Напряженность иммунитета на ящур
Обновлено: 12.05.2024
Введение. Ящур является одной из экономически значимых трансграничных инфекций животных. Трансграничные болезни животных - это те болезни, которые представляют существенную важность для экономики, торговли и/или безопасности продуктов питания для значительного ряда стран; которые могут легко распространяться на другие страны и достигать размеров эпизоотий; при которых контроль (борьба), включая профилактику, требует сотрудничества нескольких стран [20].
При контроле эффективности вакцины и программы вакцинации в популяции иммунизированных животных проводится оценка уровня популяционного иммунитета - определение доли животных со специфическим уровнем антител.
Определение популяционного иммунитета, нацеленное на обеспечение защиты посредством вакцинации, является основой поствакцинального мониторинга, так как оно является ключевым показателем того, насколько хорошо проведена вакцинация и возможна ли защита животных от инфицирования.
Грузинские ветеринарные специалисты рекомендовали вакцинировать против ящура телят с 2,5-месячного возраста, так как они были потенциальным объектом вспышек ящура из-за недостаточной защищенности материнскими антителами, что неоднократно было подтверждено при ящуре в Грузии [8]. При выяснении причин возникновения заболевания было установлено, что напряженность колострального иммунитета у телят, полученных от вакцинированных коров-матерей, зависела в основном от сроков иммунизации коров перед отелом. У телят, полученных от коров, вакцинированных на 2-4 месяце стельности, был очень низкий уровень превалентности колостральных антител. Экспериментально доказано, что напряженность колострального иммунитета у телят, полученных от вакцинированных коров-матерей, зависела в основном от сроков иммунизации коров перед отелом [4].
Все вышеприведенные данные свидетельствуют о необходимости пересмотра схемы противоящурной вакцинации новорожденных телят.
Этот вывод подтвержден результатами исследований индийских, иранских и аргентинских исследователей [14, 16, 18, 19]. Ряд исследователей для проведения мониторинга использовали сыворотки крови от взрослого крупного рогатого скота [5, 11, 12, 13]. Данные этих опытов не всегда совпадали с результатами эпизоотологического обследования очагов ящура.
Для выявления причин заболевания молодняка ящуром был приведен анализ данных исследований сывороток крови молодняка крупного рогатого скота (возрастом 5-18 месяцев) из буферной зоны на наличие поствакцинальных противоящурных антител.
Результаты исследований и их обсуждение. При обследовании животноводческих хозяйств из противоящурной зоны иммунизации было предположено, что одной из причин неоднородного поствакцинального иммунного ответа была вакцинация телят разного возраста.
Это связано с тем, что в субъекты поступает противоящурная вакцина, расфасованная по 200 см3 (100 прививных доз для крупного рогатого скота) и ветеринарные специалисты в целях недопущения перерасхода препарата выбирают условный средний возраст для вакцинации молодняка. В этом случае экономические и административные аспекты проблемы вакцинопрофилактики преобладают над иммунобиологическими показателями, что при заносе вируса может привести к заболеванию животных ящуром. Все это приводит к тому, что в стадах остается большое количество неиммунных животных. В таблице 1 показаны данные исследований 1 711 сывороток крови, отобранной от вакцинированного против ящура молодняка крупного рогатого скота в 137 хозяйствах, расположенных в зоне профилактической вакцинации против ящура. Приведенные в таблице результаты исследований сывороток крови молодняка свидетельствует о низкой превалентности поствакцинальных противоящурных антител у молодняка крупного рогатого скота. В сыворотках крови, отобранной через 14-89 дней после вакцинации крупного рогатого скота, противоящурные антитела были обнаружены только у 56-64% проб.
Таблица 1. Данные исследований сывороток крови молодняка (5-17 месяцев) крупного рогатого скота на наличие противоящурных поствакцинальных антител
Основным критерием оценки эффективности применения средств специфической профилактики инфекционных болезней (вакцин) является напряженность иммунитета. Высокие показатели напряженности иммунитета по стаду гарантируют отсутствие заболеваемости и падежа. Довольно часто возникают ситуации, при которых приходится вводить дополнительные вакцинации в связи с низкими титрами антител или их полным отсутствием у отдельных животных, из-за сбоя в работе иммунной системы.
Важным условием профилактических и оздоровительных мероприятий остается исследование напряженности иммунитета к ОРВИ крупного рогатого скота у новорожденных телят после приема молозива (клостральный иммунитет), каждые 30 дней у телят до достижения возраста 6 месяцев (при оздоровительных мероприятиях), коров и нетелей исследовать на напряженность иммунитета 2 раза в год, все возрастные группы при переходе на другую вакцину или на другую схему вакцинации.
На напряженность иммунитета необходимо доставлять сыворотку крови от крупного рогатого скота в количестве по 15-20 проб, в объеме 4-5 см³, без признаков гемолиза.
Для проверки напряженности иммунитета и получения наиболее достоверных титров кровь берут не ранее, чем через 2- 3 недели после последней вакцинации (зависит от сроков формирования иммунитета против конкретной вакцины- эти данные есть в инструкции по применению). Но наиболее оптимальным сроком взятия крови у животных считают 2-3 месяца после последней вакцинации животных против ОРВИ крупного рогатого скота.
Перечень заболеваний, на которые проверяют напряженность иммунитета, зависит от состава вакцины.
Контроль напряженности иммунитета в стаде дает возможность оценивать эффективность проводимой вакцинации и своевременной корректировки мер, направленных на оздоровление хозяйств от острых респираторных заболеваний. Также необходимым условием эффективности профилактических мероприятий является соблюдение ветеринарно-санитарных мероприятий.
ГОСТ 25384-82
(СТ СЭВ 2597-80)
ГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ СОЮЗА ССР
Методы лабораторной диагностики ящура
Domestic animals. Methods of laboratory diagnostics of foot-and-mouth disease
Срок действия с 01.01.83
до 01.01.88*
_______________________________
* Ограничение срока действия снято
по протоколу Межгосударственного Совета
по стандартизации, метрологии и сертификации
(ИУС N 2, 1993 год). - Примечание изготовителя базы данных.
РАЗРАБОТАН Министерством сельского хозяйства СССР
ВНЕСЕН Министерством сельского хозяйства СССР
Член Коллегии А.Д.Третьяков
УТВЕРЖДЕН И ВВЕДЕН В ДЕЙСТВИЕ Постановлением Государственного комитета СССР по стандартам от 11 августа 1982 г. N 3155
Настоящий стандарт распространяется на крупный и мелкий рогатый скот, свиней, верблюдов, а также на все виды диких парнокопытных и мозоленогих животных, восприимчивых к ящуру, и устанавливает методы лабораторной диагностики ящура.
Стандарт предназначается для научно-исследовательских учреждений, республиканских и областных (краевых) ветеринарных лабораторий.
Стандарт полностью соответствует СТ СЭВ 2597-80.
1. МЕТОДЫ ОТБОРА ПРОБ
1.1. Для проведения диагностических исследований на ящур отбирают стенки и содержимое афт (лимфа) на слизистой оболочке языка (у крупного рогатого скота), на пятачке (у свиньи), на коже венчика и межпальцевой щели (у крупного и мелкого рогатого скота, свиней, верблюдов и др.). При отсутствии афт отбирают пробы крови в момент температурной реакции у животных, а из трупов молодняка всех видов животных - лимфатические узлы головы и заглоточного кольца, поджелудочную железу и мышцу сердца.
Для проведения ретроспективных диагностических исследований на ящур отбирают пищеводно-глоточную слизь. Отбор пищеводно-глоточной слизи производят в любое время после предполагаемого заболевания животных.
1.2. Для проведения диагностики серологическим методом отбирают не менее 5 г стенок или содержимого афт. Масса проб остальных материалов, предназначенных для выделения вируса ящура и его последующей идентификации, должна быть не менее 10 г.
При невозможности получения указанных количеств проб допускается отбирать максимально возможное количество патологического материала для проведения последующей расплодки вируса в культурах клеток.
1.3. Пробы патологического материала без признаков разложения помещают во флаконы с завинчивающимися или притертыми пробками и замораживают, а при отсутствии условий замораживания - заливают консервирующей жидкостью. Для консервирования стенок и содержимого афт используют консервирующую жидкость, состоящую из равных объемов нейтрального глицерина и забуференного 0,15 М раствора хлористого натрия или среды для культивирования клеток (без сыворотки). Пробы остального патологического материала консервируют растворами антибиотиков с широким спектром действия или глицерин-фосфатным буфером.
1.4. Флаконы с пробами снабжают этикеткой с указанием вида животных, наименования патологического материала и его количества, консерванта, времени отбора и адреса отправителя. Флаконы с пробами помещают в небьющийся контейнер со льдом или хладоносителем и доставляют на исследование в возможно короткий срок, но не позднее 48 ч с момента отбора. Если пробы могут быть доставлены в течение 6-12 ч с момента отбора, замораживание и консервация проб не обязательны.
1.5. Поступившие на исследование стенки афт освобождают от консервирующей жидкости отмыванием в 2-3 сменах стерильного 0,15 М раствора хлористого натрия или среды для культивирования клеток, взвешивают, измельчают сначала ножницами, а затем в ступке с песком или с помощью гомогенизатора и смешивают в соотношении 1:1 или 1:2 с 0,15 М раствором хлористого натрия. Полученные 50 или 33% суспензии выдерживают в течение 20 мин при температуре 4 °С, а затем очищают 20% (по объему) хлороформа или флюорокарбона в течение 5-7 мин и осветляют центрифугированием с частотой вращения 3000 об/мин в течение 15 мин.
1.6. Содержимое афт (лимфа) разбавляют равным количеством 0,15 М раствора хлористого натрия и подвергают очистке и осветлению в соответствии с п.1.5.
1.7. Пробы лимфоузлов, мышцы сердца, поджелудочной железы и свернувшейся крови сначала обрабатывают в соответствии с п.1.5, а затем разбавляют средой для культивирования клеток.
Полученные суспензии при невозможности немедленно использовать для постановки биопробы замораживают и хранят при температуре минус 20 °С.
1.8. Суспензии, полученные в соответствии с пп.1.5 и 1.6, делят на три неравные части. Меньшую из них (около 1 см), предназначенную для вирусологических исследований (постановки биопробы), консервируют антибиотиками и хранят при температуре минус 20 °С. Другую часть (2-3 см), предназначенную для исследования в РСК, прогревают при температуре 56 °С в течение 40 мин, а оставшуюся (1,5-2 см) - хранят без прогревания. Перед постановкой РСК обе эти пробы центрифугируют в течение 20 мин с частотой вращения 3500-4000 об/мин.
2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1. Серологический метод
Сущность метода заключается в обнаружении специфического антигена того или иного типа и варианта вируса ящура непосредственно в материале, полученном от животных с клиническими признаками заболевания, с помощью реакции связывания комплемента (РСК).
2.1.1. Аппаратура, материалы и реактивы
2.1.1.1. Для проведения исследования применяют:
центрифугу настольную с угловым ротором и частотой вращения до 5000 об/мин;
холодильник с температурой минус 20 °С;
холодильник с температурой от 0 до 8 °С;
баню водяную или термостат;
шкаф сушильный с регулируемой температурой в диапазоне от 100 до 200 °С;
электрофотоколориметр или спектрофотометр;
пробирки стеклянные по ГОСТ 10515-75;
пластинки (панели) для микросерологических реакций типа Такачи;
наборы разбавителей и капельниц для микросерологических реакций типа Такачи;
пипетки вместимостью до 10 см с ценой деления 0,01 и 0,1 см по ГОСТ 20292-74*;
* На территории Российской Федерации действуют ГОСТ 29169-91, ГОСТ 29227-91-ГОСТ 29229-91, ГОСТ 29251-91-ГОСТ 29253-91, здесь и далее по тексту. - Примечание изготовителя базы данных.
колбы мерные вместимостью 50, 100 и 200 см по ГОСТ 1770-74;
комплемент морской свинки с титром не более 2,8% по ГОСТ 16446-78;
гемолизин кроличий к эритроцитам барана с титром 1:8000 по ГОСТ 16446-78;
эритроциты барана в виде дефибринированной крови, смешанной с равным объемом консерванта;
сыворотки морских свинок семи типов и актуальных для стран-членов СЭВ вариантов вируса ящура с титром в РСК не ниже 1:20;
антигены ящурные эталонные семи типов и актуальных для стран-членов СЭВ вариантов вируса с титром в РСК не ниже 1:4;
сыворотки и антигены для лабораторной диагностики везикулярных заболеваний свиней;
кислоту борную дважды перекристаллизованную;
* На территории Российской Федерации действует ГОСТ 975-88. - Примечание изготовителя базы данных.
натрий хлористый по ГОСТ 4233-77;
магний хлористый по ГОСТ 4209-77, х.ч.;
кальций хлористый по ГОСТ 4460-77, х.ч.;
среду питательную для культивирования клеток с 0,5% гидролизата лактальбумина (рН 7,4-7,6);
хлороформ по ГОСТ 20015-74* или флюорокарбон-113;
* На территории Российской Федерации действует ГОСТ 20015-88. - Примечание изготовителя базы данных.
консервант для эритроцитов; приготовленный следующим образом: последовательно растворяют в 100 см дистиллированной воды 6 г глюкозы, 4,5 г борной кислоты, дважды перекристаллизованной, и 0,85 г хлористого натрия. Полученный раствор стерилизуют кипячением в течение 3 дней по 30 мин;
раствор буферный веронал-мединаловый концентрированный, приготовленный следующим образом: растворяют в 1000 см кипящей дистиллированной воды 83 г хлористого натрия, 18,4 г веронала, 1,15 г хлористого магния и 0,22 г хлористого кальция. Раствор охлаждают, затем растворяют 0,22 г мединала, стерилизуют автоклавированием и хранят при температуре 4 °С. Рабочий раствор готовят непосредственно перед постановкой РСК разбавлением концентрированного раствора четырьмя объемами дистиллированной воды.
2.1.2. Подготовка к исследованию
2.1.2.1. Суспензии стенок и содержимого афт, полученные в соответствии с пп.1.5, 1.6 и 1.8, разводят с 1:2 до 1:32 0,15 М раствором хлористого натрия, вероналовым буфером или средой для культивирования клеток и разливают в серологические пробирки по 0,1 см или в лунки панелей для микросерологических реакций по 0,025 см. Число пробирок (лунок), заполняемых каждым разведением исследуемой суспензии, должно быть равно числу штаммоспецифических сывороток и контролей на антикомплементарность и гемолитические свойства.
2.1.2.2. Для приготовления гемолитической системы эритроциты барана трехкратно отмывают от консерванта 0,15 М раствором хлористого натрия, каждый раз осаждая их центрифугированием с частотой вращения 600 об/мин в течение 5-7 мин и готовят рабочую суспензию смешиванием 2 см осадка с 98 см разбавителя. К полученной суспензии эритроцитов при постоянном перемешивании приливают постепенно равный объем гемолизина, разведенного 0,15 М раствором хлористого натрия с таким расчетом, чтобы его конечное разведение было в 4 раза концентрированнее предельного гемолитического титра, указанного на этикетке. Затем суспензию выдерживают в течение 15-20 мин в водяной бане при температуре 37 °С или при комнатной температуре.
При постановке РСК на панелях для микрореакций концентрацию эритроцитов в гемсистеме увеличивают в 2 раза.
2.1.2.3. Для приготовления рабочего разведения комплемента содержимое нескольких ампул с сухим препаратом растворяют в первоначальном объеме дистиллированной воды, определяют предельный титр, обусловливающий гемолиз 50% эритроцитов гемсистемы, приготовленной согласно п.2.1.2.2, и разводят 0,15 М раствором хлористого натрия или вероналовым буфером из расчета 5 CH в 0,1 см (если РСК ставят в пробирках) или в 0,025 см (при постановке РСК на панелях для микрореакций).
2.1.2.4. Рабочие разведения типоспецифических ящурных сывороток готовят на 0,15 М растворе хлористого натрия или вероналовом буфере из расчета получения раствора в 2 раза более концентрированного, чем их предельный титр, т.е. они должны содержать 2 сывороточных единицы (СЕ). Вариантноспецифические сыворотки разводят до предельного титра. Вместо типоспецифических сывороток могут быть использованы вариантноспецифические в предельном, двух- и четырехкратном титрах (1, 2 и 4 СЕ).
2.1.2.5. Рабочие разведения эталонных (контрольных) яшурных антигенов готовят на 0,15 М растворе хлористого натрия или вероналовом буфере. Они должны быть в 2 раза концентрированнее, чем их предельный титр, т.е. должны содержать 2 антигенных единицы (АЕ).
2.1.2.6. Рабочие разведения сывороток и антигенов для лабораторной диагностики везикулярных заболеваний сельскохозяйственных животных готовят по пп.2.1.2.4 и 2.1.2.5.
2.1.3. Проведение исследования
2.1.3.1. В пробирки (лунки), заполненные в соответствии с п.2.1.2.1, вносят равные объемы штаммоспецифических сывороток, взятых в рабочем титре, и рабочего разведения комплемента, содержащие 5 CH. В контролях исследуемого патологического материала на антикомплементарность заменяют сыворотки равным объемом разбавителя, а в контроле на гемолитические свойства - разбавителем заменяют и комплемент. Все полученные смеси тщательно встряхивают и помещают в водяную баню пли термостат при 37 °С на 30 мин, после чего к ним добавляют суспензию эритроцитов, сенсибилизированных гемолизином, в объеме 0,2 см (пробирки) или 0,05 см (лунки), энергично встряхивают и выдерживают при 37 °С в течение 20 мин.
Пробирки или панели извлекают из термостата или водяной бани и осаждают эритроциты центрифугированием в течение 5 мин с частотой вращения 600 об/мин или отстаиванием в течение 2-3 ч при комнатной температуре.
При исследовании недоброкачественных афтозных материалов, а также при исследовании сердечной мышцы объем исследуемых суспензий увеличивают в 4 раза при сохранении объема и концентрации остальных компонентов реакции в обычных пределах.
Мищенко А.В. ФГБУ"ВНИИЗЖ", г. Владимир
Джаилиди Г.А. государственное управление ветеринарии Краснодарского края, г. Краснодар
Фомина С.Н., Мищенко В.А. ФГБУ "ВНИИЗЖ", г. Владимир
Шевкопляс В.Н. Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору Российской Федерации, г. Москва
Кривонос Р.А. государственное управление ветеринарии Краснодарского края, г. Краснодар
Черных О.Ю. ГБУ КК"Кропоткинская краевая ветеринарная лаборатория", г. Кропоткин
Ящур - острое высококонтагиозное заболевание парнокопытных и мозоленогих домашних и диких животных, быстро распространяющееся на огромных территориях многих стран и континентов. Занос вируса ящура в страну возможен в любое время [6, 7]. По современной классификации ФАО/МЭБ ящур относится к группе "трансграничных инфекций", то есть к заболеваниям, подлежащим обязательному декларированию, имеющим большую экономическую значимость, важность для торговли страны и продовольственной безопасности многих стран, которые могут легко распространяться на другие регионы и приобретать размах эпизоотий. Ящур является самой контагиозной болезнью животных. Возбудителем ящура является вирус, относящийся к семейству Picornaviridae, роду Aphovirus. Характерной особенностью ящура является почти абсолютная специфичность для парнокопытных животных. К ящуру восприимчивы более 100 видов домашних и диких парнокопытных и мозоленогих животных. Эпизоотологическая роль различных видов животных в качестве источника инфекции различна. Крупный рогатый скот считается хорошим индикаторным хозяином из-за чрезвычайной чувствительности этих животных к респираторному заражению и развитию тяжелых классических клинических признаков. Овцы и козы считаются накопителями вируса ящура - они поддерживают и сохраняют популяцию возбудителя, сами часто не проявляют признаков болезни [7, 9].
Система мер борьбы и профилактики ящура в Российской Федерации предусматривает предупреждение заноса возбудителя в страну систематическую вакцинацию жвачных животных в буферной зоне и контроль эффективности профилактической иммунизации. В буферную противо-ящурную зону входят южные регионы Российской Федерации, граничащие с Китаем, Монголией, Казахстаном, Азербайджаном и Грузией.
Массовая вакцинация, в случае идентичности производственного штамма эпизоотическим изолятам и соответствия используемых вакцин требованиям руководства МЭБ [3, 7, 9, 10], позволяет создать популяционный (стадный) иммунитет, предупредить вспышку заболевания, снизить уровень заболеваемости животных или купировать начавшийся эпизоотический процесс.
В данной статье приведены данные анализов результатов исследований сывороток крови вакцинированных против ящура овец и коз в иммуноферментном методе, а также данные эпизоотологического обследования неблагополучных по ящуру пунктов.
Материалы и методы. Исследования доставленных проб сывороток крови от животных на наличие антител к вирусу ящура типов А, О и Азия-1 проводили с помощью жидкофазного блокирующего непрямого двойного сэндвич-варианта иммуноферментного анализа (ИФА), рекомендуемого для этих целей МЭБ и ФАО. Для постановки реакции использовали "Набор для определения противоящурных антител в сыворотке крови животных в ИФА", в соответствии с инструкцией по его применению. Иммунными считали животных, титры антител, в сыворотках которых были равны 1:32 и выше. Указанный критерий был определен по данным исследований сывороток крови вакцинированного крупного рогатого скота [8].
Таблица 1. Сводные данные о результатах исследований сывороток крови овец на наличие противоящурных поствакцинальных антител
СПЕЦИФИЧЕСКАЯ ПРОФИЛАКТИКА ЯЩУРА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ
Текст работы размещён без изображений и формул.
Полная версия работы доступна во вкладке "Файлы работы" в формате PDF
Ящур - остро протекающая высококонтагиозная болезнь парнокопытных, проявляющаяся лихорадкой, везикулярным поражением слизистых оболочек рта, кожи, венчика и вымени, у молодых животных поражением миокарда и скелетных мышц [1].
Продолжительность иммунитета у крупного рогатого скота, переболевшего ящуром, составляет 8 . 12 месяцев, у свиней - 10 . 12, у овец - около 18 месяцев. При ящуре возникает тканевый и гуморальный иммунитет.
Для специфической профилактики ящура в нашей стране применяют моновалентные гидроксидалюминиевые формовакцины из лапинизированного вируса ящура, выращенного в организме 2. 3-суточных крольчат, и трехвалентную (типы А, О, С) вакцину из вируса, культивируемого по методу Френкеля на эпителии языка крупного рогатого скота.
В последнее время для профилактики ящура у крупного рогатого скота и овец стали также использовать бивалентную вакцину из культурного вируса, а у свиней - масляные вакцины из лапинизированного вируса. Сконструированы генно-инженерные и синтетические вакцины. Доказана возможность пассивной передачи поствакцинального клеточного иммунитета [2].
Специфическая профилактика имеет ряд особенностей: иммунизация должна проводиться вакциной, содержащей строго соответствующий тип и подтип вируса ящура, выделенный в конкретном хозяйстве; вакцинация не прекращает вирусоносительство у животных, и они могут представлять опасность в плане распространения вируса ящура; вакцины могут обладать остаточной реактогенностью и вызывать осложнения в виде заболевания животных ящуром; вакцинация не обеспечивает 100% защиту животных от ящура; в соответствии с требованиями МЭБ страна может быть признана свободной по ящуру при условии, что в этой стране вакцинации животных против этой болезни не проводится.
сорбированные (ГОА - сапониновые) вакцины для иммунизации крупного рогатого скота, яков, буйволов, верблюдов, овец и коз: моновалентные (О, А, С, Азия-1, САТ-1, САТ-2, САТ-3); би-, трех - и четырехвалентные (О, А, С, Азия-1); семивалентные и полиштаммные различной комбинации;
эмульсионные вакцины для иммунизации свиней: моновалентные (О, А, С, Азия-1); бивалентные (О, А; О, Азия-1; А, Азия-1); трехвалентные (О, А, Азия-1);
эмульсионные моновалентные вакцины для иммунизации свиней и КРС на основе множественной эмульсии (О, А, С, Азия-1);
универсальные концентрированные вакцины моно - и поливалентные для ранней защиты животных, с формированием иммунитета в первые четыре дня после вакцинации (иммунитет продолжительностью один год и более) [3].
Концентрированная ГОА-сапониновая вакцина при однократном введении в дозе 1 мл обеспечивала практически 100%-ную защиту скота при экспериментальном заражении общепринятым способом. Выраженный иммунитет наступает на 10-14 день и достигает максимума через 3-4 недели после вакцинации. Иммунитет у взрослых животных длится 6-12 месяцев. Ревакцинация значительно усиливает иммунитет. При широкой профилактической вакцинации крупный рогатый скот обычно ревакцинируют 1 раз в год, свиней - два раза. ВНА в сыворотке крови появляются к концу первой недели, достигают максимального титра в 3-5 недель, затем их концентрация постепенно снижается. ВНА быстрее появляются и достигают пика после введения сорбированных вакцин, однако после применения эмульгированных вакцин титр антител выше и они сохраняются дольше. Колостральный иммунитет хорошо выражен, антитела у телят сохраняются в течение 5 мес, хотя пассивная защита продолжается до 3 мес. Материнский иммунитет может подавлять эффект вакцинации у молодняка, поэтому вакцинацию телят при систематической вакцинации коров начинают с 3-4 месячного возраста. Однако имеются доказательства, что телята отвечают на вакцинацию в месячном возрасте или раньше.
Инактивированные вакцины могут быть моно- или поливалентными, то есть содержать антигены одного или нескольких типов, подтипов и вариантов вируса. При изготовлении поливалентных вакцин количественное соотношение вирусных антигенов необходимо определять с учетом их иммуногенности.
Инактивированные противоящурные вакцины являются высокоэффективными препаратами, а технология их изготовления основывается на самых современных достижениях биологической науки. Успех и изготовление инактивированных противоящурных вакцин могут быть использованы в качестве прототипных решений в исследованиях и разработках инактивированных вакцин против других заболеваний человека и животных.
Живые вакцины против ящура не разработаны. Многочисленные попытки в этой области не дали положительных результатов. Аттенуированные штаммы, как правило, оказывались или слабоиммуногенными, или реверсибельными. В этом отношении вирус ящура существенно отличался от вируса полиомиелита, аттенуированные штаммы которого успешно применяют для пероральной иммунизации человека. Причина этих различий неизвестна. Возможно, что она заключается в различном патогенезе этих заболеваний. Полиомиелит, как и многие вирусные заболевания, имеет сложный патогенез. Для их возбудителей характерно первичное место репликации с последующим проникновением в один или несколько органов-мишений. У полиовируса первичным местом размножения является кишечник, вторичным - центральная нервная система. Такие вирусы, по-видимому, относительно легко могут быть аттенуированны с помощью селективного изменения тропизма в отношении вторичных органов-мишений. В отличие от них, вирус ящура, как, впрочем, возбудители ряда других топикальных инфекций, практически не имеют вторичного органа-мишени. Получение аттенуированных иммуногенных штаммов против таких заболеваний, вероятно, требует иных подходов и представляет более сложную задачу [4].
Библиографический список
Белоусова, Р. В. Практикум по ветеринарной вирусологии [Текст] : учеб. пособие для студ. вузов по спец. 111201 "Ветеринария" / Р. В. Белоусова, Н. И. Троценко, Э. А. Преображенская . - 3-е изд., перераб. и доп. - М. : КолосС, 2006. - 248 с.
Читайте также: