, и его роль в патологии не установлена. Он передается потомству через молозиво и молоко, а также in utero и при контакте с инфицированными животными.

Информация на сайте подлежит консультации лечащим врачом и не заменяет очной консультации с ним.
См. подробнее в пользовательском соглашении.

Читайте также: