Резонансно-частотная диагностика паразитов

Обновлено: 25.04.2024

Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания и гельминтозы. Экспертная оценка ВОЗ свидетельствует, что более 4,5 млрд человек в мире поражено возбудителями этой группы болезней [1]. Из них 2 млрд человек инфицированы Ascaris lumbricoides [2]. Ежегодно в мире аскаридозом заражаются около 650 млн человек, энтеробиозом — 460 млн [3]. По оценкам специалистов, ежегодно число заболевающих паразитарными болезнями в России превышает 20 млн человек и имеет тенденцию к увеличению [4]. По мнению ряда авторов, в последнее время под воздействием различных факторов происходит изменение картины паразитарных заболеваний, проявляющееся в неспецифичности проявлений глистно-протозойных инвазий у детей [5], в бессимптомном течении паразитарных заболеваний [6, 7, 8], в формировании у паразитов клеточных структур, способных изменять иммунный ответ хозяина на присутствие в организме паразита [9, 10, 11]. Особенностью большинства паразитарных болезней является хроническое течение, не сопровождающееся развитием острых симптомов.

Из числа протозойных инвазий наиболее массовой является лямблиоз. До сих пор проблемой является разработка эффективных лечебных мероприятий в отношении хронически рецидивирующего лямблиоза у детей. Устойчивость к противопаразитарным препаратам может быть обусловлена антигенными различиями видов лямблий с разной восприимчивостью к разным противопаразитарным препаратам [12, 13]. Наиболее массовыми гельминтозами в России являются нематодозы, возбудителями которых служат круглые гельминты: острицы, аскариды и др. [14]. Одной из актуальных задач в борьбе с паразитарными инвазиями на сегодняшний день является разработка эффективных, безопасных, недорогих методов лечения гельминтно-протозойной инвазии у детей. Лечение паразитарных инвазий эффективно при проведении комплексного подхода под контролем исследования кала, т. к. целью лечения является эрадикация паразита из кишечника [15, 16, 17]. Однако применение медикаментов широкого спектра действия не обеспечивает полного излечения при однократном курсе терапии и у ряда больных вызывает побочные эффекты аллергического, диспепсического и неврологического характера.

Учитывая сложности в диагностике паразитарных инвазий у детей, актуальной является проблема поиска новых, чувствительных, экономически эффективных и доступных методов диагностики. Полимеразная цепная реакция [ПЦР] [18, 19] нашла широкую область применения в паразитологии, ДНК-технологии имеют большое значение во многих областях паразитологии включая идентификацию и систематизацию паразитов, анализ генетической структуры, генной организации, изучение лекарственной устойчивости [20, 21, 22]). Метод ПЦР позволяет прямо обнаружить инфекционный агент или генетическую мутацию в любой биологической среде организма (слюна, мокрота, кровь, моча, кал).

Современные взгляды зарубежных и отечественных ученых на взаимоотношения паразит–хозяин с позиции колебательных и волновых процессов, присущих всем живым организмам, позволили разработать новый подход к диагностике различных заболеваний, в том числе и паразитарных. Одним из таких методов является вегетативный резонансный тест (ВРТ), позволяющий определить наличие паразитов в организме человека на разных стадиях развития: яйца, личинки, взрослых особей. Маркерами для диагностики являются резонансные электромагнитные частоты, характеризующие индивидуальный спектр электромагнитного излучения паразитов [23, 24]. Метод является гигиеническим, неинвазивным, безболезненным, что особенно важно для детей. ВРТ официально разрешен и рекомендован к медицинскому применению Министерством здравоохранения Российской Федерации (Методические рекомендации № 98/232, 99/96, 2000/74) [25].

Цель нашего исследования — совершенствование диагностики и лечения паразитозов у детей на современном этапе.

Материалы и методы исследования

В основу работы положены результаты обследования 540 детей в возрасте от 2 месяцев до 17 лет с различными гастродуоденальными заболеваниями: хроническим гастродуоденитом (53,5%), функциональным расстройством желудка (8,2%), дискинезиями желчевыводящих путей (30%). Среди сопутствующих заболеваний были диагностированы: аномалии желчного пузыря (4,8%), аллергические заболевания (10%), последствия перинатальной патологии ЦНС (7,7%), хронический иерсиниоз (1,8%), заболевания ЛОР-органов (1,8%).

Для постановки диагноза использовался тщательный сбор анамнеза, анализ жалоб, объективный осмотр, проведение необходимых лабораторных и инструментальных исследований (копроовоскопический метод диагностики, исследование кала с консервантом Барроуза, ПЦР-диагностика кала, вегетативно-резонансное тестирование).

Результаты исследования и их обсуждение

По возрасту дети были распределены на четыре группы: группа I — дети от 2 месяцев до 3 лет, группа II — от 3 до 7 лет, группа III — от 7 до 12 лет, группа IV — от 12 до 17 лет. Кроме того, в зависимости от наличия или отсутствия подтвержденной гельминтно-протозойной инвазии каждая группа была разделена на две подгруппы: А — без паразитарной инвазии, В — с подтвержденной паразитарной инвазией.

Среди обследованных детей преобладали жалобы на отрыжку, тошноту, рвоту, снижение аппетита, боли в животе в околопупочной области, неустойчивый стул (табл. 1).

Обследованные дети с подтвержденной паразитарной инвазией имели три вида моноинвазий (лямблиоз, аскаридоз, энтеробиоз) и четыре вида сочетанной глистно-протозойной инвазии (лямблиоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз, аскаридоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз). Характеристика жалоб и объективного осмотра детей в зависимости от вида паразитарной инвазии представлена в табл. 3. Как видно из таблицы, лишь головная боль и болезненность в околопупочной области при объективном осмотре достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами инвазий. Кроме того, нарушение сна достоверно (р < 0,05) чаще отмечалось у детей с моноинвазией аскаридами, а боли в околопупочной области достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами глистно-протозойной инвазии. Различия между группами паразитарных инвазий в преобладании тех или иных диспептических жалоб не достигали уровня значимости.

В нашем исследовании мы изучали диагностическую значимость различных методов диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей.

При диагностике лямблиоза при копроовоскопии 540 мазков цисты лямблий были обнаружены менее чем в 1% случаев. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей. Методом ПЦР кала лямблии были обнаружены у 28,83% обследованных детей. Методом ВРТ обследованы 136 детей, лямблии обнаружены у 31,62% детей (рис. 1).

Наиболее ценным диагностическим методом при исследовании на лямблиоз оказался метод исследования кала с консервантом Барроуза, данный метод был принят нами в качестве стандарта. Диагностические характеристики других методов диагностики определяли относительно стандарта с помощью четырехпольной таблицы. Для оценки эффективности диагностических тестов рассчитывали следующие показатели: чувствительность (Se), специфичность (Sp), точность (test eff.), прогностическая ценность отрицательного результата теста (–PV), прогностическая ценность положительного результата теста (+PV).

Как известно, от значений чувствительности и специфичности зависит прогностическая ценность (посттестовая вероятность) положительного и отрицательного результатов теста. Чем чувствительнее тест, тем выше прогностическая ценность его отрицательного результата (т. е. возрастает уверенность врача в том, что отрицательные результаты теста отвергают наличие заболевания). Чем специфичнее тест, тем выше прогностическая ценность его положительного результата (то есть врач может с большей уверенностью считать, что положительные результаты теста подтверждают предполагаемый диагноз).

Как видно из табл. 3, методы ПЦР и ВРТ обладают хорошими диагностическими показателями и высокими показателями точности теста (для ПЦР — 82,42%, для ВРТ — 69,92%). Копроскопический метод диагностики характеризовался чрезвычайно низкими диагностическими показателями (все показатели менее 1%), что ставит под сомнение целесообразность его использования для диагностики лямблиоза у детей.

При диагностике аскаридоза мы исследовали кал на яйца глист микроскопическим методом у 540 детей, аскариды обнаружены в 2,04% исследований. Методом ПЦР кала обследовано 434 ребенка, аскариды обнаружены у 1,15% детей, а методом ВРТ обследовано 135 детей, аскариды обнаружены у 7,14% детей (рис. 2).

В качестве стандарта в диагностике аскаридоза в нашем исследовании использовали ПЦР-диагностику кала.

Как известно, не существует абсолютно чувствительных и абсолютно специфичных тестов. Стопроцентные показатели получены, вероятно, из-за того, что в исследовании принимало участие относительно небольшое количество инфицированных аскаридами пациентов (табл. 4). Вероятно, с этим связаны и низкие показатели прогностической ценности положительного результата теста (12,5%). Тем не менее, полученные нами данные позволяют сделать вывод о высокой информативности ВРТ-диагностики аскаридоза у детей (чувствительность теста — 100%, специфичность — 93,96%). При оценке диагностических показателей копроскопического метода диагностики все показатели оказались менее 1%, что не позволяет рекомендовать копроскопический метод для диагностики аскаридоза у детей.

При диагностике энтеробиоза проводились однократные соскобы у 540 детей, острицы диагностированы у 0,2% детей. При исследовании кала на яйца глист у всех обследованных детей, острицы были обнаружены также у 0,2% детей. При проведении ПЦР-диагностики кала у 434 пациентов, острицы обнаружены у 9,68% детей, при вегетативно-резонансном тестировании (обследовано 135 детей) — у 12,59% (рис. 3).

В нашем исследовании стандартом в диагностике энтеробиоза являлась ПЦР-диагностика кала.

Как видно из табл. 5, копроскопический метод диагностики энтеробиоза и однократные соскобы на энтеробиоз не имеют диагностической значимости в диагностике энтеробиоза у детей. Вместе с тем метод ВРТ обладает высокой специфичностью (93,2%) и точностью теста (88,88%) в диагностике энтеробиоза.

При лечении лямблиоза процент успешной эрадикации паразита при использовании метронидазола (20 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) составил 58%, макмирора (15 мг/кг/сут в 2 приема 10 дней) — 53%, албендазола (200 мг/сут в 2 приема 7 дней) — 50%, фуразолидона (10 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) — 20%.

При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей были назначены биорезонансные препараты (Танаксол с Пара-уолнат-плас или инверсионный нозод лямблий — предварительно протестированные гомеопатические препараты) с положительным эффектом. Эрадикация простейших при использовании Танаксола с Пара-уолнат-плас оказалась успешной в 47,5% случаев. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза инверсионным нозодом лямблий эффективность терапии была еще выше и составила 71,95% (различия между эффективностью данных методов лечения были достоверными (p < 0,01%)).

При лечении аскаридоза — у 4 детей применялся Вермокс (мебендазол) (для детей от 2 до 10 лет 0,05 г/сут в 3 приема, детям старше 10 лет — 0,1 г в сутки в 3 приема во время еды. Курс лечения 3 дня), у 1 ребенка — Пирантел (12,5 мг/кг однократно), при лечении энтеробиоза 22 ребенка получали Вермокс, 20 детей — Пирантел. Данные препараты оказались эффективными у всех детей с нематодозами. Пациенты с сочетанной паразитарной инвазией получали терапию препаратом Немозол (альбендазол) в случае сочетанной гельминтно-протозойной инвазии (лямблиоз/аскаридоз, лямблиоз/энтеробиоз) в дозе 15 мг/кг/сут в 1 прием 10 дней; при сочетанной инвазии аскаридоз/энтеробиоз Немозол назначался в дозе 400 мг внутрь однократно.

Выводы

Для детей с паразитарной инвазией наиболее характерными клиническими проявлениями являются жалобы на тошноту и боли в околопупочной области. Головная боль и болезненность в околопупочной области достоверно более характерны для детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз. Нарушение сна достоверно чаще отмечается у детей с моноинвазией аскаридозом, а боли в околопупочной области — у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз.

Число эозинофилов в периферической крови у обследованных детей во всех возрастных группах было в пределах нормы и существенно не отличалось у детей с подтвержденной гельминтно-протозойной инвазией и у детей без паразитарной инвазии.

Метод копроовоскопии без использования консерванта для диагностики лямблиоза малоинформативен, что не позволяет использовать его в широкой практике. Наиболее информативными в диагностике лямблиоза оказались метод исследования кала с консервантом Барроуза и метод ВРТ. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей, методом ВРТ лямблии обнаружены у 31,62% детей.

ВРТ является неинвазивным, высокоинформативным, удобным и недорогим методом диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей. В диагностике энтеробиоза и аскаридоза метод ВРТ имел высокую диагностическую значимость наряду с методом ПЦР.

Стандартное медикаментозное лечение лямблиоза было эффективным лишь у 20–58% детей. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей максимальной эффективностью обладал инверсионный нозод лямблий (71,95%).

Литература

Savioli L., Gabrielli A. F., Ramsan M. et al. Soil-transmitted helminths and haemoglobin status among Afghan children in World Food Programme assisted schools // J. Helminthol. 2005. Vol. 79 (4). P. 381–384.

Chan M. S. The global burden of intestinal nematode infections — fifty years on // Parasitol. Today 1997. Vol. 13 (11). P. 438–443.

Онищенко Г. Г. О мерах по усилению профилактики паразитарных болезней в России // Медицинская паразитология. 2003. № 3. С. 3–7.

Озерецовская Н. Н., Зальнова Н. С., Тумольская Н. И. Клиника и лечение гельминтозов. М.: Медицина.1985. 183 с.

Horowicz M., Korman S., Shapiro M. et al. Asymptomatic Giardiasis in children // Pediatr. Inf. Dis. 1989. Vol. 87. P. 733–779.

Morrow A. L., Reves R. R., West M. S. et al. Protection against infection with Giardia lamblia by breast-feeding in a cohort of Mexican infants // J. Pediatr. 1992. Vol. 121. P. 363–370.

Pickering L. K., Engelkirk P. G. Giardia lamblia // Pediatr. Clin. Nort. Am. 1988. Vol. 35. P. 565–577.

Kulakova L., Singer S. M., Conrad J., Nach T. E. Epigenetic mechanisms are involved in the control of Giardia lamblia antigenic variation // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 61 (6). 1533–1542.

Nash T. E. Antigenic variation in Giardia lamblia and the host’s immune response // Philos. Trans. R. Soc. London Ser. B. 1997. Vol. 352. P. 1369–1375.

Sun C. H., McCaffery J. M., Reiner D. S., Gillin F. D. Mining the Giardia lamblia genome for new cyst wall proteins // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278 (24). P. 21701–21708.

Carnaby S., Ketelaris P. H., Neem A., Farthing M. J. G. Genotypic heterogeneity within Giardia lamblia isolates demonstrated by M13 DNA fingerprinting // Infect. Immun. 1994. Vol. 62. P. 1875–1880.

Majewska A. C., Kasprzak W., De Jonckheere J. F., Kaczmarek E. Heterogeneity in the sensitivity of stocks and clones of Giardia to metronidazole and ornidazole // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1991. Vol. 85. P. 67–69.

Тимченко В. Н., Леванович В. В., Абдукаева Н. С., Васильев В. В., Михайлов И. Б. Паразитарные инвазии в практике детского врача. СПб. ЭЛБИ 2005. С. 60–68.

Озерецовская Н. Н. Современные проблемы терапии гельминтозов // Мед. паразитология. 1975. 33. С. 271–276.

Lohiya G. S., Tan-Figueroa L. et al. Epidemiology and control of enterobiasis in a developmental center // West. J. Med. 2000. Vol. 172 (5). P. 305–308.

Saiki R. K., Scharf S., Faloona F., Mullis K. B. et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia // Science. 1985. Vol. 230 (4732). P. 1350–1354.

Mullis K., Faloona F., Scharf S. et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction // Cold. Spring. Harb. Symp. Quant. Biol. 1986. Vol. 51. P. 263–273.

Zhu X., Chilton N. B., Jacobs D. E. et al. Characterisation of Ascaris from human and pig hosts by nuclear ribosomal DNA sequences // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (3). P. 469–478.

Gasser R. B., Rossi L., Zhu X. Identification of Nematodirus species (Nematoda: Molineidae) from wild ruminants in Italy using ribosomal DNA markers // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (11). P. 1809–1817.

Zhang L., Gasser R. B., Zhu X., McManus D. P. Screening for different genotypes of Echinococcus granulosus within China and Argentina by single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1999. Vol. 93 (3). P. 329–334.

Электропунктурный вегетативный резонансный тест. Под ред. А. М. Василенко, Ю. В. Готовскиго, Е. Е. Мейзерова, Н. А. Королевой, В. С. Каторгина. Метод. реком. № 99/96. М.: МЗ РФ, ИПЦ ТМГФ, 2000. 27 с.

В. А. Александрова, доктор медицинских наук, профессор
В. Е. Одинцева

СПб МАПО, Санкт-Петербург

РЧТ терапия в гомеопатическом центре Аконит-Гомеомед.

И не надо тратить время и средства на сдачу множества анализов, в достоверности которых сомневаются даже врачи!

Процесс лечения

Итак, и врачу и пациенту ясно: паразиты есть!

И эти колебания совершенно не воспринимаются пациентом!

РЧТ на Братиславской

Резонансно-частотная терапия на приеме

Лечебная процедура РЧТ терапия в гомеопатическом центре Аконит-Гомеомед.

РЧТ – абсолютно безвредная и не оказывающая никаких (!) побочных действий лечебная процедура! Резонансные частоты тканей организма человека находятся в диапазоне 1-10 МГц, а паразитов – в диапазоне 100-400 КГц.

Важно не только разрушить организм паразита, но и обезвредить человека от всасывания его разлагающихся останков и продуктов жизнедеятельности. И в этом РЧТ просто незаменимо!

Ведь, подумайте: сколько сил понадобится организму для привычного избавления от чужеродных организмов! Это и антибиотики, и сложные многокомпонентные химические средства, губительно влияющие не только на печень, но и буквально на все органы. И сколько сил, времени и средств придется потратить на эту борьбу? И будет ли результат 100%?

Отзывы пациентов

Пришла к врачу Поповой с хеликобактером. Мне уже 3-ий раз за последний год подтверждают это диагноз. Поняла – если опять 2 недели буду пить кучу антибиотиков, то просто не выживу!, Нашла данные об этой процедуре.

Врач сначала меня долго обследовала, а в конце приема выдала список бактерий и вирусов. Это было для меня неожиданным – я полгода назад проверялась – сдавала мазки. Попова меня успокоила и сразу начала лечение.

Затем 2 раза я приходила еще. И представьте – ВСЕ пробы на хеликобактер оказались ОТРИЦАТЕЛЬНЫМИ. И зачем, спрашивается, я до изнеможения травила себя химией!?

У сына (ему 6 лет) постоянно в анализах на яйца глист обнаруживали остриц. У нас дома собака – может и поэтому тоже.

В этом центре сыну провели диагностику на паразитов и сеанс РЧТ. С собой дали горошки для продолжения лечения. Мы давали примерно 3 недели, а когда в саду еще раз сдали анализы, все оказалось в норме.

Мы с женой тоже записались на диагностику паразитов – важно за этим следить!

Вы ничего не слышали о биорезонансной терапии и с недоверием относитесь ко всему новому?

Сомневаетесь: может ли БРТ вам навредить?

Интересуетесь: при каких болезнях надо использовать биорезонансную терапию?

Сейчас расскажем обо всем по порядку!

О лечении БРТ

На приеме врач проводит процедуру в гомеопатическом центре Аконит-Гомеомед, Москва.

Процедура биорезонансной терапии заключается в использовании собственных электромагнитных колебаний. Такие колебания беспрерывно существуют в организме, управляя работой внутренних органов. Они легко регистрируются. Достаточно вспомнить о лентах с синусоидами – распечатках электромагнитных ритмов мозга и сердца - об ЭЭГ И ЭКГ.

С какой целью проводится БРТ

Получается, что цель проведения процедуры биорезонансной терапии – это коррекция собственных электромагнитных колебаний, руководящих работой внутренних органов.

Чужие колебание, энергия или вещества при БРТ не применяются. Поэтому данный лечебный метод не оказывает побочных действий и не имеет противопоказаний (за редким исключением). БРТ не является электроаккупунктурной рефлексотерапией или разновидностью физиотерапии.

Показания к лечению

БРТ как абсолютно безвредный и сверхэффективный подходит для лечения взрослых (включая беременных и кормящих женщин) и детей, начиная с 3-х летнего возраста.

Основная направленность лечебного воздействия БРТ – это выраженная активизация иммунитета - защитных сил организма. Поэтому применяться данный метод может практически при любом заболевании.

Биорезонансная терапия особо показано при:

Аллергических заболеваний, в т .ч. при следующих формах аллергии: бронхиальная астма, аллергические дерматиты (экзема, нейродермит), поллиноз и аллергический ринит.

Заболеваниях центральной нервной системы - неврозах, фобиях, энцефалопатии, гиперактивности у ребенка, при бессоннице и ВСД – вегето-сосудистой дистонии.

Гормональных нарушениях заболевания - паталогиях щитовидной и молочных желез, яичников, предстательной железы, климаксе и сахарном диабете.

Заболеваниях желудочно-кишечного тракта – при гастритах, дуоденитах, язвенной болезни, панкреатите, гепатите и дискинезии желчных путей.

Заболеваниях суставов и позвоночника – артритах, артрозах и остеохондрозе.

Заболеваниях мочеполовых путей – при пиелонефрите, цистите, мочекаменной болезни, аднексите и простатите.

11 случаев церебральных нематодозов наблюдались в течение 2014–2017 гг. Во всех случаях нематодозов отмечались специфические радиологические симптомы туннеля и визуализации гельминта; в 9 из 11 случаев отмечен ранее не описываемый симптом «клубка в разрез

Церебральные гельминтозы могут быть представлены как цестодами, так и нематодами. У детей за последние годы церебральные гельминтозы диагностируется все чаще, и не только в развивающихся странах [1–4].

Церебральная симптоматика гельминтозов различна, зависит от расположения гельминта (в паренхиме мозга, субарахноидальном пространстве, желудочковой системе) и характера и распространенности травматической или воспалительной иммунной реакции (при гибели паразита).

Из нейровизуализационных симптомов нематод абсолютными диагностическими критериями являются симптомы:

Ниже приводятся критерии валидности параклинической диагностики церебральных гельминтозов, правда, для плоских червей (в данном случае это пристрастие автора к определенному роду паразитов), но это положение справедливо для всего семейства гельминтов (точно так же, как принципы параклинической диагностики справедливы для любой инфекции — вирусной, бактериальной, протозойной и т. д.).

Диагностические критерии и их валидность при нейроцистицеркозе (плоские черви), предложенные Del Brutto [7, 8].

Абсолютные критерии:

А. Гистологическая демонстрация паразита в мозге.
Б. Наличие кисты со сколексом при нейровизуализации.
В. Визуализация паразита при офтальмоскопическом исследовании.

Большие критерии:

А. Наличие высокоподозрительного на паразитарный генез очага поражения мозга при нейровизуализации.
Б. Позитивный серологический анализ (иммуноблот) на антипаразитарные антитела.
В. Разрешение внутричерепного кистозного образования после лечения альбендазолом или празиквантелом.

Малые критерии:

А. Наличие подозрительного на паразитарный генез очага поражения мозга при нейровизуализации.
Б. Наличие клинической симптоматики, подозрительной на цистицеркоз.
В. Позитивный анализ ликвора (ELISA) на паразитарный антиген или антипаразитарные антитела.
Г. Наличие цистицерка вне нервной системы.

Эпидемиологические критерии:

А. Проживание в эндемичном районе.
Б. Частое посещение эндемичного района.
В. Наличие домашнего контакта с паразитарной инфекцией.

Степени диагностической валидности (достоверности) критериев:

А. Наличие одного абсолютного критерия.
Б. Наличие двух больших и одного эпидемиологического критерия.

А. Наличие одного большого и двух малых критериев.
Б. Наличие одного большого, одного малого и эпидемиологического критерия.
В. Наличие трех малых и одного эпидемиологического критерия.

Анализируя приводимые диагностические критерии, несложно сделать вывод, что нейровизуализационное обнаружение характерного для гельминтов симптома является абсолютным критерием для достоверного диагноза и прочих критериев уже не требуется.

Серологическая диагностика гельминтоза осуществляется только методами иммуноблота и ELISA. Чувствительность данных методик достаточно низкая — не более 50% (о банальном иммуноферментном методе речь вообще не идет) [2, 7–10]. Высокую чувствительность и специфичность показал метод полимеразной цепной реакции (ПЦР) к паразитарным антигенам в ликворе, но в РФ отсутствует ПЦР на гельминты и антигеном служит митохондриальная ДНК только погибшего паразита, но не живого.

Материал и методы исследования

Методы исследования: основной — МРТ (Тoshiba Aquilon 1,5 Т, Mаgnetom Vision 1,5 Т, GENSOV 1,5 Т); дополнительные — ЭЭГ; стандартный анализ ликвора; рентгенография легких; УЗИ внутренних органов; исследование прозрачных сред глаза и глазного дна; общий анализ крови; исследования кала на яйца глист.

Полученные результаты

Пациент Д., 9 лет, находилась в ДКБ № 9 с 27.07.16 по 03.09.16.

Анамнез жизни — без особенностей.

Проводится дифференциальный диагноз между парциальными эпилептическими приступами и преходящими нарушениями мозгового кровообращения.

При поступлении: в соматическом и неврологическом статусе патологии не выявлено. Общий анализ крови, мочи, биохимия крови — патологии не выявляют. Анализ кала на простейшие, яйца глист — без патологии.

Осмотр окулиста — без патологии.

С момента установления (по данным клиники и МРТ) диагноза ОНМК пациенту проводится лечение в соответствии со стандартами медицинского обязательного страхования, в том числе с профилактикой тромбообразования антикоагулянтами.

А что надо делать в действительности? Проводить на фоне парентерального введения кортикостероидов (для профилактики и коррекции воспаления, которое неизбежно возникнет при гибели паразита) антипаразитарную терапию — альбендазол парентерально.

Симптом туннеля (специфический симптом!) вдоль стенки левого бокового желудочка от лобной доли в затылочную трактовки не получает. Очаг корково-подкоркового отека с геморрагией в левой гемисфере, соответствующий некротизирующему васкулиту [11, 12], — ситуация, давно известная при гельминтозах [6], трактовки не получает. На представленных снимках гельминт уже не визуализируется (погиб), но имеется текущее воспаление (в теменной, затылочной областях мозга), на которые можно и должно воздействовать — кортикостероиды парентерально.

Анализ на наиболее частые мутации митохондриальной ДНК (№ 11) при тромбофилиях патологии не выявил.

Через полгода пациент поступает снова для контроля состояния и реабилитации. В статусе — левосторонний грубый гемипарез, сила в руке — 3 балла, в ноге — 3 балла, спастический тонус в левых конечностях, поза Вернике–Манна, ходьба с костылем.

На МРТ головного мозга картина очагов локальной атрофии в лобной, теменной и затылочной долях слева, сохраняется линейная атрофия на месте хода нематоды из лобной доли в затылочную (туннель) (рис. 4, нижний ряд). Имевшееся сегментарное сужение проксимальной части левой средней мозговой артерии сохраняется без динамики. Степень расстройства функции (теперь уже невзирая на данные МРТ) не позволяет надеяться на клиническое восстановление, пациент обречен на инвалидизацию…

Прочие параклинические данные (кроме МРТ) наблюдавшихся 11 пациентов уже не имеют значения для обсуждаемого материала, как не несущие достоверной информации [3, 4].

Паразитарное поражение мозга гельминтами составило неожиданно актуальную проблему детской неврологии. Только за 2014–2017 гг. на двух клинических базах кафедры (многопрофильные детские больницы г. Москвы) выявлен 31 случай заболевания с поражением мозга. Откуда возникло такое количество пациентов — вопрос не к неврологу, а скорее к санитарному врачу; материал наблюдений (наличие у всех абсолютных диагностических критериев церебрального гельминтоза) ставит нас перед фактом.

Клиническая картина была чрезвычайно разнообразной, и ее описание не входит в задачи данной публикации.

Вернемся к публикациям Del Brutto (только потому, что он предложил развернутые критерии диагностики церебральных гельминтозов. Диагностические критерии нейроцистицеркоза — профессиональное увлечение Del Brutto, но, что справедливо для одних гельминтов, справедливо и для других (аналогично методам диагностики различных инфекционных агентов — вирусов или бактерий), и они подчеркивают приоритет методов нейровизуализации перед серологическими исследованиями.

В то же время у клиницистов бытует мнение, что для диагностики паразитоза обязательно серологическое подтверждение.

Следует подчеркнуть, что для серологических исследований рекомендуются методики ELISA и иммуноблота как более чувствительные, чем обычный иммуноферментный анализ. В г. Москве ни в одной лаборатории (как находящейся на бюджетном финансировании, так и коммерческих) методики ELISA и иммуноблота для гельминтов не применяются. Предвидя реакцию инфекционистов по вопросам серологической диагностики, позволительно задать вопрос, насколько достоверным является иммуноферментный анализ (ИФА) при диагностике, скажем, церебрального боррелиоза или туберкулеза [13, 14]. Например, мы в сентябре 2016 г. наблюдали только в одном стационаре 7 случаев классического нейроборрелиоза (острый менингит, поражение черепных нервов и радикулопатия с периферическими парезами конечностей), и ни в одном случае в остром периоде заболевания ИФА не дал положительного результата.

При отсутствии своевременного противоотечного (при живом) и противовоспалительного (при погибающем паразите) лечения высок риск развития стойких морфологических изменений мозговой ткани — атрофии и склероза, соответственно могущих приводить к стойкому дефекту нарушенной в остром периоде функции.

В то же время специфическое лечение назначает паразитолог или инфекционист (по существующим стандартам обязательного медицинского страхования невролог самостоятельно не имеет права как ставить диагноз церебрального нематодоза, так и назначать антипаразитарные препараты), незнакомый с абсолютными диагностическими критериями церебральных гельминтозов и ориентирующийся исключительно на серологическую диагностику. И если паразит погиб, то на имеющееся воспаление невролог может воздействовать, а как быть в том случае, если паразит жив, — воздействовать только на травматический (оставляемый движением паразита по мозговой ткани) отек и оставлять в покое инфекционный агент?

Данная проблема может быть решена только усилением внимания радиологов к нейровизуализационным проявлениям гельминтозов, а также санкцией инфекционистов на проведение антипаразитарной терапии.

Вывод

Литература

Del Brutto O. H. Neurocysticercosis in infants and toddlers: report of seven cases and review of published patients // Pediatr. Neurol. 2013; 48; 6: 432–435.
Del Brutto O. H. Neurocysticercosis // Neurophospitalist. 2014; 4; 4: 2005–2012.
Чучин М. Ю. Церебральные гельминтозы и рассеянный склероз у детей. Дифференциальная диагностика и лечение // Клиническая неврология. 2015; 2: 23–30.
Чучин М. Ю. Нейроцистицеркоз и другие церебральные гельминтозы у детей. Проблемы диагностики и лечения // Современная медицина. 2016; 4: 37–42.
Song W. S., Wang B. R., Zhou W. W. et al. CT and MR characteristics of cerebral spranganosis // Am. J. Neuro Radiology. 2007; 28; 9: 1700–1705.
Xinou E., Lefkopoulos A., Gelagoti M. et al. CT and MR imaging findings in cerebral toxocaral disease // Am. J. Neuroradiology. 2003; 24: 714–716.
Del Brutto O. H. Neurocysticercosis // Continuum (Minneap. Minn.). 2012; 18: 1392–1416.
Del Brutto O. H. Diagnostic criteria for neurocysticercosis, revisited // Pathol. Glob. Health. 2012; 106; 5: 299-30-45.
Zibaci M., Frovech F., Bahrami P., Sadjadi S. M. Investigation of anti-toxocara antibodies in epileptic patients and comparison of two methods: ELISA and Western Blotting // Epilepsy Res. Treat. 2013. PMC 3654325; Pub. Online 2013; Apr. 22. DOI: 10. 1155/2013/156815.
Zibaci M., Sadjadi S. M., Sarcari B., Uga S. Evoluation of Toxocara catis excretory-secretory larval antigens in serodiagnosis of human toxocariasis // J. Clin. Lab. Anal. 2016; 30; 3: 248–253.
Aviv R. I., Benseler S. M., Silverman E. D. et al. MR imaging and angiography of primary CNS vasculities in childhood // Am. Journal Radiology. 2006, 27: 192–199.
Benseler S. M, Silverman E., Aviv R. I. et al. Primary central nervous system vasculitis in children // Arthritis Rheumatology. 2006; 54: 1291–1297.
Sousa V. M., de Carvalho L. I., Nucio S. M., Conceicao C., Silva R., Gouveia C. Meningomyeloradiculitis as an unusual presentation of neuroborreliosis in children // Pediatr. Infect. Des. 2015; 34; 10: 1132–1133.
Ramachandran R., Muniyandi M., Iver V., Sripiya T., Priva B., Gouvindaraja T. G. Dilemmas in the diagnosis and treatment of intracranial tuberculomas // J. Neurol. Sci. 2017; 15; 381: 256–264.

М. Ю. Чучин, кандидат медицинских наук

ФГБОУ ДПО РМАНПО, Москва

К диагностике церебрального поражения нематодами/ М. Ю. Чучин
Для цитирования: Лечащий врач № 10/2018; Номера страниц в выпуске: 63-66
Теги: церебральный нематодоз, поражение мозга, серологический анализ

Своевременная диагностика заболеваний – залог успешного лечения

История создания ВРТ

Изучив особенности восточной медицины, немецкий ученый Рихард Фолль изобрел специальный прибор, позволяющий фиксировать информацию, исходящую от биологически активных точек. Ведь если орган заболевает, то соответствующая ему точка сразу же меняет свои характеристики – величину магнитного поля, электрическое сопротивление, температуру и другие константы.

Принцип работы ВРТ

Принцип данной диагностики заключается в резонансе электромагнитных частотных колебаний, посылаемых из специального аппарата с электромагнитными частотами самого организма человека. Специалист выставляет аппарат на биологически активную точку руки человека, далее создаются электромагнитные колебания определенной частоты, соответствующей тому или иному патологическому или физиологическому процессу. Если данный процесс имеет место в организме, возникает явление резонанса, фиксируемое прибором ВРТ в виде отклонения стрелки на шкале прибора.

Таким образом, используя метод ВРТ, можно выявить патологический процесс, вызванный паразитом или инфекцией, даже если во время обследования нет клинических проявлений (доклиническая диагностика) или симптомы болезни настолько нечеткие, что не позволяют установить точный клинический диагноз.

Другими словами каждый живой организм имеет свою частоту (колебания), а данный прибор выявляет эти колебания и по показателям может определить какой именно паразит находится в организме человека.

Что определяет ВРТ?

С помощью метода ВРТ (вегето-резонансное тестирование) можно проверить:

Наличие любых паразитов, вирусов, бактерий, грибков, которые являются причиной многих заболеваний.
Абсолютно все системы человека.
Выявить отягощения тяжелыми металлами.
Аллергены.
Состояние иммунной системы.
Изменения уровня сахара, билирубина, холестерина, мочевой кислоты и гормонов в крови, витаминов, микроэлементов и ферментов.

Метод ВРТ безопасен, безболезнен, точен, минимален по времени. Потребуется на диагностику от 1 до 2 часов. Но гораздо важнее то, что многие заболевания удается выявить на начальной стадии – тогда, когда еще не проявились какие-либо его симптомы.

В природе любой процесс имеет причинно-следственный механизм. И любое заболевание не сразу возникает с появлением морфологических изменений в органах – сначала происходят скрытые функциональные нарушения. Порой они существуют совершенно незаметно для человека, т.к. организм справляется с ними благодаря своим компенсаторным возможностям. И тогда, когда такие возможности иссякают (влияние стресса, экологии, электромагнитных нагрузок), появляются органические изменения, и человек начинает замечать симптомы заболевания.

Ценность метода ВРТ в том, что он дает возможность выявить заболевание на ранней стадии и предупредить человека о существующих нарушениях работы организма задолго до проявления болезненных симптомов.

Наш способ избавления от паразитов

Если диагностика выявила наличие паразитов, то назначается прибор для домашнего применения, который будет создавать частоты, не совместимые с жизнью для паразита, при этом совершенно безвредные для человека. Если колонии паразитов не критичны, то назначается травяной антипаразитарный сбор, в отличие от химических препаратов безвредный для слизистой желудка, печени и реологии крови. Очень важно своевременное избавление от остатков паразитов и продуктов их жизнедеятельности, поэтому необходимо восстановить:

выделительную систему (толстый кишечник);
печень (нейтрализация жирорастворимых токсинов);
поджелудочную железу (возобновление природного щелочного баланса);
почки (нейтрализация водорастворимых токсинов), чтобы не допустить интоксикацию организма;
если Вы проходили курс приема антибиотиков до того, как пришли к нам, необходимо восстановить реологию крови, в которой возможности развития паразитов, грибков, вирусов, простейших не будет.

Во время лечения больным необходимо отказаться от употребления спиртных напитков, не загорать в солярии, исключить дрожжевые и сладкие продукты, максимально ограничить молочные продукты, не пить газированную и минеральную воду.

Рекомендовано проходить диагностику и лечение всем членам семьи, которые делят быт, так как паразиты быстро передается через постельное белье, общую стирку, полотенца в ванной.

Не откладывайте проблемы со здоровьем, запишитесь на консультацию к паразитологу по номеру:

Порядок обследования

Обследование проходит в четыре этапа:

Выявление нарушений, то есть получение ответа на вопрос, присутствует ли в организме тот или иной вид патологии;
Определение локализации патологии;
Определение характера (этиологии) патологии;
Составление программы коррекции выявленных нарушений консилиумом специалистов (включая тестирование рецепта и препаратов).

Длительность процедуры:

Полное обследование организма занимает в среднем 1 час 20 минут.

Противопоказания к ВРТ

Назначать ВРТ можно практически всем. Исключение составляют только пациенты в следующих ситуациях:

Наличие имплантируемого электрокардиостимулятора старого образца (возможно нарушение в работе аппарата);
Состояние острого психического возбуждения, алкогольное и наркотическое опьянение.

Как подготовиться к обследованию по методу ВРТ

Для получения наиболее достоверных результатов важно:

За неделю прекратить физиопроцедуры (ультразвук, электрофорез, дарсенваль, использование магнитных, стимулирующих устройств и т.д.);
За три дня до тестирования не употреблять алкоголь, предпочитать растительную диету. Пить чистую, бедную минералами негазированную воду из расчёта 30 мл на 1 кг веса в сутки;
За сутки не употреблять кофе, крепкий чай, стимулирующие и уксус содержащие продукты, газированные напитки, не употреблять шоколад, цитрусовые, жевательные резинки, глазированные сырки в шоколаде, яйца;
Препараты, которые были назначены как жизненно важные, следует взять с собой и принять сразу после обследования. Также желательно воздержаться от БАД, гомеопатии, не жизненно важных медикаментов и магнитных украшений.
Максимально возможная двигательная активность;
Не обрезать и не шлифовать кутикулу, не делать маникюр;
За три дня до обследования начать принимать душ дважды в день;
Накануне приёма желательно выспаться и также принять душ. Одежда предпочтительна из натуральных тканей. Тестируемый должен быть комфортно сыт простой едой без стимуляторов, оптимально через 1-1,5 часа после еды;
В день обследования не курить, по возможности не пользоваться косметикой и кремом, избежать контакта с химически активными веществами (лаки, краски, активные крема), не пользоваться феном;
Перед тестированием снять все украшения и металлические предметы, выключить мобильный телефон. Быть готовым при необходимости снять носки.

Лучшее время исследования первая половина дня. Повторное исследование лучше проводить в те же часы, что и первичное.

Выполнение этих рекомендаций позволит наиболее объективно оценить состояние именно вашего организма, а не его искусственно изменённое состояние. Отсутствие макияжа и маникюра позволит доктору увидеть дополнительные диагностические характеристики.

Ограничения метода ВРТ

Всё-таки некоторые ограничения у ВРТ существуют. Узнать размеры патологического образования в сантиметрах и миллиметрах не представляется возможным этим методом, только наличие и природу процесса, поэтому остальные методы обследования организма существенно дополняют общую картину, потому также актуальны.

Разница между БРТ (Биорезонансная диагностика или компьютерная диагностика) и ВРТ (Вегето-резонансное тестирование)

Биорезонансная диагностика проводится с помощью аппаратуры, принцип которой заключается в автоматизированном сканировании состояния здоровья. В начале сеанса Вы заполняете анкету, после вам выдаются наушники, трубки-электроды в руки, затем аппарат начинает сканирование вашего организма, а доктор наблюдает.

Плюсы биорезонансной диагностики:

Быстро;
Дешево;
Создает ложный эффект достоверности диагностики.

Минусы биорезонансной диагностики:

Из-за автоматического сканирования контроля со стороны доктора практически нет;
Слабый уровень достоверности;
Огромное количество некомпетентных людей используют данную методику лишь с целью продажи БАДов зачастую даже не в мед. центрах, а в частных небольших помещениях сомнительного происхождения или личных квартирах.

ВРТ (вегето-резонансное тестирование)

Плюсы ВРТ диагностики:

Высокая подтвержденная достоверность;
Рекомендовано МЗ РФ;
Широкий спектор диагностики способен определить скрытые нарушения, которые не может определить лабораторная и другая диагностика;
Определяет первопричину заболеваний;
Бескровная, возрастных ограничений нет;
Противопоказания практически отсутствуют;
Результаты максимально зависят от знаний специалиста и практического опыта.

Минусы ВРТ диагностики:

Продолжительность по времени от 1 до 2 часов.

Необходимо знать, что ВРТ диагностика – это лишь инструмент и главное в чьих он руках. Далеко не все врачи могут качественно производить диагностику и грамотно использовать полученные данные с аппарата при определении диагноза.

Читайте также: