Резонансно-частотная диагностика вирусов бактерий простейших

Обновлено: 25.04.2024

Каторгин В.С., Готовский Ю.В., Царева Н.П., Мулюкин А.Л.
(Федеральный научный клинико-экспериментальный центр традиционных методов диагностики и лечения МЗ РФ, Центр "ИМЕДИС", Институт микробиологии РАН, г. Москва, Россия)

При анализе, объяснении и применении данных о воздействии сверхслабых электромагнитных полей (ЭМП) на разнообразные биологические системы необходимо учитывать адекватность выбираемых тест-объектов поставленным задачам и методологическим возможностям. Одной из удобных и полезных моделей являются клетки микроорганизмов не только в связи с относительной простотой их культивирования и поддержания в лабораторных условиях, но и в связи с их безусловной значимостью в медицинской практике [3]. Непосредственно для усовершенствования мониторинговых и санитарно-эпидемиологических исследований необходимо учитывать особенности физиологического состояния микробных клеток, тем более что утвердилось представление о пребывании подавляющей части бактериальной популяции в неактивном (покоящемся) состоянии не только в окружающей среде, но и в составе персистирующей микрофлоры человека. Поскольку принятые стандартные микробиологические методы посевов дают весьма неполную информацию о численности микроорганизмов в разнообразных объектах и практически не позволяют оценить их физиологическое состояние in situ, поиск новых диагностических критериев, позволяющих дифференцировать микробные клетки по их физиологическому состоянию, составляет весьма актуальную задачу. В качестве одного из таких дифференцирующих критериев нами предложено рассматривать резонансные частоты, характерные для модельных клеток разного физиологического состояния - активно делящихся и покоящихся [1].

Целью работы послужило выявление различий в частотах, излучаемых микробными клетками разного физиологического статуса, и проверке действия выявленных характеристических частот на развитие микробной популяции. В данной работе в качестве основной модели мы исследовали спорообразующую бактерию Bacillus cereus, для которой хорошо известны формы покоя - эндоспоры и цистоподобные рефрактерные клетки, а также различные колониально-морфологические варианты, образующиеся при высеве суспензий покоящихся клеток на агаризованные питательные среды.

Объекты и методы исследования

В работе использовали грам-положительные спорообразующие бактерии Bacillus cereus шт. 504 (ВКМ), которые культивировали на синтетической питательной среде с 0,4% (об/об) глюкозы, предусматривающей спорообразование. Исследуемые колониально-морфологические варианты - доминантный, прозрачный, микоидный и белый - были ранее выделены и описаны в лаборатории классификации и хранения уникальных микроорганизмов Института микробиологии РАН.

Бактерии выращивали в колбах емкостью 250 мл с 50 мл питательной среды при t = 28?С при встряхивании на качалке (140 об/мин); в качестве инокулята использовали споровую суспензию, который вносили в количестве, дающем оптическую плотность суспензии OD = 0,2. Культуру вегетативных (активно делящихся) клеток отбирали через 7 ч после начала культивирования; суспензию эндоспор бацилл - после 7 суток выращивания.

Оптическую плотность клеточных суспензий определяли на спектрофотометре Specord (Jena, Германия) при длине волны 650 нм в 10-мм кюветах. Микроскопические наблюдения осуществляли при помощи микроскопа Reichart (Австрия) с фазово-контрастным устройством. Жизнеспособность клеток определяли по числу колониеобразующих единиц, образующихся при высеве последовательных децимальных разведений из клеточных суспензий на картофельный агар. Чашки инкубировали в термостате при t = 28?С в течение 3 суток.

Спектры частот, свойственные вегетативным клеткам и эндоспорам Bacillus cereus разных вариантов: доминантного, прозрачного, микоидного и белого, измеряли c помощью вегетативного резонансного тестирования. Специфические резонансные частоты направленного действия генерировались приборами "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ", "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ПК" и аппаратно-программным комплексом "ИМЕДИС-ФОЛЛЬ" и записывались на магнитофонную ленту из стандартной видеокассеты Panasonic VHS Pal Secam E180HDG. Также на ленту записывали резонансные частоты Bacillus cereus из базы по бактериям электронного селектора АПК "ИМЕДИС-ФОЛЛЬ". При изучении действия резонансных частот проверяли 3 варианта формы сигнала: тонизация-стимуляция, торможение-дисперсия и биполярная форма сигнала (меандр) [6].

Для оценки действия ЭМП разного частотного спектра пробирки с 2 мл культуры вегетативных клеток доминантного варианта Bacillus cereus оборачивали магнитофонной лентой, а поверх ленты - плотной бумагой и продолжали культивировать в термостате. В двух контрольных вариантах исследовались пробирки с культурой бацилл, обернутые чистой магнитофонной лентой и плотной бумагой, а также пробирки с культурой без применения магнитной аппликации и продолжали культивировать в тех же условиях.

В первой серии экспериментов при анализе резонансных частот, излучаемых вегетативными клетками и эндоспорами каждого из четырех исследуемых вариантов, были выявлены существенные различия, которые, по-видимому, связаны с особенностями структурной организацией этих клеток и их физиологической активностью (активное размножение и метаболизм у первых и анабиоз - у вторых). С другой стороны, нами обнаружены отличия спектров резонансных частот между вегетативными клетками доминантного, прозрачного, микоидного и белого вариантов, а также соответствующих им эндоспор. Таким образом, предложенный в данной работе подход позволяет достоверно выявлять различия, с одной стороны, между активно растущими и покоящимися клетками, а с другой - между различными вариантами одного и того же вида микроорганизмов. Вполне вероятно, что детекция различий в спектрах резонансных частот, проведенная на разных вариантах бацилл, может использоваться при исследованиях различных серотипов и сероваров патогенных бактерий, например, стафилококков, сальмонелл, микобактерий и др. [1, 2, 5].

Во второй серии экспериментов установлено, что воздействие резонансных частот, характерных для эндоспор каждого из четырех исследованных колониально-морфологических вариантов, вызвало выраженный цитотоксический эффект в отношении активно делящихся (вегетативных) клеток бацилл. Так, через 1 час экспозиции магнитной ленты с перенесенными на нее частотами эндоспор в виде биполярных импульсов, в культурах наблюдался рост-ингибирующий эффект, о котором судили по снижению числа делящихся клеток и появлению признаков деструкции (лизиса и дефрагментации цитоплазмы) части популяции, по сравнению с контрольным вариантом. Через 24 часа воздействия ЭМП, доля клеток с явными признаками цитотоксического эффекта составила 30-40%; при этом отсутствовали проспоры, что свидетельствовало о торможении роста и развития популяции бацилл. В суспензиях, подвергнутых действию резонансных частот в течение 5-7 суток, не обнаруживалось спор, а число лизированных клеток составляло ~ 70-90%. О цитотоксическом эффекте и обусловленной им задержке роста и развития вегетативных клеток бацилл свидетельствовала низкая величина оптической плотности клеточных суспензий (OD = 0,3-0,4). В контрольном варианте OD = 2,5-2,7.

Окончательное доказательство наличия цитотоксического эффекта было получено при оценке жизнеспособности клеток по числу колониеобразующих единиц (КОЕ), образующихся при высеве разведенных клеточных суспензий на плотные питательные среды. Так, число КОЕ в суспензиях, подвергнутых действию резонансных частот, и в которых цитотоксический эффект (по данным микроскопических наблюдений) был наиболее выражен, составило 10?-104 единиц/мл, что на 3-4 порядка ниже, чем в контрольном варианте.

Следует отметить, что степень цитотоксического эффекта зависела от формы сигнала и дипазона применяемых частот. Уже в первой серии экспериментов 1999-2000 гг., по воздействию на бактериальные клетки переменного ЭМП нами было установлено, что наиболее выраженным был рост-ингибирующий и микробоцидный эффект при направленном воздействии на культуру клеток биполярного сигнала в форме меандра [1]. Этот эффект наблюдался как в опытах с непосредственным электромагнитным воздействием на культуры клеток через устройства для магнитной терапии "петля" или "индуктор", так и в данных опытах с экспозицией сверхслабого ЭМП, излучаемого магнитной лентой. Не менее эффективным оказалось цитотоксическое и бактерицидное действие записанных на пленку частот в форме меандра Bacillus cereus из базы по бактериям электронного селектора АПК "ИМЕДИС-ФОЛЛЬ" [5, 6]. Те же частоты с прямоугольной монополярной формой (как положительной, так и отрицательной полярности) оказали незначительное кратковременное тормозящее действие на подвижность и скорость деления клеток. При дальнейшей экспозиции ЭМП в термостате активность клеток полностью восстанавливалась. Надо отметить, что некоторое кратковременное замедляющее действие наблюдалось и при экспозиции чистой магнитофонной ленты, по сравнению с контролем без аппликации, но оно было намного слабее, чем в опытах с записью частот на пленку. Видимо, даже размагниченная магнитофонная лента создает вокруг себя крайне слабое постоянное магнитное поле, способное, тем не менее, влиять на подвижность таких малых объектов, как бактерии.

В ряде случаев нами отмечено, что сужение диапазона частот в спектре, характерном для эндоспор бацилл микоидного варианта, усиливало цитотоксический эффект, что, по-видимому, связано с селективностью действия дискретных частот на биомишень.

Таким образом, полученные в этой серии экспериментов данные предполагают перспективность исследований по воздействию слабых и сверхслабых ЭМП при разработке новых подходов к стерилизации и деконтаминации различных объектов. Выявление характеристик электромагнитного излучения, специфических для микроорганизмов разных таксономических и физиологических групп, представляет определенный практический интерес, так как может отражать различия в состоянии микробных клеток в ряду: активно делящиеся - стационарные - покоящиеся. В дальнейшем это может послужить базой для мониторинговых исследований и расширить наши возможности в резонансно-частотной диагностике и терапии бактериальных, вирусных, грибковых и других инфекционных заболеваний [4, 5]. Эти модельные эксперименты позволят во многом уточнить механизм действия методов резонансно-частотной терапии, которые, в настоящее время все шире начинают использоваться в разных областях медицины.

1. Готовский Ю.В., Каторгин В.С. и др. Предварительные данные о воздействии резонансных частот электромагнитного поля на бактериальные клетки // В сб.: Тезисы и доклады VI Международной конференции "Теоретические и клинические аспекты применения биорезонансной и мультирезонансной терапии", часть I. - М.: ИМЕДИС, 2000. - С. 21-23.
2. Готовский Ю.В., Косарева Л.Б. Резонансно-частотный механизм действия электромагнитных излучений на биологические объекты. // В кн.: Традиционная медицина - 2000. Сборник материалов конгресса (г. Элиста; 27-29 сент. 2000 г.). - М.: НПЦ ТМГ МЗ РФ, 2000. - С. 496-497.
3. Пирцхалава Т.Г. Моделирование феномена электропунктурного тестирования медикаментов в системах in vitro // В сб.: Тезисы и доклады VI Международной конференции "Теоретические и клинические аспекты применения биорезонансной и мультирезонансной терапии", часть I. - М.: ИМЕДИС, 2000. - С. 16-21.
4. Готовский Ю.В., Косарева Л.Б., Фролова Л.А., Перов Ю.Ф. Грибковые инфекции. Диагностика и терапия: Методическое пособие. 2-е изд. - М.: ИМЕДИС, 2001. - 128 с.
5. Готовский Ю.В., Косарева Л.Б., Фролова Л.А. Резонансно-частотная диагностика и терапия грибков, вирусов, бактерий, простейших и гельминтов: Методические рекомендации. 3-е изд. - М.: ИМЕДИС, 2000. - 70 с.
6. Готовский Ю.В., Косарева Л.Б., Блинков И.Л., Самохин А.В. Экзогенная биорезонансная терапия фиксированными частотами: Методические рекомендации. - М.: ИМЕДИС, 2000. - 96 с.

Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания

Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания и гельминтозы. Экспертная оценка ВОЗ свидетельствует, что более 4,5 млрд человек в мире поражено возбудителями этой группы болезней [1]. Из них 2 млрд человек инфицированы Ascaris lumbricoides [2]. Ежегодно в мире аскаридозом заражаются около 650 млн человек, энтеробиозом — 460 млн [3]. По оценкам специалистов, ежегодно число заболевающих паразитарными болезнями в России превышает 20 млн человек и имеет тенденцию к увеличению [4]. По мнению ряда авторов, в последнее время под воздействием различных факторов происходит изменение картины паразитарных заболеваний, проявляющееся в неспецифичности проявлений глистно-протозойных инвазий у детей [5], в бессимптомном течении паразитарных заболеваний [6, 7, 8], в формировании у паразитов клеточных структур, способных изменять иммунный ответ хозяина на присутствие в организме паразита [9, 10, 11]. Особенностью большинства паразитарных болезней является хроническое течение, не сопровождающееся развитием острых симптомов.

Из числа протозойных инвазий наиболее массовой является лямблиоз. До сих пор проблемой является разработка эффективных лечебных мероприятий в отношении хронически рецидивирующего лямблиоза у детей. Устойчивость к противопаразитарным препаратам может быть обусловлена антигенными различиями видов лямблий с разной восприимчивостью к разным противопаразитарным препаратам [12, 13]. Наиболее массовыми гельминтозами в России являются нематодозы, возбудителями которых служат круглые гельминты: острицы, аскариды и др. [14]. Одной из актуальных задач в борьбе с паразитарными инвазиями на сегодняшний день является разработка эффективных, безопасных, недорогих методов лечения гельминтно-протозойной инвазии у детей. Лечение паразитарных инвазий эффективно при проведении комплексного подхода под контролем исследования кала, т. к. целью лечения является эрадикация паразита из кишечника [15, 16, 17]. Однако применение медикаментов широкого спектра действия не обеспечивает полного излечения при однократном курсе терапии и у ряда больных вызывает побочные эффекты аллергического, диспепсического и неврологического характера.

Учитывая сложности в диагностике паразитарных инвазий у детей, актуальной является проблема поиска новых, чувствительных, экономически эффективных и доступных методов диагностики. Полимеразная цепная реакция [ПЦР] [18, 19] нашла широкую область применения в паразитологии, ДНК-технологии имеют большое значение во многих областях паразитологии включая идентификацию и систематизацию паразитов, анализ генетической структуры, генной организации, изучение лекарственной устойчивости [20, 21, 22]). Метод ПЦР позволяет прямо обнаружить инфекционный агент или генетическую мутацию в любой биологической среде организма (слюна, мокрота, кровь, моча, кал).

Современные взгляды зарубежных и отечественных ученых на взаимоотношения паразит–хозяин с позиции колебательных и волновых процессов, присущих всем живым организмам, позволили разработать новый подход к диагностике различных заболеваний, в том числе и паразитарных. Одним из таких методов является вегетативный резонансный тест (ВРТ), позволяющий определить наличие паразитов в организме человека на разных стадиях развития: яйца, личинки, взрослых особей. Маркерами для диагностики являются резонансные электромагнитные частоты, характеризующие индивидуальный спектр электромагнитного излучения паразитов [23, 24]. Метод является гигиеническим, неинвазивным, безболезненным, что особенно важно для детей. ВРТ официально разрешен и рекомендован к медицинскому применению Министерством здравоохранения Российской Федерации (Методические рекомендации № 98/232, 99/96, 2000/74) [25].

Цель нашего исследования — совершенствование диагностики и лечения паразитозов у детей на современном этапе.

Материалы и методы исследования

В основу работы положены результаты обследования 540 детей в возрасте от 2 месяцев до 17 лет с различными гастродуоденальными заболеваниями: хроническим гастродуоденитом (53,5%), функциональным расстройством желудка (8,2%), дискинезиями желчевыводящих путей (30%). Среди сопутствующих заболеваний были диагностированы: аномалии желчного пузыря (4,8%), аллергические заболевания (10%), последствия перинатальной патологии ЦНС (7,7%), хронический иерсиниоз (1,8%), заболевания ЛОР-органов (1,8%).

Для постановки диагноза использовался тщательный сбор анамнеза, анализ жалоб, объективный осмотр, проведение необходимых лабораторных и инструментальных исследований (копроовоскопический метод диагностики, исследование кала с консервантом Барроуза, ПЦР-диагностика кала, вегетативно-резонансное тестирование).

Результаты исследования и их обсуждение

По возрасту дети были распределены на четыре группы: группа I — дети от 2 месяцев до 3 лет, группа II — от 3 до 7 лет, группа III — от 7 до 12 лет, группа IV — от 12 до 17 лет. Кроме того, в зависимости от наличия или отсутствия подтвержденной гельминтно-протозойной инвазии каждая группа была разделена на две подгруппы: А — без паразитарной инвазии, В — с подтвержденной паразитарной инвазией.

Среди обследованных детей преобладали жалобы на отрыжку, тошноту, рвоту, снижение аппетита, боли в животе в околопупочной области, неустойчивый стул (табл. 1).

Обследованные дети с подтвержденной паразитарной инвазией имели три вида моноинвазий (лямблиоз, аскаридоз, энтеробиоз) и четыре вида сочетанной глистно-протозойной инвазии (лямблиоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз, аскаридоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз). Характеристика жалоб и объективного осмотра детей в зависимости от вида паразитарной инвазии представлена в табл. 3. Как видно из таблицы, лишь головная боль и болезненность в околопупочной области при объективном осмотре достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами инвазий. Кроме того, нарушение сна достоверно (р < 0,05) чаще отмечалось у детей с моноинвазией аскаридами, а боли в околопупочной области достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами глистно-протозойной инвазии. Различия между группами паразитарных инвазий в преобладании тех или иных диспептических жалоб не достигали уровня значимости.

В нашем исследовании мы изучали диагностическую значимость различных методов диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей.

При диагностике лямблиоза при копроовоскопии 540 мазков цисты лямблий были обнаружены менее чем в 1% случаев. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей. Методом ПЦР кала лямблии были обнаружены у 28,83% обследованных детей. Методом ВРТ обследованы 136 детей, лямблии обнаружены у 31,62% детей (рис. 1).

Наиболее ценным диагностическим методом при исследовании на лямблиоз оказался метод исследования кала с консервантом Барроуза, данный метод был принят нами в качестве стандарта. Диагностические характеристики других методов диагностики определяли относительно стандарта с помощью четырехпольной таблицы. Для оценки эффективности диагностических тестов рассчитывали следующие показатели: чувствительность (Se), специфичность (Sp), точность (test eff.), прогностическая ценность отрицательного результата теста (–PV), прогностическая ценность положительного результата теста (+PV).

Как известно, от значений чувствительности и специфичности зависит прогностическая ценность (посттестовая вероятность) положительного и отрицательного результатов теста. Чем чувствительнее тест, тем выше прогностическая ценность его отрицательного результата (т. е. возрастает уверенность врача в том, что отрицательные результаты теста отвергают наличие заболевания). Чем специфичнее тест, тем выше прогностическая ценность его положительного результата (то есть врач может с большей уверенностью считать, что положительные результаты теста подтверждают предполагаемый диагноз).

Как видно из табл. 3, методы ПЦР и ВРТ обладают хорошими диагностическими показателями и высокими показателями точности теста (для ПЦР — 82,42%, для ВРТ — 69,92%). Копроскопический метод диагностики характеризовался чрезвычайно низкими диагностическими показателями (все показатели менее 1%), что ставит под сомнение целесообразность его использования для диагностики лямблиоза у детей.

При диагностике аскаридоза мы исследовали кал на яйца глист микроскопическим методом у 540 детей, аскариды обнаружены в 2,04% исследований. Методом ПЦР кала обследовано 434 ребенка, аскариды обнаружены у 1,15% детей, а методом ВРТ обследовано 135 детей, аскариды обнаружены у 7,14% детей (рис. 2).

В качестве стандарта в диагностике аскаридоза в нашем исследовании использовали ПЦР-диагностику кала.

Как известно, не существует абсолютно чувствительных и абсолютно специфичных тестов. Стопроцентные показатели получены, вероятно, из-за того, что в исследовании принимало участие относительно небольшое количество инфицированных аскаридами пациентов (табл. 4). Вероятно, с этим связаны и низкие показатели прогностической ценности положительного результата теста (12,5%). Тем не менее, полученные нами данные позволяют сделать вывод о высокой информативности ВРТ-диагностики аскаридоза у детей (чувствительность теста — 100%, специфичность — 93,96%). При оценке диагностических показателей копроскопического метода диагностики все показатели оказались менее 1%, что не позволяет рекомендовать копроскопический метод для диагностики аскаридоза у детей.

При диагностике энтеробиоза проводились однократные соскобы у 540 детей, острицы диагностированы у 0,2% детей. При исследовании кала на яйца глист у всех обследованных детей, острицы были обнаружены также у 0,2% детей. При проведении ПЦР-диагностики кала у 434 пациентов, острицы обнаружены у 9,68% детей, при вегетативно-резонансном тестировании (обследовано 135 детей) — у 12,59% (рис. 3).

В нашем исследовании стандартом в диагностике энтеробиоза являлась ПЦР-диагностика кала.

Как видно из табл. 5, копроскопический метод диагностики энтеробиоза и однократные соскобы на энтеробиоз не имеют диагностической значимости в диагностике энтеробиоза у детей. Вместе с тем метод ВРТ обладает высокой специфичностью (93,2%) и точностью теста (88,88%) в диагностике энтеробиоза.

При лечении лямблиоза процент успешной эрадикации паразита при использовании метронидазола (20 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) составил 58%, макмирора (15 мг/кг/сут в 2 приема 10 дней) — 53%, албендазола (200 мг/сут в 2 приема 7 дней) — 50%, фуразолидона (10 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) — 20%.

При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей были назначены биорезонансные препараты (Танаксол с Пара-уолнат-плас или инверсионный нозод лямблий — предварительно протестированные гомеопатические препараты) с положительным эффектом. Эрадикация простейших при использовании Танаксола с Пара-уолнат-плас оказалась успешной в 47,5% случаев. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза инверсионным нозодом лямблий эффективность терапии была еще выше и составила 71,95% (различия между эффективностью данных методов лечения были достоверными (p < 0,01%)).

При лечении аскаридоза — у 4 детей применялся Вермокс (мебендазол) (для детей от 2 до 10 лет 0,05 г/сут в 3 приема, детям старше 10 лет — 0,1 г в сутки в 3 приема во время еды. Курс лечения 3 дня), у 1 ребенка — Пирантел (12,5 мг/кг однократно), при лечении энтеробиоза 22 ребенка получали Вермокс, 20 детей — Пирантел. Данные препараты оказались эффективными у всех детей с нематодозами. Пациенты с сочетанной паразитарной инвазией получали терапию препаратом Немозол (альбендазол) в случае сочетанной гельминтно-протозойной инвазии (лямблиоз/аскаридоз, лямблиоз/энтеробиоз) в дозе 15 мг/кг/сут в 1 прием 10 дней; при сочетанной инвазии аскаридоз/энтеробиоз Немозол назначался в дозе 400 мг внутрь однократно.

Выводы

Для детей с паразитарной инвазией наиболее характерными клиническими проявлениями являются жалобы на тошноту и боли в околопупочной области. Головная боль и болезненность в околопупочной области достоверно более характерны для детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз. Нарушение сна достоверно чаще отмечается у детей с моноинвазией аскаридозом, а боли в околопупочной области — у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз.

Число эозинофилов в периферической крови у обследованных детей во всех возрастных группах было в пределах нормы и существенно не отличалось у детей с подтвержденной гельминтно-протозойной инвазией и у детей без паразитарной инвазии.

Метод копроовоскопии без использования консерванта для диагностики лямблиоза малоинформативен, что не позволяет использовать его в широкой практике. Наиболее информативными в диагностике лямблиоза оказались метод исследования кала с консервантом Барроуза и метод ВРТ. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей, методом ВРТ лямблии обнаружены у 31,62% детей.

ВРТ является неинвазивным, высокоинформативным, удобным и недорогим методом диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей. В диагностике энтеробиоза и аскаридоза метод ВРТ имел высокую диагностическую значимость наряду с методом ПЦР.

Стандартное медикаментозное лечение лямблиоза было эффективным лишь у 20–58% детей. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей максимальной эффективностью обладал инверсионный нозод лямблий (71,95%).

Литература

Savioli L., Gabrielli A. F., Ramsan M. et al. Soil-transmitted helminths and haemoglobin status among Afghan children in World Food Programme assisted schools // J. Helminthol. 2005. Vol. 79 (4). P. 381–384.

Chan M. S. The global burden of intestinal nematode infections — fifty years on // Parasitol. Today 1997. Vol. 13 (11). P. 438–443.

Онищенко Г. Г. О мерах по усилению профилактики паразитарных болезней в России // Медицинская паразитология. 2003. № 3. С. 3–7.

Озерецовская Н. Н., Зальнова Н. С., Тумольская Н. И. Клиника и лечение гельминтозов. М.: Медицина.1985. 183 с.

Horowicz M., Korman S., Shapiro M. et al. Asymptomatic Giardiasis in children // Pediatr. Inf. Dis. 1989. Vol. 87. P. 733–779.

Morrow A. L., Reves R. R., West M. S. et al. Protection against infection with Giardia lamblia by breast-feeding in a cohort of Mexican infants // J. Pediatr. 1992. Vol. 121. P. 363–370.

Pickering L. K., Engelkirk P. G. Giardia lamblia // Pediatr. Clin. Nort. Am. 1988. Vol. 35. P. 565–577.

Kulakova L., Singer S. M., Conrad J., Nach T. E. Epigenetic mechanisms are involved in the control of Giardia lamblia antigenic variation // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 61 (6). 1533–1542.

Nash T. E. Antigenic variation in Giardia lamblia and the host’s immune response // Philos. Trans. R. Soc. London Ser. B. 1997. Vol. 352. P. 1369–1375.

Sun C. H., McCaffery J. M., Reiner D. S., Gillin F. D. Mining the Giardia lamblia genome for new cyst wall proteins // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278 (24). P. 21701–21708.

Carnaby S., Ketelaris P. H., Neem A., Farthing M. J. G. Genotypic heterogeneity within Giardia lamblia isolates demonstrated by M13 DNA fingerprinting // Infect. Immun. 1994. Vol. 62. P. 1875–1880.

Majewska A. C., Kasprzak W., De Jonckheere J. F., Kaczmarek E. Heterogeneity in the sensitivity of stocks and clones of Giardia to metronidazole and ornidazole // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1991. Vol. 85. P. 67–69.

Тимченко В. Н., Леванович В. В., Абдукаева Н. С., Васильев В. В., Михайлов И. Б. Паразитарные инвазии в практике детского врача. СПб. ЭЛБИ 2005. С. 60–68.

Озерецовская Н. Н. Современные проблемы терапии гельминтозов // Мед. паразитология. 1975. 33. С. 271–276.

Lohiya G. S., Tan-Figueroa L. et al. Epidemiology and control of enterobiasis in a developmental center // West. J. Med. 2000. Vol. 172 (5). P. 305–308.

Saiki R. K., Scharf S., Faloona F., Mullis K. B. et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia // Science. 1985. Vol. 230 (4732). P. 1350–1354.

Mullis K., Faloona F., Scharf S. et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction // Cold. Spring. Harb. Symp. Quant. Biol. 1986. Vol. 51. P. 263–273.

Zhu X., Chilton N. B., Jacobs D. E. et al. Characterisation of Ascaris from human and pig hosts by nuclear ribosomal DNA sequences // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (3). P. 469–478.

Gasser R. B., Rossi L., Zhu X. Identification of Nematodirus species (Nematoda: Molineidae) from wild ruminants in Italy using ribosomal DNA markers // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (11). P. 1809–1817.

Zhang L., Gasser R. B., Zhu X., McManus D. P. Screening for different genotypes of Echinococcus granulosus within China and Argentina by single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1999. Vol. 93 (3). P. 329–334.

Электропунктурный вегетативный резонансный тест. Под ред. А. М. Василенко, Ю. В. Готовскиго, Е. Е. Мейзерова, Н. А. Королевой, В. С. Каторгина. Метод. реком. № 99/96. М.: МЗ РФ, ИПЦ ТМГФ, 2000. 27 с.

В. А. Александрова, доктор медицинских наук, профессор
В. Е. Одинцева

СПб МАПО, Санкт-Петербург

4. ИНДУКЦИОННАЯ ТЕРАПИЯ ЧАСТОТАМИ ТОКОВ МОЗГА

Организм человека является открытой кибернетической сис­темой регулирования, которая постоянно подвергается обмену информацией с внешней средой. Это означает, что регулирование смещенных частотных спектров позволяет лечить не только пси­хические, но и физические расстройства. Таким образом, индук­ция (наведение) - это лишь стимул к выравниванию заданных, но нарушенных функциональных ритмов.

Вытекающий отсюда обу­чающий эффект, связанный с таламусом, предоставляет собой определенный признак индукционной терапии, так как он делает излишним применение внешних раздражений, инородных по от­ношению к системе. В классическом смысле функциональной ме­дицины организму предлагается помощь в стимулировании са­морегуляции. Далее он становится способным лечить себя своими собственными средствами. Индукционная терапия реализуется с помощью электрических или магнитных воздействий, подводи­мых с помощью электродов или индукторов.

• программа №1. Альфа-ритмы;

• программа №2. Бета-ритмы;

• программа №3. Тета-ритмы;

• программа №4. Дельта-ритмы;

• программа №5. Программа покоя;

• программа №6. Программа сна I;

• программа №7. Детская программа;

• программа №8. Программа стресса I;

• программа №9. Программа стресса II;

• программа №10. Программа стресса III;

• программа №11. Программа стресса IV;

• программа №“12. Программа депрессии I;

• программа №13. Программа депрессии II;

• программа №“14. Программа депрессии III;

• программа №“15. Церебральная программа;

• программа №“16. Программа обучения;

• программа №“17. Программа запоминания;

• программа №“18. Программа сна II;

• программа №“20. Программа мышечной релаксации;

• программа №“21. Программа прояснения разума;

• программа №“22. Программа волн Шумана;

• программа №“23. Программа управления состоянием соз­нания;

• программа №“24. Программа развития творческих способ­ностей;

• программа №“25. Программа ситуационного моделирова­ния;

• программа №“26. Программа развития созерцательности;

• программа №27. Программа развития деловых способностей;

• программа №28. Программа преодоления своего страха;

• программа №30. Программы развития самоуважения;

• программа №31. Энергизирующая программа;

• программа №32. Спортивная программа;

• программа №33 Событийное регулирование 1;

• программа №34 Событийное регулирование 2;

• программа №35 Увеличение ресурсов адаптации 1;

• программа №36 Увеличение ресурсов адаптации 2;

• программа №37 Увеличение ресурсов нейрогуморальной регуляции;

• программа №38 Сексуальная регуляция 1;

• программа №39 Сексуальная регуляция 2;

• программа №40 Увеличение ресурсов иммунной адапта­ции 1;

• программа №41 Увеличение ресурсов иммунной адапта­ции 2;

• программа №42 Увеличение ресурсов адаптации селезен­ки и ретикулоэндотелиальной формации;

• программа №43 Увеличение ресурсов адаптации произ­вольного движения 1;

• программа №44 Увеличение ресурсов адаптации произ­вольного движения 2;

• программа №45 Увеличение ресурсов адаптивной деятель­ности;

• программа №46 Увеличение ресурсов адаптации чакр, при сублимации жизненной энергии;

• программа №47 Увеличение ресурсов адаптации чакр, при ресублимации жизненной энергии;

• программа №48 Увеличение ресурсов адаптации опорно­двигательного аппарата;

• программа №49 Увеличение ресурсов адаптации крови;

• программа №50 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 1;

• программа №51 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 2;

• программа №52 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 3;

• программа №53 Увеличение ресурсов адаптации мышеч­ной системы;

• программа №54 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани и тимуса 1;

• программа №55 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани и тимуса 2;

• программа №56 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 1;

• программа №57 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 2;

• программа №58 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 3;

• программа №59 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 4;

• программа №60 Увеличение ресурсов адаптации тимуса, гипофиза и нервной ткани 24;

• программа №61 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани;

• программа №62 Регуляция сексуальной энергии 1;

• программа N“63 Регуляция сексуальной энергии 2;

• программа №64 Регуляция сексуальной энергии 3;

• программа №65 Регуляция сексуальной энергии 4;

• программа №66 Регуляция сексуальной энергии 5;

• программа №67 Регуляция сексуальной энергии 6;

• программа №68 Регулирование сна;

• программа №69 Хроносемантическая функциональ Солн­ца 1;

• программа №70 Хроносемантическая функциональ Солн­ца 2;

• программа №71 Хроносемантическая функциональ Луны;

• программа №72 Хроносемантическая функциональ Мер­курия 1;

• программа №73 Хроносемантическая функциональ Мер­курия 2;

• программа №74 Хроносемантическая функциональ Вене­ры 1;

• программа №75 Хроносемантическая функциональ Вене­ры 2;

• программа №76 Хроносемантическая функциональ Вене­ры 3;

• программа №77 Хроносемантическая функциональ Марса 1;

• программа №78 Хроносемантическая функциональ Марса 2;

• программа №79 Хроносемантическая функциональ Юпи­тера 1;

• программа №80 Хроносемантическая функциональ Юпи­тера 2;

• программа №81 Хроносемантическая функциональ Сатурна;

• программа №82 Хроносемантическая функциональ Урана;

• программа №83 Хроносемантическая функциональ Непту­на 1;

• программа №84 Хроносемантическая функциональ Непту­на 2;

• программа N“85 Хроносемантическая функциональ Плу­тона 1;

• программа Ns86 Хроносемантическая функциональ Плу­тона 2;

• программа №87 Хроносемантическая функциональ Плу­тона 3.

5. ЭЛЕКТРОННО-ИОННАЯ РЕФЛЕКСОТЕРАПИЯ

Электронно-ионная рефлексотерапия (ЭИРТ) - разновидность электропунктурной терапии, разработанной одним из ведущих оте­чественных рефлексотерапевтов Ф.Г.Портновым [11].

В отличие от зарубежных методов ЭАТ, при данном способе используется дозированный, постоянный гальванический ток, а также введение лекарственных средств в БАТ с помощью микро­электрофореза.

Ток срабатывания системы светодиодной индикации поиска БАТ в аппаратах ЭЛАП составляет 10-25 мкА, а ток лечения 0- 500 мкА при напряжении 9 В. Сила тока лечебного воздействия подбирается в зависимости от места локализации БАТ. Так, для

БАТ, расположенных под массивным мышечным слоем, напри­мер, в ягодичной области, рекомендуется использовать величины тока порядка 350-500 мкА; для БАТ, локализованных в области спины, пояснично-крестцовой области и нижних конечностей - 250-350 мкА, в области груди и живота - 75-100 мкА, в области ушной раковины и лица - 25-50 мкА.

Для тормозного воздействия (седирования) на БАТ рекомен­дуется использовать электрический ток положительной полярности (30-120 сек на каждую БАТ), а для стимулирующего - ток отри-

Лекарственные препараты для электрофореза, Таблица 19 вводимые с отрицательного полюса - катода

Ион или частица лекарственного вещества Концентрация раствора, %
Адреналин 0,10
Акрихин 1,00
Амидопирин от 1,00 до 3,00
Аминазин от 0,50 до 1,00
Антипирин от 1,00 до 5,00
Атропин 0,10
Ацетилхолин 0,10-0,50 ex temporae
Барбамил от 2,00 до 5,00
Бензогексоний от 1,00 до 2,00
Витамин В1 от 1,00 до 5,00
Галантамин от 0.25 до 0,50
Ганглерон от 0,20 до 0,50
Гексоний 1,00
Гистамин 0,01
Дибазол от 0,50 до 2,00
Дикаин от 0,50 до 1,00
Димедрол от 0,50 до 2,00
Дионин от 0,10 до 1,00
Дипразин 1,00
Кальция хлорид (Кальций) от 1,00 до 5,00
Калия хлорид, бромид (Калий) от 1,00 до 5,00
Карбохолин 1,00
Кодеин от 0,10 до 0,50
Лития хлорид (Литий) от 1,00 до 5,00
Лидокаин от 0,25 до 0,50
Лобелии 1,00
Магния сульфат (Магний) от 2,00 до 10,00
Меди сульфат (Медь) от 0,50 до 2,00
Мезатон 1,00
Натрия хлорид (Натрий) от 1,00 до 5,00
Новокаин от 0,50 до 5,00
Но-шпа 1,00

Таблица 19 (продолжение)

Ион или частица лекарственного вещества Концентрация раствора, %
Папаверин от 0,50 до 1,00
Пахикарпин 1,00
Пентамин 5,00
Пилокарпин от 0,10 до 0,50
Пирилен от 0,10 до 0,50
Платифиллин от 0,03 до 0,05
Прозерпин 0,10
Резерпин 0,10
Серебра нитрат (Серебро) от 0,50 до 1,00
Совкаин от 0,50 до 1,00
Стрихнин 0,10
Строфантин 0,05
Тримекаин от 0,25 до 0,50
Фенамин 0,20
Фенобарбитал от 1,00 до 2,00
Физостигмин 0,10
Хинин от 1,00 до 4,00
Цинка сульфат (Цинк) от 0,50 до 2,00
Эфедрин от 0,10 до 1,00

цательной полярности или гальванический ток с изменяющейся полярностью в течение каждых 5-10 с.

С целью усиления лечебного эффекта в ЭИРТ используется введение лекарственных средств в БАТ с помощью микроэлек­трофореза. Для его осуществления на активный электрод аппа­рата одевается специальная насадка, внутрь которой помещается гигроскопическая вата, смоченная соответствующим лекарствен­ным средством.

Согласно исследованиям Ф.Г.Портнова, при электрофорезе происходит депонирование лекарственных средств в области БАТ с последующим тормозным или возбуждающим воздействием на периферические рефлекторные элементы и взаимосвязанные с ни­ми органы и тканевые системы.

По мнению автора, данный способ введения лекарственных веществ не имеет побочных эффектов и способствует их более дли­тельному действию, составляющему: для гепарина 1-2 суток; пе­нициллина - 2; пилокарпина - 3; новокаина - 3-6; адреналина - до 20 суток.

Более чем 20-летний опыт клинического применения ЭИРТ показал его высокую эффективность в лечении болевых синдро­мов при остеохондрозе позвоночника, бронхиальной астме, аллер­гической риносинусопатии, ринофарингитах, заболеваниях паро- донта, нейроциркуляторной дистонии, патологии зрительного ап­парата и др.

Аурикулотерапия, осуществляемая с помощью воздействия на биологически активные точки ушной раковины электрическими и световыми сигналами с определенной частотой следования, а так­же постоянным магнитным полем, способна оказывать выражен­ный лечебный эффект при различных формах патологии.

Основоположником аурикулотерапии является П. Ножье, об­наруживший на ушной раковине 7 рефлексогенных зон, на кото­рых проявляется одинаковая реакция к стимулу определенной частоты.

В качестве воздействующего сигнала автором использовался источник электрического тока и некогерентного светового излуче­ния (красный светодиод), который модулировался с частотой от 1 до 200 Гц.

По степени изменения пульсовой волны на лучевой артерии при той или иной частоте электро- или фотостимуляции на определен­ные аурикулярные БАТ были установлены следующие резонансные частоты для различных отделов ушной раковины: зона А (подкозелковая зона) - 2,28 Гц;

зона Б (полость ушной раковины) - 4,56 Гц;


зона В (верхняя часть ушной рако­вины) - 9,125 Гц;

зона Г (задняя часть завитка) - 18,25 Гц;

зона Д (внешняя часть козелка) - 36,5 Гц;

зона Е (задняя часть мочки уха) - 7,3 Гц;

зона Ж (передняя часть мочки уха) - 146 Гц.

Следует отметить, что анало­гичные рефлекторные зоны с раз­личными резонансными реакциями на электро- и фотостимуляцию так­же были обнаружены на коже головы,

Например, кожа лба - 146 Гц; волосистая часть головы и за­тылка - 18,25 Гц; верхние и нижние конечности - 9,125 Гц; по­лость рта, мочеиспускательный канал, влагалище, анус, проекция переднего срединного меридиана - 2,28 Гц.

С целью определения диагностической ценности метода вегето – резонансного тестирования в амбулаторной практике у детей с патологией ЛОР органов проведен анализ результатов исследования 84 детей с ЛОР- патологией, в частности с острыми и хроническими синуситами, методом вегето – резонансного тестирования (ВРТ) в сравнении со стандартным объемом исследований в городской детской поликлинике. Результаты ВРТ показали, что острые синуситы в 10 случаях были вирусной этиологии: респираторно–синтициальный вирус – 4 случая, вирус герпеса – 3 случаях, аденовирус – 2, вируса ринопневмонии – 1 случай. Бактериальные причины острого синусита встречались чаще: Str. pyogenes в 6 случаях, Str. pneumonia и S. aureus – по 2 случая, S. coagulopositivus – в 1 случае, анаэробные возбудители – в 3 случаях. При хронической патологии на слизистой носа и в пазухах у детей часто тестируется полифлора, в сочетании с грибами. Микробная инфекция представлена: Str. haemolyticus 13 (28,9 %), Str. viridans 12 (26,7 %), S. aureus 8 (17,8 %), анаэробная инфекция 6 (13,3 %), Str. pneumonia 5 (11,1 %), Ps. aeurigenosa 1 (2,2 %). Возбудителями хронических грибковых синуситов были Сandida albicans 5 (50 %), Aspergilus niger 4 (40 %), Mucor mucedo 1 (10 %). Обследование показало высокую скорость получения результатов тестирования, хорошую переносимость метода пациентами, высокую информативность метода, что в некоторых случаях позволило избежать врачебной ошибки, как в диагностике, так и в лечении маленьких пациентов.


1. Готовский Ю.В. Резонансно – частотная диагностика и терапия грибков, вирусов, бактерий, простейших и гельминтов: Методические рекомендации (Дополнение) / Ю.В. Готовский, Л.Б. Косарева, Л.А. Фролова. – М.: ИМЕДИС, 2000. – 22 с.

2. Драчук А.И. Роль микробной флоры при ультразвуковой терапии воспалительных заболеваний уха / А.И. Драчук, К.И. Нестерова // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. – 1999. – № 1. – С. 39–40.

3. Надей Е.В. Использование ингаляционных провокационных тестов для определения риска развития бронхиальной астмы у больных с аллергическим ринитом / Е.В. Надей, В.И. Совалкин, К.И. Нестерова //Рос. ринология. – 2007. – № 2. – С. 20a-21.

4. Нестерова К.И. Анализ влияния метода лечения аденоидита на микробиоценоз носоглотки у детей / К.И. Нестерова, А.А. Нестерова // Вестник оториноларингологии. – 2015. – № 4. – С. 77–80.

5. Нестерова К.И. Анализ клинико-анатомических предпосылок формирования хронической инфекции верхних дыхательных путей на основе принципов современной многомерной статистики К.И. Нестерова // Российская оториноларингологии. – 2012. – № 5. – С. 95–101.

7. Нестерова К.И. Метод низкочастотной ультразвуковой интерферонопрофилактики ОРВИ у спортсменов / К.И. Нестерова, Т.А. Бакшеева, В.С. Венедиктов //Теория и практика физической культуры. – 2000. – № 1. – С. 47–48.

9. Роль изучения факторов местного иммунитета при патологии дыхательных путей/ В.И. Совалкин, Е.И. Алтынова, К.И. Нестерова и др. // Фунд. исследования. – 2011. – № 10-1. – С. 151–154.

10. Самохин А.В., Готовский Ю.В. Электропунктурная диагностика и терапия по методу Р. Фолля. 6-е изд. – М.: ИМЕДИС, 2012. – 480 с.

В детском возрасте в структуре заболеваний верхних дыхательных путей острые и хронические синуситы встречаются достаточно часто, от 18 – 30 % до 38 – 42 % по мнению разных авторов [4, 5, 8]. При этом предрасполагающими факторами формирования риносинуситов могут являться как эндогенные, так и экзогенные причины [1, 3, 5, 7, 9].

Основными методами диагностики синуситов в условиях городской поликлиники остаются рентгенография придаточных пазух носа и микробиологическое исследование отделяемого полости носа или пунктата из пазух. В общем анализе крови мы обращаем внимание на воспалительные изменения формулы, СОЭ, повышение лейкоцитов. Однако нередко и при острых синуситах, и при хронических рецидивирующих состояниях эти изменения в крови не наблюдаются.

Рентгенография придаточных пазух носа, особенно в лобно-подбородочной проекции, дает возможность оценить степень пневматизации пазух, сравнить больную и здоровую сторону в случае одностороннего поражения, увидеть уровень жидкости или дополнительные тени в области пазух, однако в детской практике мы имеем дело с недоразвитием пазух, снижением пневматизации за счет аденоидита, что подчас приводит к полипрогнозии. Кроме того этот метод не совсем безопасен для детей, особенно, если приходиться делать несколько снимков в год. Возможности неионизирующих методов обследования околоносовых пазух ограничены степенью проницаемости тканей лица для ультразвуковой волны. Компьютерная томография и магнитно–резонансная томография, конечно, более информативны, но в условиях городской поликлиники не проводятся [1, 5, 10].

Бактериологическое обследование позволяет проводить терапию синуситов с учетом этиологического фактора, эффективнее воздействовать на патогенную микрофлору, добиваться качественной санации ЛОР органов. Имеется множество работ, посвященных исследованию бактериального и вирусного фона при острых и хронических риносинуситах [2, 4, 6, 8]. К сожалению, данные микробиологического исследования можно получить только на 7 – 10 день, в лучшем случае на 3-4, поэтому они теряют свою актуальность, т.к. при острых синуситах назначается эмпирическая терапия.

Интересным диагностическим способом представляется метод вегето – резонансного тестирования (ВРТ) в сравнении со стандартным объемом исследований в городской детской поликлинике. Он имеет высокую скорость получения результатов тестирования, хорошую переносимость пациентами, высокую информативность, что в некоторых случаях позволяет избежать врачебной ошибки, как в диагностике, так и в лечении маленьких пациентов.

Обследование не инвазивно. Достаточно дотрагиваться щупом до тестируемых точек на пальцах пациента. Поэтому его можно проводить детям раннего и дошкольного возраста.

Полное обследование ЛОР-органов занимает от 10 до 20 минут рабочего времени. Проводится по карте, куда собраны частоты миндалин, носа и пазух, структур уха и гортани. Кроме того, метод фильтрации позволяет уточнить какой процесс в настоящий момент имеется у пациента – аллергический или воспалительный, острый или хронический, позволяет выяснить, что является основным этиологическим фактором – вирусы или микробы, грибы или простейшие и конкретизировать их [1, 10].

Цель исследования

Определение диагностической ценности метода вегето – резонансного тестирования в амбулаторной практике у детей с патологией ЛОР органов.

Материалы и методы исследования

Проведен анализ результатов исследования пациентов с ЛОР-патологией, в частности с острыми и хроническими синуситами, Для обследования методом ВРТ были отобраны 84 ребенка разных возрастных групп на основании добровольного согласия родителей по следующим критериям:

1. Частые (5 – 6 раз в год) или длительно текущие (месяц и более) респираторные заболевания в течение года;

2. Большое количество рентгенологических снимков в год у одного пациента. Например, мальчик 11 лет обследован педиатрами по поводу обострения хронического синусита в январе и мае 2015 г., в январе 2015 г. была сделана рентгенография легких по поводу длительного кашля, а в июне 2015 г. – рентгенография правой кисти в связи с травмой.

3. Дети, направленные к ЛОР-врачу от педиатра с кашлем без явных признаков синусита.

4. Дети в связи с часто рецидивирующими респираторными заболеваниями (в т.ч. бронхиты, пневмонии, синуситы, отиты), получившие в течение полгода от 2-х и более антибактериальных препаратов разных групп и имеющие жалобы.

Распределение по группам наблюдаемых представлена в табл. 1, один ребенок в зависимости от показаний к обследованию мог относиться к двум и более группам.

Распределение наблюдаемых детей по группам показаний для обследования методом ВРТ

Скрининговый метод выявления паразитозов у детей при массовых осмотрах.
Кадочникова Г.В., Мерзлова Н.В., Горбань Л.Я., Колесник Н.В.
(ГОУ ВПО "Пермская Государственная медицинская академия Минздрава России", г. Пермь, Россия)

Гельминты и обитатели кишечника - простейшие, продолжают оставаться наиболее распространенными паразитарными болезнями человека и занимают важное место в проблемах гастроэнтерологии, особенно у детей [5, 6, 7, 8]. В Пермском регионе среднемноголетний показатель заболеваемости паразитозами составляет 1380 на 100000 населения. По данным статистического исследования, за период с 1988 года по 2001 г. отмечается неуклонная тенденция роста этого показателя с 657,7 до 1209 на 100 тыс., населения. Основной контингент заболевших (77,1%) составляют дети до 14 лет. Одной из особенностей гельминтов является их способность паразитировать не только в организме определенного хозяина, но и избирательно локализоваться в том или ином органе, где они находят оптимальные условия для существования и размножения [5, 10]. В процессе своего жизненного цикла многие гельминты (аскарида, токсокара, эхинококк, цистицеркус, трихинелла и др.) проходят личиночную стадию развития в организме человека. Мигрирующие личинки повреждают на своем пути органы и ткани: висцеральные оболочки, мозг, глаза, легкие, нервную систему, паренхиматозные органы, их называют "личиночными мигрантами" [10, 11].

Считают, что 5-7% личиночных мигрантов попадают в головной мозг, личинки более 30 видов паразитов поражают легочную ткань [10], Локализация личинок в органах и тканях может быть как стадиоспецифической (необходимой для развития личинки), так и циклоспецифической. Постоянно поступающие в организм метаболитные и соматические антигены паразитов, вызывают аллергические реакции немедленного и замедленного типа. Кроме того, существует феномен "молекулярной (антигенной) мимикрии", когда хозяин "не распознает" антигены гельминта как "чужие" и поэтому не вырабатывает к ним антитела. Возникает супрессия иммунного ответа [3, 5]. В последнее время среди гельминтозов большое место занимают так называемые "микст-инвазии", диагностика которых особенно трудна. Известные способы диагностики глистных инвазий и протозоозов, такие как метод толстого мазка фекалий по Като, метод формалин-эфирного осаждения, перианальный соскоб, иммуноферментный анализ сыворотки крови на инвазии/инфекции, микроскопия пузырной и печеночной желчи имеют ряд определенных недостатков, связанных как с особенностями развития паразита, так и с состоянием макроорганизма и его реактивностью. Например, периодичность яйцекладки самками остриц определяет неинформативность перианального соскоба при 1-2-кратном методе обследования; периоды положительной фазы при лямблиозе, когда лямблии массивно выделяются в дуоденальное содержимое,, сменяются отрицательной фазой, длящейся от 2-3 суток до 2-3 недель, когда паразиты не будут найдены путем микроскопии дуоденального содержимого и желчи (порций А, В, и С) и в пробах фекалий; проходя сложный цикл развития от яйца до взрослого состояния, гельминты меняют свой антигенный состав [2].

Антитела в организме хозяина вырабатываются в основном в ответ на поступление экскретов и секретов гельминта, тогда как в иммунодиагностических реакциях используются соматические антитела. Возникающая неспецифическая сенсибилизация организма, общность некоторых антигенов трематод, простейших и человека создают высокий удельный вес ложноположительных серологических реакций в титрах ниже достоверно диагностических [2, 3]. Таким образом, ИФА на гельминты является высокочувствительным методом, но низкоспецифичным. В связи с отсутствием специфичных методов диагностики гельминтозов и протозоозов разработан новый скрининговый метод тестирования на наличие в организме паразитов - резонансно-частотная диагностика (РЧД). Любая форма жизни обладает своим уникальным специфическим частотным спектром электромагнитных колебаний, что успешно использовалось в разработке этого метода. В основе метода РЧД лежит электропунктурный вегетативный резонансный тест (ВРТ), разрешенный к медицинскому применению Минздравом России [1, 4, 9].

Цель данной работы - провести сравнительную оценку выявления гельминтозов у детей методом РЧД и традиционными лабораторными методами диагностики паразитарных болезней (эфир-формалиновый метод с использованием консерванта Турдыева, метод Грехеля, ИФА сыворотки крови на паразитозы). Изучить на примере аскаридоза фазы развития паразитов (фату миграции личинок, период паразитирования аскарид в кишечнике).

Материалы и методы

Метод РЧД гельминтов и простейших основан на явлении биологического резонанса, возникающего между внешним (подающимся с прибора) сигналом и изучаемым объектом (макроорганизмом). При взаимодействии волновых источников организма человека (система, орган, ткань), с одной стороны, и эталонной частотой, характеризующей частотный спектр паразита, с другой стороны, в точке измерения возникает явление волновой интерференции, проявляющейся на шкале прибора по нахождении стрелки в определенном диапазоне. Диагностические эталонные частоты, характеризующие различные паразитозы, заданы в аппарате в виде номеров программ. Экспериментальным путем определены частотные характеристики 46 видов гельминтов и 35 видов простейших. Характерно, что разные стадии развития паразитов имеют различные частотные характеристики, что позволяет распознавать заражение макроорганизма на разных этапах развития паразитов [1, 9].

Материально-техническое обеспечение метода

Аппарат электропунктурной диагностики и электро-, магнито-, цветотерапии по БАТ и БАЗ "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ" в 2-х видах исполнения:"МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ" и "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ-ПК", совместимый с ПЭВМ с программным обеспечением, регистрационный номер 95/311-121, разработанный ООО "ЦИМС ИМЕДИС", г. Москва [1].

Показания к применению РЧД: скрининговое обследование на глистные инвазии (инфекции) при массовых обследованиях населения, оценка паразитологической эффективности антигельминтных препаратов, заболевания гастродуоденохолецистопанкреатической зоны. Различными методиками традиционными методами паразитологических исследований и РЧД одновременно было обследовано 100 детей в возрасте от 3 до 6 лет.

Результаты и обсуждения

Получены следующие результаты: истинно положительные - 28 (совпадение результатов исследования РЧД и результатов лабораторных методов), ложно-положительные - 14 (результаты, положительные по РЧД, и не подтвержденные лабораторными методами), ложно-отрицательные - 2 (глистная инвазия подтверждена лабораторно, но не выявляется РЧД), истинно-отрицательные - 56 (отсутствие патологии при лабораторном обследовании и методом РЧД). Проведение сопоставления результатов различных паразитологических методов обследования выявила достаточно высокую информативность РЧД (84%). Однако, в связи с отсутствием единой, высокоспецифической методики выявления гельминтозов и протозоозов, особенно незрелых и личиночных форм, не исключается некоторая возможность гипердиагностики.

Метод РЧД нами применялся в 2001-2002 гг. в программе проведения Всероссийской диспансеризации детского населения с целью оценки зараженности гельминтозами и протозоозами. Всего было обследовано 2120 детей от 2-х до 16 лет, проживающих в Пермской области. Положительный результат получен у 395 человек, что составило 18,63%, Среди выявленных паразитозов в 33,1% (n = 131) случаев встречается энтеробиоз, у 25,2% (n = 99) детей - аскаридоз, у 2,2% (n = 9) - токсокароз. Значительно реже у детей встречается дефиллоботриоз - 1% (n = 4), эхинококкоз - 1% (n = 4), стронгилоидоз - 1% (n = 4) и тениоз - 0,5% (n = 2) случаев. Из протозоозов у 18% (n = 71) детей выявлены лямблии. Микст-инвазии диагностировались у 18% (n = 71) детей. Из них: аскаридоз и энтеробиоз составляли 7%, аскаридоз и лямблиоз - 5%, энтеробиоз и лямблиоз - 3%, токсокароз и лямблиоз - 2% и токсокароз и энтеробиоз - 1%.

При диагностике аскаридоза была проведена попытка выявления различных фаз развития паразита. Проведено тестирование по следующей схеме: РЧД через F118 и F119 указывала на заражение аскаридами (n = 99); использование специфических частот, характеризующих разные стадии развития выявили наличие личинок (т = 21), взрослые особи, самки + яйца (n = 33), взрослые особи, самцы (n = 22), взрослые особи (самки + cамцы + яйца) (n = 23). Локализация личинок определялась путем фильтрации ее частотной характеристики через частотную характеристику внутренних органов. В легких найдены личинки у 22% детей, в стенках кровеносных сосудов - у 74%, в стенке тонкого кишечника личинки тестировались у 26% обследуемых, в бронхиолах - у 58%. в лимфоузлах - у 18% детей. Также была определена локализация личинок в придаточных пазухах носа у 8%, среднем ухе - 8%, головном мозге - 3%, сердце - 16%, почках - 16%, печени - 8%, селезенке и поджелудочной железе - в 8% случаев. Использование метода РЧД при аскаридозе в зависимости от фазы развития паразита показал большую его информативность и способность уточнять особенности патогенеза этой инвазии у детей на разных этапах инвазии, а также позволяет выявить причины снижения клинического эффекта химиотерапии. Данный подход к диагностике гельминтозов позволяет дифференцированно проводить специфическую терапию антигельминтными средствами, а также выявить патогенетическое звено в случаях плохо поддающихся лечению бронхитов, трахеитов, синуситов, аллергических синдромов, патологии гепатобилиарной системы и заболеваний желудочно-кишечного тракта, сомато-вегетативных нарушений со стороны внутренних органов,

Таким образом, проведенные исследования и опыт применения метода РЧД подтверждают его высокую диагностическую эффективность, безопасность, специфичность, неинвазивность и экономическую эффективность при скрининговых обследованиях детского и взрослого населения.

Читайте также: