Что такое врт диагностики инфекции

Обновлено: 12.05.2024

Как проходит диагностика
Сколько готовится анализ
Подготовка к сдаче анализа

Цена	2 750 руб.
Срок исполнения	до 2 рабочих дней
Исследуемый материал	Мазок со слизистой носоглотки и/или ротоглотки

Как проходит диагностика?

Тест представляет собой мазок из горла и носа.
Забор материала на исследование проводится при нормальной температуре (на момент осмотра температура не должна быть выше 37,5 °C). Катаральные явления (отёк слизистой, насморк, першение и боли в горле) не являются противопоказанием к забору.
Пациентам необходимо иметь при себе паспорт.
Рекомендуем приходить в масках и одноразовых перчатках.
Забор материала на анализ проводится с соблюдением всех правил санитарно-эпидемиологического режима.

Если у вас повышена температура, кашель, одышка, боль в мышцах, слабость и ощущение заложенности в грудной клетке, пожалуйста, оставайтесь дома и вызовите врача .

Сколько готовится анализ

Срок готовности теста на коронавирус — до 2-х дней с момента взятия мазка.
Все сомнительные результаты тестов подлежат обязательной проверке в референсных внешних лабораториях, в связи с чем срок готовности окончательного анализа может быть увеличен на 2-4 дня.

Подготовка к сдаче анализа

За 3-4 часа до этого не употреблять пищу, не пить, не чистить зубы, не полоскать рот/горло, не жевать жевательную резинку, не курить.
За 6 часов до исследования не использовать лекарственные средства для орошения ротоглотки и препараты для рассасывания.
Непосредственно перед взятием материала не использовать пастилки для освежения дыхания.

Стоимость услуг

Услуги

В клинике для поддержания режима свободной уверенности в безопасности лечебного учреждения и нераспространения коронавирусной инфекции, проанализирован опыт стран, выстроивших наиболее успешные способы контроля над этой инфекцией. В этих странах наблюдается очень низкий уровень инфицирования граждан при большом количестве тестирования на новый коронавирус. Используя эти знания, мы создали новый принцип работы в нашей клинике, отражающий заботу о благополучии обратившегося пациента.

Фотогалерея

Поскольку, даже экипированный средствами индивидуальной защиты человек представляет, хотя и низкую, эпидемическую опасность, то, специальным образом, контакт с медицинской сестрой, производящей забор материала, полностью исключён. Тестируемый находится на открытом воздухе, под навесом – самом безопасном месте, с точки зрения профилактики инфицирования. Открытое пространство с бесконечным естественным проветриванием – единственно надёжный способ борьбы с любыми воздушно-капельными инфекциями. Любое закрытое помещение, даже оборудованное ультрафиолетовыми облучателями или рециркуляторами не так безопасно, как открытое пространство. Более того, наружные контактные поверхности нашего павильона мы решили дополнительно оборудовать ультрафиолетовыми облучателями для большей уверенности.

На сегодняшний день любой пациент клиники имеет возможность тестирования на коронавирусную инфекцию . Мы уверены, что раннее выявление заболевания сделает безопасной Вашу жизнь и жизнь Ваших любимых!

В результате мы получаем сразу несколько выгодных условий:

Раннее выявление бессимптомного заражения и ограничение посещения клиники такими пациентами — предотвращение заражения других, здоровых пациентов;
Раннее выявление коронавирусной инфекции с последующим ранним обращением к врачу-специалисту — достоверное снижение риска развития тяжёлых осложнений, связанных с самой инфекцией у таких выявленных больных;
Предотвращение начала программ вспомогательных репродуктивных технологий (так или иначе заканчивающихся беременностями) у заразившихся пациентов, т.е. у пациентов с очень высоким риском развития осложнений, который, к тому же, сопровождается значительной потерей материальных и нематериальных средств. Наличие заболевания является противопоказанием для начала или продолжения программ ВРТ.

Не нашли интересующую вас услугу? Оставьте ваши контактные данные и мы свяжемся с вами и постараемся помочь

С целью определения диагностической ценности метода вегето – резонансного тестирования в амбулаторной практике у детей с патологией ЛОР органов проведен анализ результатов исследования 84 детей с ЛОР- патологией, в частности с острыми и хроническими синуситами, методом вегето – резонансного тестирования (ВРТ) в сравнении со стандартным объемом исследований в городской детской поликлинике. Результаты ВРТ показали, что острые синуситы в 10 случаях были вирусной этиологии: респираторно–синтициальный вирус – 4 случая, вирус герпеса – 3 случаях, аденовирус – 2, вируса ринопневмонии – 1 случай. Бактериальные причины острого синусита встречались чаще: Str. pyogenes в 6 случаях, Str. pneumonia и S. aureus – по 2 случая, S. coagulopositivus – в 1 случае, анаэробные возбудители – в 3 случаях. При хронической патологии на слизистой носа и в пазухах у детей часто тестируется полифлора, в сочетании с грибами. Микробная инфекция представлена: Str. haemolyticus 13 (28,9 %), Str. viridans 12 (26,7 %), S. aureus 8 (17,8 %), анаэробная инфекция 6 (13,3 %), Str. pneumonia 5 (11,1 %), Ps. aeurigenosa 1 (2,2 %). Возбудителями хронических грибковых синуситов были Сandida albicans 5 (50 %), Aspergilus niger 4 (40 %), Mucor mucedo 1 (10 %). Обследование показало высокую скорость получения результатов тестирования, хорошую переносимость метода пациентами, высокую информативность метода, что в некоторых случаях позволило избежать врачебной ошибки, как в диагностике, так и в лечении маленьких пациентов.

1. Готовский Ю.В. Резонансно – частотная диагностика и терапия грибков, вирусов, бактерий, простейших и гельминтов: Методические рекомендации (Дополнение) / Ю.В. Готовский, Л.Б. Косарева, Л.А. Фролова. – М.: ИМЕДИС, 2000. – 22 с.

2. Драчук А.И. Роль микробной флоры при ультразвуковой терапии воспалительных заболеваний уха / А.И. Драчук, К.И. Нестерова // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. – 1999. – № 1. – С. 39–40.

3. Надей Е.В. Использование ингаляционных провокационных тестов для определения риска развития бронхиальной астмы у больных с аллергическим ринитом / Е.В. Надей, В.И. Совалкин, К.И. Нестерова //Рос. ринология. – 2007. – № 2. – С. 20a-21.

4. Нестерова К.И. Анализ влияния метода лечения аденоидита на микробиоценоз носоглотки у детей / К.И. Нестерова, А.А. Нестерова // Вестник оториноларингологии. – 2015. – № 4. – С. 77–80.

5. Нестерова К.И. Анализ клинико-анатомических предпосылок формирования хронической инфекции верхних дыхательных путей на основе принципов современной многомерной статистики К.И. Нестерова // Российская оториноларингологии. – 2012. – № 5. – С. 95–101.

7. Нестерова К.И. Метод низкочастотной ультразвуковой интерферонопрофилактики ОРВИ у спортсменов / К.И. Нестерова, Т.А. Бакшеева, В.С. Венедиктов //Теория и практика физической культуры. – 2000. – № 1. – С. 47–48.

9. Роль изучения факторов местного иммунитета при патологии дыхательных путей/ В.И. Совалкин, Е.И. Алтынова, К.И. Нестерова и др. // Фунд. исследования. – 2011. – № 10-1. – С. 151–154.

10. Самохин А.В., Готовский Ю.В. Электропунктурная диагностика и терапия по методу Р. Фолля. 6-е изд. – М.: ИМЕДИС, 2012. – 480 с.

В детском возрасте в структуре заболеваний верхних дыхательных путей острые и хронические синуситы встречаются достаточно часто, от 18 – 30 % до 38 – 42 % по мнению разных авторов [4, 5, 8]. При этом предрасполагающими факторами формирования риносинуситов могут являться как эндогенные, так и экзогенные причины [1, 3, 5, 7, 9].

Основными методами диагностики синуситов в условиях городской поликлиники остаются рентгенография придаточных пазух носа и микробиологическое исследование отделяемого полости носа или пунктата из пазух. В общем анализе крови мы обращаем внимание на воспалительные изменения формулы, СОЭ, повышение лейкоцитов. Однако нередко и при острых синуситах, и при хронических рецидивирующих состояниях эти изменения в крови не наблюдаются.

Рентгенография придаточных пазух носа, особенно в лобно-подбородочной проекции, дает возможность оценить степень пневматизации пазух, сравнить больную и здоровую сторону в случае одностороннего поражения, увидеть уровень жидкости или дополнительные тени в области пазух, однако в детской практике мы имеем дело с недоразвитием пазух, снижением пневматизации за счет аденоидита, что подчас приводит к полипрогнозии. Кроме того этот метод не совсем безопасен для детей, особенно, если приходиться делать несколько снимков в год. Возможности неионизирующих методов обследования околоносовых пазух ограничены степенью проницаемости тканей лица для ультразвуковой волны. Компьютерная томография и магнитно–резонансная томография, конечно, более информативны, но в условиях городской поликлиники не проводятся [1, 5, 10].

Бактериологическое обследование позволяет проводить терапию синуситов с учетом этиологического фактора, эффективнее воздействовать на патогенную микрофлору, добиваться качественной санации ЛОР органов. Имеется множество работ, посвященных исследованию бактериального и вирусного фона при острых и хронических риносинуситах [2, 4, 6, 8]. К сожалению, данные микробиологического исследования можно получить только на 7 – 10 день, в лучшем случае на 3-4, поэтому они теряют свою актуальность, т.к. при острых синуситах назначается эмпирическая терапия.

Интересным диагностическим способом представляется метод вегето – резонансного тестирования (ВРТ) в сравнении со стандартным объемом исследований в городской детской поликлинике. Он имеет высокую скорость получения результатов тестирования, хорошую переносимость пациентами, высокую информативность, что в некоторых случаях позволяет избежать врачебной ошибки, как в диагностике, так и в лечении маленьких пациентов.

Обследование не инвазивно. Достаточно дотрагиваться щупом до тестируемых точек на пальцах пациента. Поэтому его можно проводить детям раннего и дошкольного возраста.

Полное обследование ЛОР-органов занимает от 10 до 20 минут рабочего времени. Проводится по карте, куда собраны частоты миндалин, носа и пазух, структур уха и гортани. Кроме того, метод фильтрации позволяет уточнить какой процесс в настоящий момент имеется у пациента – аллергический или воспалительный, острый или хронический, позволяет выяснить, что является основным этиологическим фактором – вирусы или микробы, грибы или простейшие и конкретизировать их [1, 10].

Цель исследования

Определение диагностической ценности метода вегето – резонансного тестирования в амбулаторной практике у детей с патологией ЛОР органов.

Материалы и методы исследования

Проведен анализ результатов исследования пациентов с ЛОР-патологией, в частности с острыми и хроническими синуситами, Для обследования методом ВРТ были отобраны 84 ребенка разных возрастных групп на основании добровольного согласия родителей по следующим критериям:

1. Частые (5 – 6 раз в год) или длительно текущие (месяц и более) респираторные заболевания в течение года;

2. Большое количество рентгенологических снимков в год у одного пациента. Например, мальчик 11 лет обследован педиатрами по поводу обострения хронического синусита в январе и мае 2015 г., в январе 2015 г. была сделана рентгенография легких по поводу длительного кашля, а в июне 2015 г. – рентгенография правой кисти в связи с травмой.

3. Дети, направленные к ЛОР-врачу от педиатра с кашлем без явных признаков синусита.

4. Дети в связи с часто рецидивирующими респираторными заболеваниями (в т.ч. бронхиты, пневмонии, синуситы, отиты), получившие в течение полгода от 2-х и более антибактериальных препаратов разных групп и имеющие жалобы.

Распределение по группам наблюдаемых представлена в табл. 1, один ребенок в зависимости от показаний к обследованию мог относиться к двум и более группам.

Распределение наблюдаемых детей по группам показаний для обследования методом ВРТ

Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания и гельминтозы. Экспертная оценка ВОЗ свидетельствует, что более 4,5 млрд человек в мире поражено возбудителями этой группы болезней [1]. Из них 2 млрд человек инфицированы Ascaris lumbricoides [2]. Ежегодно в мире аскаридозом заражаются около 650 млн человек, энтеробиозом — 460 млн [3]. По оценкам специалистов, ежегодно число заболевающих паразитарными болезнями в России превышает 20 млн человек и имеет тенденцию к увеличению [4]. По мнению ряда авторов, в последнее время под воздействием различных факторов происходит изменение картины паразитарных заболеваний, проявляющееся в неспецифичности проявлений глистно-протозойных инвазий у детей [5], в бессимптомном течении паразитарных заболеваний [6, 7, 8], в формировании у паразитов клеточных структур, способных изменять иммунный ответ хозяина на присутствие в организме паразита [9, 10, 11]. Особенностью большинства паразитарных болезней является хроническое течение, не сопровождающееся развитием острых симптомов.

Из числа протозойных инвазий наиболее массовой является лямблиоз. До сих пор проблемой является разработка эффективных лечебных мероприятий в отношении хронически рецидивирующего лямблиоза у детей. Устойчивость к противопаразитарным препаратам может быть обусловлена антигенными различиями видов лямблий с разной восприимчивостью к разным противопаразитарным препаратам [12, 13]. Наиболее массовыми гельминтозами в России являются нематодозы, возбудителями которых служат круглые гельминты: острицы, аскариды и др. [14]. Одной из актуальных задач в борьбе с паразитарными инвазиями на сегодняшний день является разработка эффективных, безопасных, недорогих методов лечения гельминтно-протозойной инвазии у детей. Лечение паразитарных инвазий эффективно при проведении комплексного подхода под контролем исследования кала, т. к. целью лечения является эрадикация паразита из кишечника [15, 16, 17]. Однако применение медикаментов широкого спектра действия не обеспечивает полного излечения при однократном курсе терапии и у ряда больных вызывает побочные эффекты аллергического, диспепсического и неврологического характера.

Учитывая сложности в диагностике паразитарных инвазий у детей, актуальной является проблема поиска новых, чувствительных, экономически эффективных и доступных методов диагностики. Полимеразная цепная реакция [ПЦР] [18, 19] нашла широкую область применения в паразитологии, ДНК-технологии имеют большое значение во многих областях паразитологии включая идентификацию и систематизацию паразитов, анализ генетической структуры, генной организации, изучение лекарственной устойчивости [20, 21, 22]). Метод ПЦР позволяет прямо обнаружить инфекционный агент или генетическую мутацию в любой биологической среде организма (слюна, мокрота, кровь, моча, кал).

Современные взгляды зарубежных и отечественных ученых на взаимоотношения паразит–хозяин с позиции колебательных и волновых процессов, присущих всем живым организмам, позволили разработать новый подход к диагностике различных заболеваний, в том числе и паразитарных. Одним из таких методов является вегетативный резонансный тест (ВРТ), позволяющий определить наличие паразитов в организме человека на разных стадиях развития: яйца, личинки, взрослых особей. Маркерами для диагностики являются резонансные электромагнитные частоты, характеризующие индивидуальный спектр электромагнитного излучения паразитов [23, 24]. Метод является гигиеническим, неинвазивным, безболезненным, что особенно важно для детей. ВРТ официально разрешен и рекомендован к медицинскому применению Министерством здравоохранения Российской Федерации (Методические рекомендации № 98/232, 99/96, 2000/74) [25].

Цель нашего исследования — совершенствование диагностики и лечения паразитозов у детей на современном этапе.

Материалы и методы исследования

В основу работы положены результаты обследования 540 детей в возрасте от 2 месяцев до 17 лет с различными гастродуоденальными заболеваниями: хроническим гастродуоденитом (53,5%), функциональным расстройством желудка (8,2%), дискинезиями желчевыводящих путей (30%). Среди сопутствующих заболеваний были диагностированы: аномалии желчного пузыря (4,8%), аллергические заболевания (10%), последствия перинатальной патологии ЦНС (7,7%), хронический иерсиниоз (1,8%), заболевания ЛОР-органов (1,8%).

Для постановки диагноза использовался тщательный сбор анамнеза, анализ жалоб, объективный осмотр, проведение необходимых лабораторных и инструментальных исследований (копроовоскопический метод диагностики, исследование кала с консервантом Барроуза, ПЦР-диагностика кала, вегетативно-резонансное тестирование).

Результаты исследования и их обсуждение

По возрасту дети были распределены на четыре группы: группа I — дети от 2 месяцев до 3 лет, группа II — от 3 до 7 лет, группа III — от 7 до 12 лет, группа IV — от 12 до 17 лет. Кроме того, в зависимости от наличия или отсутствия подтвержденной гельминтно-протозойной инвазии каждая группа была разделена на две подгруппы: А — без паразитарной инвазии, В — с подтвержденной паразитарной инвазией.

Среди обследованных детей преобладали жалобы на отрыжку, тошноту, рвоту, снижение аппетита, боли в животе в околопупочной области, неустойчивый стул (табл. 1).

Обследованные дети с подтвержденной паразитарной инвазией имели три вида моноинвазий (лямблиоз, аскаридоз, энтеробиоз) и четыре вида сочетанной глистно-протозойной инвазии (лямблиоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз, аскаридоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз). Характеристика жалоб и объективного осмотра детей в зависимости от вида паразитарной инвазии представлена в табл. 3. Как видно из таблицы, лишь головная боль и болезненность в околопупочной области при объективном осмотре достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами инвазий. Кроме того, нарушение сна достоверно (р < 0,05) чаще отмечалось у детей с моноинвазией аскаридами, а боли в околопупочной области достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами глистно-протозойной инвазии. Различия между группами паразитарных инвазий в преобладании тех или иных диспептических жалоб не достигали уровня значимости.

В нашем исследовании мы изучали диагностическую значимость различных методов диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей.

При диагностике лямблиоза при копроовоскопии 540 мазков цисты лямблий были обнаружены менее чем в 1% случаев. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей. Методом ПЦР кала лямблии были обнаружены у 28,83% обследованных детей. Методом ВРТ обследованы 136 детей, лямблии обнаружены у 31,62% детей (рис. 1).

Наиболее ценным диагностическим методом при исследовании на лямблиоз оказался метод исследования кала с консервантом Барроуза, данный метод был принят нами в качестве стандарта. Диагностические характеристики других методов диагностики определяли относительно стандарта с помощью четырехпольной таблицы. Для оценки эффективности диагностических тестов рассчитывали следующие показатели: чувствительность (Se), специфичность (Sp), точность (test eff.), прогностическая ценность отрицательного результата теста (–PV), прогностическая ценность положительного результата теста (+PV).

Как известно, от значений чувствительности и специфичности зависит прогностическая ценность (посттестовая вероятность) положительного и отрицательного результатов теста. Чем чувствительнее тест, тем выше прогностическая ценность его отрицательного результата (т. е. возрастает уверенность врача в том, что отрицательные результаты теста отвергают наличие заболевания). Чем специфичнее тест, тем выше прогностическая ценность его положительного результата (то есть врач может с большей уверенностью считать, что положительные результаты теста подтверждают предполагаемый диагноз).

Как видно из табл. 3, методы ПЦР и ВРТ обладают хорошими диагностическими показателями и высокими показателями точности теста (для ПЦР — 82,42%, для ВРТ — 69,92%). Копроскопический метод диагностики характеризовался чрезвычайно низкими диагностическими показателями (все показатели менее 1%), что ставит под сомнение целесообразность его использования для диагностики лямблиоза у детей.

При диагностике аскаридоза мы исследовали кал на яйца глист микроскопическим методом у 540 детей, аскариды обнаружены в 2,04% исследований. Методом ПЦР кала обследовано 434 ребенка, аскариды обнаружены у 1,15% детей, а методом ВРТ обследовано 135 детей, аскариды обнаружены у 7,14% детей (рис. 2).

В качестве стандарта в диагностике аскаридоза в нашем исследовании использовали ПЦР-диагностику кала.

Как известно, не существует абсолютно чувствительных и абсолютно специфичных тестов. Стопроцентные показатели получены, вероятно, из-за того, что в исследовании принимало участие относительно небольшое количество инфицированных аскаридами пациентов (табл. 4). Вероятно, с этим связаны и низкие показатели прогностической ценности положительного результата теста (12,5%). Тем не менее, полученные нами данные позволяют сделать вывод о высокой информативности ВРТ-диагностики аскаридоза у детей (чувствительность теста — 100%, специфичность — 93,96%). При оценке диагностических показателей копроскопического метода диагностики все показатели оказались менее 1%, что не позволяет рекомендовать копроскопический метод для диагностики аскаридоза у детей.

При диагностике энтеробиоза проводились однократные соскобы у 540 детей, острицы диагностированы у 0,2% детей. При исследовании кала на яйца глист у всех обследованных детей, острицы были обнаружены также у 0,2% детей. При проведении ПЦР-диагностики кала у 434 пациентов, острицы обнаружены у 9,68% детей, при вегетативно-резонансном тестировании (обследовано 135 детей) — у 12,59% (рис. 3).

В нашем исследовании стандартом в диагностике энтеробиоза являлась ПЦР-диагностика кала.

Как видно из табл. 5, копроскопический метод диагностики энтеробиоза и однократные соскобы на энтеробиоз не имеют диагностической значимости в диагностике энтеробиоза у детей. Вместе с тем метод ВРТ обладает высокой специфичностью (93,2%) и точностью теста (88,88%) в диагностике энтеробиоза.

При лечении лямблиоза процент успешной эрадикации паразита при использовании метронидазола (20 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) составил 58%, макмирора (15 мг/кг/сут в 2 приема 10 дней) — 53%, албендазола (200 мг/сут в 2 приема 7 дней) — 50%, фуразолидона (10 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) — 20%.

При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей были назначены биорезонансные препараты (Танаксол с Пара-уолнат-плас или инверсионный нозод лямблий — предварительно протестированные гомеопатические препараты) с положительным эффектом. Эрадикация простейших при использовании Танаксола с Пара-уолнат-плас оказалась успешной в 47,5% случаев. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза инверсионным нозодом лямблий эффективность терапии была еще выше и составила 71,95% (различия между эффективностью данных методов лечения были достоверными (p < 0,01%)).

При лечении аскаридоза — у 4 детей применялся Вермокс (мебендазол) (для детей от 2 до 10 лет 0,05 г/сут в 3 приема, детям старше 10 лет — 0,1 г в сутки в 3 приема во время еды. Курс лечения 3 дня), у 1 ребенка — Пирантел (12,5 мг/кг однократно), при лечении энтеробиоза 22 ребенка получали Вермокс, 20 детей — Пирантел. Данные препараты оказались эффективными у всех детей с нематодозами. Пациенты с сочетанной паразитарной инвазией получали терапию препаратом Немозол (альбендазол) в случае сочетанной гельминтно-протозойной инвазии (лямблиоз/аскаридоз, лямблиоз/энтеробиоз) в дозе 15 мг/кг/сут в 1 прием 10 дней; при сочетанной инвазии аскаридоз/энтеробиоз Немозол назначался в дозе 400 мг внутрь однократно.

Выводы

Для детей с паразитарной инвазией наиболее характерными клиническими проявлениями являются жалобы на тошноту и боли в околопупочной области. Головная боль и болезненность в околопупочной области достоверно более характерны для детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз. Нарушение сна достоверно чаще отмечается у детей с моноинвазией аскаридозом, а боли в околопупочной области — у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз.

Число эозинофилов в периферической крови у обследованных детей во всех возрастных группах было в пределах нормы и существенно не отличалось у детей с подтвержденной гельминтно-протозойной инвазией и у детей без паразитарной инвазии.

Метод копроовоскопии без использования консерванта для диагностики лямблиоза малоинформативен, что не позволяет использовать его в широкой практике. Наиболее информативными в диагностике лямблиоза оказались метод исследования кала с консервантом Барроуза и метод ВРТ. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей, методом ВРТ лямблии обнаружены у 31,62% детей.

ВРТ является неинвазивным, высокоинформативным, удобным и недорогим методом диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей. В диагностике энтеробиоза и аскаридоза метод ВРТ имел высокую диагностическую значимость наряду с методом ПЦР.

Стандартное медикаментозное лечение лямблиоза было эффективным лишь у 20–58% детей. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей максимальной эффективностью обладал инверсионный нозод лямблий (71,95%).

Литература

Savioli L., Gabrielli A. F., Ramsan M. et al. Soil-transmitted helminths and haemoglobin status among Afghan children in World Food Programme assisted schools // J. Helminthol. 2005. Vol. 79 (4). P. 381–384.

Chan M. S. The global burden of intestinal nematode infections — fifty years on // Parasitol. Today 1997. Vol. 13 (11). P. 438–443.

Онищенко Г. Г. О мерах по усилению профилактики паразитарных болезней в России // Медицинская паразитология. 2003. № 3. С. 3–7.

Озерецовская Н. Н., Зальнова Н. С., Тумольская Н. И. Клиника и лечение гельминтозов. М.: Медицина.1985. 183 с.

Horowicz M., Korman S., Shapiro M. et al. Asymptomatic Giardiasis in children // Pediatr. Inf. Dis. 1989. Vol. 87. P. 733–779.

Morrow A. L., Reves R. R., West M. S. et al. Protection against infection with Giardia lamblia by breast-feeding in a cohort of Mexican infants // J. Pediatr. 1992. Vol. 121. P. 363–370.

Pickering L. K., Engelkirk P. G. Giardia lamblia // Pediatr. Clin. Nort. Am. 1988. Vol. 35. P. 565–577.

Kulakova L., Singer S. M., Conrad J., Nach T. E. Epigenetic mechanisms are involved in the control of Giardia lamblia antigenic variation // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 61 (6). 1533–1542.

Nash T. E. Antigenic variation in Giardia lamblia and the host’s immune response // Philos. Trans. R. Soc. London Ser. B. 1997. Vol. 352. P. 1369–1375.

Sun C. H., McCaffery J. M., Reiner D. S., Gillin F. D. Mining the Giardia lamblia genome for new cyst wall proteins // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278 (24). P. 21701–21708.

Carnaby S., Ketelaris P. H., Neem A., Farthing M. J. G. Genotypic heterogeneity within Giardia lamblia isolates demonstrated by M13 DNA fingerprinting // Infect. Immun. 1994. Vol. 62. P. 1875–1880.

Majewska A. C., Kasprzak W., De Jonckheere J. F., Kaczmarek E. Heterogeneity in the sensitivity of stocks and clones of Giardia to metronidazole and ornidazole // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1991. Vol. 85. P. 67–69.

Тимченко В. Н., Леванович В. В., Абдукаева Н. С., Васильев В. В., Михайлов И. Б. Паразитарные инвазии в практике детского врача. СПб. ЭЛБИ 2005. С. 60–68.

Озерецовская Н. Н. Современные проблемы терапии гельминтозов // Мед. паразитология. 1975. 33. С. 271–276.

Lohiya G. S., Tan-Figueroa L. et al. Epidemiology and control of enterobiasis in a developmental center // West. J. Med. 2000. Vol. 172 (5). P. 305–308.

Saiki R. K., Scharf S., Faloona F., Mullis K. B. et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia // Science. 1985. Vol. 230 (4732). P. 1350–1354.

Mullis K., Faloona F., Scharf S. et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction // Cold. Spring. Harb. Symp. Quant. Biol. 1986. Vol. 51. P. 263–273.

Zhu X., Chilton N. B., Jacobs D. E. et al. Characterisation of Ascaris from human and pig hosts by nuclear ribosomal DNA sequences // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (3). P. 469–478.

Gasser R. B., Rossi L., Zhu X. Identification of Nematodirus species (Nematoda: Molineidae) from wild ruminants in Italy using ribosomal DNA markers // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (11). P. 1809–1817.

Zhang L., Gasser R. B., Zhu X., McManus D. P. Screening for different genotypes of Echinococcus granulosus within China and Argentina by single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1999. Vol. 93 (3). P. 329–334.

Электропунктурный вегетативный резонансный тест. Под ред. А. М. Василенко, Ю. В. Готовскиго, Е. Е. Мейзерова, Н. А. Королевой, В. С. Каторгина. Метод. реком. № 99/96. М.: МЗ РФ, ИПЦ ТМГФ, 2000. 27 с.

В. А. Александрова, доктор медицинских наук, профессор
В. Е. Одинцева

СПб МАПО, Санкт-Петербург

К сожалению, бесплодие с каждым годом становится все более распространенным диагнозом. Образ жизни, экология, обилие стрессов – сложно сказать, что из этого оказывает большее влияние, но факт остается фактом. Каждая пятая семейная пара в нашей стране испытывает проблемы с зачатием. Радует одно: уровень развития современной медицины успешно помогает решать подобные проблемы.

Что такое бесплодие

Диагноз бесплодие ставится, когда у пары фертильного возраста на протяжении года не наступает беременность. Но здесь важно подходить к вопросу индивидуально. Например, до 35 лет врачи дают женщине год на то, чтобы забеременеть естественным путем, а вот после 35 лет – причину неудач стоит искать уже после 6 месяцев. Возраст здесь – определяющий фактор, от которого стоит отталкиваться.

Если точные причины бесплодия установить не удалось (такое тоже бывает) или назначенное лечение не принесло результатов, паре предлагают прибегнуть к помощи вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ)

Что такое вспомогательные репродуктивные технологии

Вспомогательные репродуктивные технологии – это общее название медицинских технологий, процедур и методов лечения, которые применяются при бесплодии и помогают наступлению беременности.

Главные направления ВРТ:

Какие методы ВРТ мы используем в EVACLINIC IVF

Внутриматочная инсеминация (ВМИ). Это один из самых простых методов лечения бесплодия, который предполагает введение в матку специально приготовленной суспензии сперматозоидов с целью увеличить вероятность успешного оплодотворения.

ИКСИ. В ходе процедуры репродуктолог отбирает самый активный сперматозоид и вводит его внутрь яйцеклетки.

ИМСИ. Более современный метод, в ходе которого эмбриолог имеет возможность рассмотреть сперматозоиды под огромным увеличением и выбрать клетку с самым лучшим строением.

ЭКО. Это процедура, при которой слияние яйцеклетки и сперматозоида происходит вне организма мамы – в специальной среде. После оплодотворения эмбрионы определенное время культивируются (от 3 до 7 дней), а уже потом переносятся в матку женщины.

Суррогатное материнство. В ходе такой программы эмбрион пересаживается в матку суррогатной, а не биологической мамы.

Отложенное материнство. Криоконсервация яйцеклеток, которая дает возможность использовать их в будущем для проведения протокола ЭКО.

Отложенное отцовство. Криоконсервация сперматозоидов, которая дает возможность использовать их в будущем для проведения протокола ЭКО.

Огромный опыт и применение только самых современных технологий позволяют нам по праву считать себя одним из лучших медицинских центров вспомогательных репродуктивных технологий.

Главные риски ВРТ

Любая процедура ВРТ по-своему сложна, а значит, влечет за собой определенные риски и осложнения. Наиболее распространенные включают в себя:

синдром гиперстимуляции яичников (слишком активный ответ яичников на стимуляцию)
аллергические реакции на препараты
кровотечение после пункции
внематочная беременность
многоплодная беременность

Важно: современные методы и препараты позволяют свести к минимуму риски перечисленных выше осложнений и предотвращать их еще на самой ранней стадии.

Показания и противопоказания к применению ВРТ

Конкретные показания будут зависеть от выбранной процедуры, но в целом к помощи ВРТ стоит прибегать в следующих ситуациях:

трубное бесплодие (маточные трубы удалены или непроходимы)
мужской фактор бесплодия
эндометриоз
эндокринные формы бесплодия
возраст супругов старше 40 лет
бесплодие невыясненного генеза
генетические патологии

Противопоказания к проведению ВРТ лечения:

обострение хронических заболеваний
инфекции в остром периоде
онкологические болезни
эпилепсия
психические заболевания
дегенеративные изменения нервной системы
возраст старше 50 лет
некоторые врожденные пороки внутренних органов

Эффективность процедур ВРТ

Как правило, эффективность каждого метода вспомогательных репродуктивных технологий оценивается отдельно.

По статистике, эффективность одного протокола ЭКО оценивается на уровне 40-45%. А вот, например, применение ИКСИ в протоколе ЭКО помогает повысить шансы на успех сразу до 75-80%. Но эти цифры касаются пар до 35 лет. После этого возраста процент успеха довольно стремительно снижается, достигая к 40 годам всего 20-25%.

Важно понимать, что шансы на успешное зачатие зависят от очень большого количества факторов, начиная от причины бесплодия и заканчивая образом жизни. Поэтому каждая ситуация требует индивидуального подхода.

Если Ваше планирование затянулось на год или больше, обязательно обратитесь в EVACLINIC IVF . Наши специалисты назначат необходимые обследования и помогут установить причину ваших неудач. Возможно – это банальная инфекция и тогда понадобится всего лишь курс лечения антибактериальными препаратами, а возможно – причина более сложная и потребует больше времени и сил. Так или иначе, коллектив наших специалистов готов сделать все возможное – и даже чуточку больше – для того, чтобы в скором времени в Вашем доме появился долгожданный малыш.

В гинекологии проблема бесплодия стоит достаточно остро. Именно применение вспомогательных репродуктивных технологий дает возможность парам стать родителями, несмотря на диагноз.

Виды ВРТ
Вспомогательные репродуктивные технологии в лечении бесплодия: этапы ЭКО
Показания к искусственному оплодотворению
Подготовка

Эффективность вспомогательных методов репродукции
Риски

Цена	от 15 400 руб.
За 19 лет работы	15 804 беременностей
ЭКО по ОМС	по всей России
Первичный прием репродуктолога	0 руб.

Что такое ВРТ

Вспомогательные репродуктивные технологии — это методы борьбы с таким патологическим состоянием как у женщины, так и у мужчины, как бесплодие. При их применении некоторые моменты оплодотворения и раннего развития эмбриона происходят вне матки матери. Или с помощью дополнительных методик, отличающихся от физиологического способа зачатия.

Такие репродуктивные технологии дали возможность родиться миллионам детей. Их появление на свет было бы просто невозможно без применения работы репродуктологов. Эти инновационные методики позволяют улучшить и социальную сторону бесплодия в паре. Так как при наличии соответствующих проблем часто семьи рушатся. Но с помощью грамотных репродуктологов, генетиков, акушеров-гинекологов семьям предоставляется реальная возможность стать счастливыми родителями вопреки поставленным диагнозам.

Виды ВРТ

В современной репродуктологии применяются различные методы методы ВРТ при бесплодии.

Среди них можно выделить:

Искусственная инсеминация сперматозоидов — это введение в полости матки мужских половых клеток после чего сперматозоиды, как и при обычном половом акте проникают в полость маточных труб. После этого происходит оплодотворение ими яйцеклетки.
ИКСИ — метод ВРТ, введение сперматозоида в ооцит (яйцеклетку). Этот метод называется инъекцией сперматозоида в цитоплазму женской половой клетки.

Схема искусственной инсеминация и ИКСИ

Такие репродуктивные методы также включают в себя способы получения мужских половых клеток при их отсутствии в эякуляте. Например, методы TESA, PESA, MESA.

Лечение бесплодия методом ВРТ может осуществляться путем применения донорских программ. В протоколах ЭКО, например, могут быть использованы как донорские ооциты, так и донорские сперматозоиды.
Методики ВРТ также включают в себя применение суррогатного материнства. Это технология, которая стала возможной путем проведения ЭКО в эмбриологической лаборатории с последующим переносом эмбрионов не в полость матки биологической матери, а в матку суррогатной мамы.
Вспомогательные методы репродукции применяют также способы криоконсервации. Криохранения может осуществляться как для мужских, так и для женских половых клеток.
Вспомогательные репродуктивные технологии включают в себя методику экстракорпорального оплодотворения (ЭКО). Это методика, которая предполагает под собой забор половых клеток у половых партнеров (или использование донорских клеток) с последующим их соединением в условиях эмбриологической лаборатории. После культивирования эмбрионов происходит их перенос в полость матки женщины. Дальнейшее течение беременности ничем не отличается от самопроизвольно наступившей.

Вспомогательные репродуктивные технологии в лечении бесплодия: этапы ЭКО

Зачастую лечение методом ВРТ осуществляется путем применения экстракорпорального оплодотворения.

ЭКО — сложный процесс, включающий несколько этапов:

Гормональная стимуляция. Это этап включает назначение женщине гормональных препаратов, целью применения которых является созревание нескольких ооцитов.
Пункция фолликулов с получением качественных яйцеклеток.
Забор спермы у мужчин.
Оплодотворение яйцеклеток сперматозоидами в эмбриологической лаборатории.
Одновременная подготовка женского организма к переносу эмбриона.
Непосредственно перенос эмбриона.
Определение беременности.

Показания к искусственному оплодотворению

Методы вспомогательных репродуктивных технологий применяются при наличии строгих показаний.

Полная непроходимость маточных труб, а также их отсутствие у женщины вследствие проведения оперативных вмешательств.
Иммунологическая причина бесплодия.
Эндометриоз, лечение которого не привело к наступлению беременности.
Синдром поликистозных яичников при условии отсутствия эффекта от консервативной и хирургической терапии.
Идиопатическое бесплодие, причина которого неизвестна.
Многие формы бесплодия со стороны мужчины.

Подготовка

Подготовка к процедуре экстракорпорального оплодотворения обязательна. Обязательно проводится обследование пары гинекологом, урологом, терапевтом, а также смежными специалистами. Проведение клинико-лабораторных, инструментальных исследований. Модификация образа жизни, соблюдение режима труда и отдыха.

Вопреки общему мнению, что подготовка нужна только лишь женщине, подготовка мужского организма имеет не меньшее значение.

ВРТ (ЭКО): подготовка женщины

Во время приема врача-репродуктолога проходит изучение репродуктивной системы пациентки. Это осуществляется путем гинекологического осмотра, назначение диагностических манипуляций в виде взятия материала на проведения микроскопирования урогенитальных мазков, выявление инфекций, передающихся половым путем, проведения цитологического исследования. Происходит изучение гормонального фона женщины. Если того требует ситуация, то могут проводиться и хирургические методики (диагностическое выскабливание, гистероскопия, лапароскопия).

Обязательным является консультация терапевта и смежных специалистов при необходимости.

Подготовка к ВРТ мужчин

Подготовкой мужского организма к применению методик ВРТ проводится андрологом. Именно этот специалист назначает и оценивает результаты спермограммы, УЗИ, анализов на наличие половых инфекций. Важным моментом является отказ мужчины от вредных привычек.

Читайте также: