Резонансно-частотная диагностика вирусов бактерий простейших
Обновлено: 25.04.2024
Каторгин В.С., Готовский Ю.В., Царева Н.П., Мулюкин А.Л.
(Федеральный научный клинико-экспериментальный центр традиционных методов диагностики и лечения МЗ РФ, Центр "ИМЕДИС", Институт микробиологии РАН, г. Москва, Россия)
При анализе, объяснении и применении данных о воздействии сверхслабых электромагнитных полей (ЭМП) на разнообразные биологические системы необходимо учитывать адекватность выбираемых тест-объектов поставленным задачам и методологическим возможностям. Одной из удобных и полезных моделей являются клетки микроорганизмов не только в связи с относительной простотой их культивирования и поддержания в лабораторных условиях, но и в связи с их безусловной значимостью в медицинской практике [3]. Непосредственно для усовершенствования мониторинговых и санитарно-эпидемиологических исследований необходимо учитывать особенности физиологического состояния микробных клеток, тем более что утвердилось представление о пребывании подавляющей части бактериальной популяции в неактивном (покоящемся) состоянии не только в окружающей среде, но и в составе персистирующей микрофлоры человека. Поскольку принятые стандартные микробиологические методы посевов дают весьма неполную информацию о численности микроорганизмов в разнообразных объектах и практически не позволяют оценить их физиологическое состояние in situ, поиск новых диагностических критериев, позволяющих дифференцировать микробные клетки по их физиологическому состоянию, составляет весьма актуальную задачу. В качестве одного из таких дифференцирующих критериев нами предложено рассматривать резонансные частоты, характерные для модельных клеток разного физиологического состояния - активно делящихся и покоящихся [1].
Целью работы послужило выявление различий в частотах, излучаемых микробными клетками разного физиологического статуса, и проверке действия выявленных характеристических частот на развитие микробной популяции. В данной работе в качестве основной модели мы исследовали спорообразующую бактерию Bacillus cereus, для которой хорошо известны формы покоя - эндоспоры и цистоподобные рефрактерные клетки, а также различные колониально-морфологические варианты, образующиеся при высеве суспензий покоящихся клеток на агаризованные питательные среды.
Объекты и методы исследования
В работе использовали грам-положительные спорообразующие бактерии Bacillus cereus шт. 504 (ВКМ), которые культивировали на синтетической питательной среде с 0,4% (об/об) глюкозы, предусматривающей спорообразование. Исследуемые колониально-морфологические варианты - доминантный, прозрачный, микоидный и белый - были ранее выделены и описаны в лаборатории классификации и хранения уникальных микроорганизмов Института микробиологии РАН.
Бактерии выращивали в колбах емкостью 250 мл с 50 мл питательной среды при t = 28?С при встряхивании на качалке (140 об/мин); в качестве инокулята использовали споровую суспензию, который вносили в количестве, дающем оптическую плотность суспензии OD = 0,2. Культуру вегетативных (активно делящихся) клеток отбирали через 7 ч после начала культивирования; суспензию эндоспор бацилл - после 7 суток выращивания.
Оптическую плотность клеточных суспензий определяли на спектрофотометре Specord (Jena, Германия) при длине волны 650 нм в 10-мм кюветах. Микроскопические наблюдения осуществляли при помощи микроскопа Reichart (Австрия) с фазово-контрастным устройством. Жизнеспособность клеток определяли по числу колониеобразующих единиц, образующихся при высеве последовательных децимальных разведений из клеточных суспензий на картофельный агар. Чашки инкубировали в термостате при t = 28?С в течение 3 суток.
Спектры частот, свойственные вегетативным клеткам и эндоспорам Bacillus cereus разных вариантов: доминантного, прозрачного, микоидного и белого, измеряли c помощью вегетативного резонансного тестирования. Специфические резонансные частоты направленного действия генерировались приборами "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ", "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ПК" и аппаратно-программным комплексом "ИМЕДИС-ФОЛЛЬ" и записывались на магнитофонную ленту из стандартной видеокассеты Panasonic VHS Pal Secam E180HDG. Также на ленту записывали резонансные частоты Bacillus cereus из базы по бактериям электронного селектора АПК "ИМЕДИС-ФОЛЛЬ". При изучении действия резонансных частот проверяли 3 варианта формы сигнала: тонизация-стимуляция, торможение-дисперсия и биполярная форма сигнала (меандр) [6].
Для оценки действия ЭМП разного частотного спектра пробирки с 2 мл культуры вегетативных клеток доминантного варианта Bacillus cereus оборачивали магнитофонной лентой, а поверх ленты - плотной бумагой и продолжали культивировать в термостате. В двух контрольных вариантах исследовались пробирки с культурой бацилл, обернутые чистой магнитофонной лентой и плотной бумагой, а также пробирки с культурой без применения магнитной аппликации и продолжали культивировать в тех же условиях.
В первой серии экспериментов при анализе резонансных частот, излучаемых вегетативными клетками и эндоспорами каждого из четырех исследуемых вариантов, были выявлены существенные различия, которые, по-видимому, связаны с особенностями структурной организацией этих клеток и их физиологической активностью (активное размножение и метаболизм у первых и анабиоз - у вторых). С другой стороны, нами обнаружены отличия спектров резонансных частот между вегетативными клетками доминантного, прозрачного, микоидного и белого вариантов, а также соответствующих им эндоспор. Таким образом, предложенный в данной работе подход позволяет достоверно выявлять различия, с одной стороны, между активно растущими и покоящимися клетками, а с другой - между различными вариантами одного и того же вида микроорганизмов. Вполне вероятно, что детекция различий в спектрах резонансных частот, проведенная на разных вариантах бацилл, может использоваться при исследованиях различных серотипов и сероваров патогенных бактерий, например, стафилококков, сальмонелл, микобактерий и др. [1, 2, 5].
Во второй серии экспериментов установлено, что воздействие резонансных частот, характерных для эндоспор каждого из четырех исследованных колониально-морфологических вариантов, вызвало выраженный цитотоксический эффект в отношении активно делящихся (вегетативных) клеток бацилл. Так, через 1 час экспозиции магнитной ленты с перенесенными на нее частотами эндоспор в виде биполярных импульсов, в культурах наблюдался рост-ингибирующий эффект, о котором судили по снижению числа делящихся клеток и появлению признаков деструкции (лизиса и дефрагментации цитоплазмы) части популяции, по сравнению с контрольным вариантом. Через 24 часа воздействия ЭМП, доля клеток с явными признаками цитотоксического эффекта составила 30-40%; при этом отсутствовали проспоры, что свидетельствовало о торможении роста и развития популяции бацилл. В суспензиях, подвергнутых действию резонансных частот в течение 5-7 суток, не обнаруживалось спор, а число лизированных клеток составляло ~ 70-90%. О цитотоксическом эффекте и обусловленной им задержке роста и развития вегетативных клеток бацилл свидетельствовала низкая величина оптической плотности клеточных суспензий (OD = 0,3-0,4). В контрольном варианте OD = 2,5-2,7.
Окончательное доказательство наличия цитотоксического эффекта было получено при оценке жизнеспособности клеток по числу колониеобразующих единиц (КОЕ), образующихся при высеве разведенных клеточных суспензий на плотные питательные среды. Так, число КОЕ в суспензиях, подвергнутых действию резонансных частот, и в которых цитотоксический эффект (по данным микроскопических наблюдений) был наиболее выражен, составило 10?-104 единиц/мл, что на 3-4 порядка ниже, чем в контрольном варианте.
Следует отметить, что степень цитотоксического эффекта зависела от формы сигнала и дипазона применяемых частот. Уже в первой серии экспериментов 1999-2000 гг., по воздействию на бактериальные клетки переменного ЭМП нами было установлено, что наиболее выраженным был рост-ингибирующий и микробоцидный эффект при направленном воздействии на культуру клеток биполярного сигнала в форме меандра [1]. Этот эффект наблюдался как в опытах с непосредственным электромагнитным воздействием на культуры клеток через устройства для магнитной терапии "петля" или "индуктор", так и в данных опытах с экспозицией сверхслабого ЭМП, излучаемого магнитной лентой. Не менее эффективным оказалось цитотоксическое и бактерицидное действие записанных на пленку частот в форме меандра Bacillus cereus из базы по бактериям электронного селектора АПК "ИМЕДИС-ФОЛЛЬ" [5, 6]. Те же частоты с прямоугольной монополярной формой (как положительной, так и отрицательной полярности) оказали незначительное кратковременное тормозящее действие на подвижность и скорость деления клеток. При дальнейшей экспозиции ЭМП в термостате активность клеток полностью восстанавливалась. Надо отметить, что некоторое кратковременное замедляющее действие наблюдалось и при экспозиции чистой магнитофонной ленты, по сравнению с контролем без аппликации, но оно было намного слабее, чем в опытах с записью частот на пленку. Видимо, даже размагниченная магнитофонная лента создает вокруг себя крайне слабое постоянное магнитное поле, способное, тем не менее, влиять на подвижность таких малых объектов, как бактерии.
В ряде случаев нами отмечено, что сужение диапазона частот в спектре, характерном для эндоспор бацилл микоидного варианта, усиливало цитотоксический эффект, что, по-видимому, связано с селективностью действия дискретных частот на биомишень.
Таким образом, полученные в этой серии экспериментов данные предполагают перспективность исследований по воздействию слабых и сверхслабых ЭМП при разработке новых подходов к стерилизации и деконтаминации различных объектов. Выявление характеристик электромагнитного излучения, специфических для микроорганизмов разных таксономических и физиологических групп, представляет определенный практический интерес, так как может отражать различия в состоянии микробных клеток в ряду: активно делящиеся - стационарные - покоящиеся. В дальнейшем это может послужить базой для мониторинговых исследований и расширить наши возможности в резонансно-частотной диагностике и терапии бактериальных, вирусных, грибковых и других инфекционных заболеваний [4, 5]. Эти модельные эксперименты позволят во многом уточнить механизм действия методов резонансно-частотной терапии, которые, в настоящее время все шире начинают использоваться в разных областях медицины.
1. Готовский Ю.В., Каторгин В.С. и др. Предварительные данные о воздействии резонансных частот электромагнитного поля на бактериальные клетки // В сб.: Тезисы и доклады VI Международной конференции "Теоретические и клинические аспекты применения биорезонансной и мультирезонансной терапии", часть I. - М.: ИМЕДИС, 2000. - С. 21-23.
2. Готовский Ю.В., Косарева Л.Б. Резонансно-частотный механизм действия электромагнитных излучений на биологические объекты. // В кн.: Традиционная медицина - 2000. Сборник материалов конгресса (г. Элиста; 27-29 сент. 2000 г.). - М.: НПЦ ТМГ МЗ РФ, 2000. - С. 496-497.
3. Пирцхалава Т.Г. Моделирование феномена электропунктурного тестирования медикаментов в системах in vitro // В сб.: Тезисы и доклады VI Международной конференции "Теоретические и клинические аспекты применения биорезонансной и мультирезонансной терапии", часть I. - М.: ИМЕДИС, 2000. - С. 16-21.
4. Готовский Ю.В., Косарева Л.Б., Фролова Л.А., Перов Ю.Ф. Грибковые инфекции. Диагностика и терапия: Методическое пособие. 2-е изд. - М.: ИМЕДИС, 2001. - 128 с.
5. Готовский Ю.В., Косарева Л.Б., Фролова Л.А. Резонансно-частотная диагностика и терапия грибков, вирусов, бактерий, простейших и гельминтов: Методические рекомендации. 3-е изд. - М.: ИМЕДИС, 2000. - 70 с.
6. Готовский Ю.В., Косарева Л.Б., Блинков И.Л., Самохин А.В. Экзогенная биорезонансная терапия фиксированными частотами: Методические рекомендации. - М.: ИМЕДИС, 2000. - 96 с.
Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания
Паразитарные заболевания и в XXI веке остаются одним из самых частых видов патологии и представляют собой медико-социальную проблему. К настоящему времени из 1415 известных возбудителей заболеваний человека 353 возбудителя вызывают протозойные заболевания и гельминтозы. Экспертная оценка ВОЗ свидетельствует, что более 4,5 млрд человек в мире поражено возбудителями этой группы болезней [1]. Из них 2 млрд человек инфицированы Ascaris lumbricoides [2]. Ежегодно в мире аскаридозом заражаются около 650 млн человек, энтеробиозом — 460 млн [3]. По оценкам специалистов, ежегодно число заболевающих паразитарными болезнями в России превышает 20 млн человек и имеет тенденцию к увеличению [4]. По мнению ряда авторов, в последнее время под воздействием различных факторов происходит изменение картины паразитарных заболеваний, проявляющееся в неспецифичности проявлений глистно-протозойных инвазий у детей [5], в бессимптомном течении паразитарных заболеваний [6, 7, 8], в формировании у паразитов клеточных структур, способных изменять иммунный ответ хозяина на присутствие в организме паразита [9, 10, 11]. Особенностью большинства паразитарных болезней является хроническое течение, не сопровождающееся развитием острых симптомов.
Из числа протозойных инвазий наиболее массовой является лямблиоз. До сих пор проблемой является разработка эффективных лечебных мероприятий в отношении хронически рецидивирующего лямблиоза у детей. Устойчивость к противопаразитарным препаратам может быть обусловлена антигенными различиями видов лямблий с разной восприимчивостью к разным противопаразитарным препаратам [12, 13]. Наиболее массовыми гельминтозами в России являются нематодозы, возбудителями которых служат круглые гельминты: острицы, аскариды и др. [14]. Одной из актуальных задач в борьбе с паразитарными инвазиями на сегодняшний день является разработка эффективных, безопасных, недорогих методов лечения гельминтно-протозойной инвазии у детей. Лечение паразитарных инвазий эффективно при проведении комплексного подхода под контролем исследования кала, т. к. целью лечения является эрадикация паразита из кишечника [15, 16, 17]. Однако применение медикаментов широкого спектра действия не обеспечивает полного излечения при однократном курсе терапии и у ряда больных вызывает побочные эффекты аллергического, диспепсического и неврологического характера.
Учитывая сложности в диагностике паразитарных инвазий у детей, актуальной является проблема поиска новых, чувствительных, экономически эффективных и доступных методов диагностики. Полимеразная цепная реакция [ПЦР] [18, 19] нашла широкую область применения в паразитологии, ДНК-технологии имеют большое значение во многих областях паразитологии включая идентификацию и систематизацию паразитов, анализ генетической структуры, генной организации, изучение лекарственной устойчивости [20, 21, 22]). Метод ПЦР позволяет прямо обнаружить инфекционный агент или генетическую мутацию в любой биологической среде организма (слюна, мокрота, кровь, моча, кал).
Современные взгляды зарубежных и отечественных ученых на взаимоотношения паразит–хозяин с позиции колебательных и волновых процессов, присущих всем живым организмам, позволили разработать новый подход к диагностике различных заболеваний, в том числе и паразитарных. Одним из таких методов является вегетативный резонансный тест (ВРТ), позволяющий определить наличие паразитов в организме человека на разных стадиях развития: яйца, личинки, взрослых особей. Маркерами для диагностики являются резонансные электромагнитные частоты, характеризующие индивидуальный спектр электромагнитного излучения паразитов [23, 24]. Метод является гигиеническим, неинвазивным, безболезненным, что особенно важно для детей. ВРТ официально разрешен и рекомендован к медицинскому применению Министерством здравоохранения Российской Федерации (Методические рекомендации № 98/232, 99/96, 2000/74) [25].
Цель нашего исследования — совершенствование диагностики и лечения паразитозов у детей на современном этапе.
Материалы и методы исследования
В основу работы положены результаты обследования 540 детей в возрасте от 2 месяцев до 17 лет с различными гастродуоденальными заболеваниями: хроническим гастродуоденитом (53,5%), функциональным расстройством желудка (8,2%), дискинезиями желчевыводящих путей (30%). Среди сопутствующих заболеваний были диагностированы: аномалии желчного пузыря (4,8%), аллергические заболевания (10%), последствия перинатальной патологии ЦНС (7,7%), хронический иерсиниоз (1,8%), заболевания ЛОР-органов (1,8%).
Для постановки диагноза использовался тщательный сбор анамнеза, анализ жалоб, объективный осмотр, проведение необходимых лабораторных и инструментальных исследований (копроовоскопический метод диагностики, исследование кала с консервантом Барроуза, ПЦР-диагностика кала, вегетативно-резонансное тестирование).
Результаты исследования и их обсуждение
По возрасту дети были распределены на четыре группы: группа I — дети от 2 месяцев до 3 лет, группа II — от 3 до 7 лет, группа III — от 7 до 12 лет, группа IV — от 12 до 17 лет. Кроме того, в зависимости от наличия или отсутствия подтвержденной гельминтно-протозойной инвазии каждая группа была разделена на две подгруппы: А — без паразитарной инвазии, В — с подтвержденной паразитарной инвазией.
Среди обследованных детей преобладали жалобы на отрыжку, тошноту, рвоту, снижение аппетита, боли в животе в околопупочной области, неустойчивый стул (табл. 1).
Обследованные дети с подтвержденной паразитарной инвазией имели три вида моноинвазий (лямблиоз, аскаридоз, энтеробиоз) и четыре вида сочетанной глистно-протозойной инвазии (лямблиоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз, аскаридоз/энтеробиоз, лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз). Характеристика жалоб и объективного осмотра детей в зависимости от вида паразитарной инвазии представлена в табл. 3. Как видно из таблицы, лишь головная боль и болезненность в околопупочной области при объективном осмотре достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами инвазий. Кроме того, нарушение сна достоверно (р < 0,05) чаще отмечалось у детей с моноинвазией аскаридами, а боли в околопупочной области достоверно (р < 0,05) чаще встречались у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз, по сравнению с другими видами глистно-протозойной инвазии. Различия между группами паразитарных инвазий в преобладании тех или иных диспептических жалоб не достигали уровня значимости.
В нашем исследовании мы изучали диагностическую значимость различных методов диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей.
При диагностике лямблиоза при копроовоскопии 540 мазков цисты лямблий были обнаружены менее чем в 1% случаев. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей. Методом ПЦР кала лямблии были обнаружены у 28,83% обследованных детей. Методом ВРТ обследованы 136 детей, лямблии обнаружены у 31,62% детей (рис. 1).
Наиболее ценным диагностическим методом при исследовании на лямблиоз оказался метод исследования кала с консервантом Барроуза, данный метод был принят нами в качестве стандарта. Диагностические характеристики других методов диагностики определяли относительно стандарта с помощью четырехпольной таблицы. Для оценки эффективности диагностических тестов рассчитывали следующие показатели: чувствительность (Se), специфичность (Sp), точность (test eff.), прогностическая ценность отрицательного результата теста (–PV), прогностическая ценность положительного результата теста (+PV).
Как известно, от значений чувствительности и специфичности зависит прогностическая ценность (посттестовая вероятность) положительного и отрицательного результатов теста. Чем чувствительнее тест, тем выше прогностическая ценность его отрицательного результата (т. е. возрастает уверенность врача в том, что отрицательные результаты теста отвергают наличие заболевания). Чем специфичнее тест, тем выше прогностическая ценность его положительного результата (то есть врач может с большей уверенностью считать, что положительные результаты теста подтверждают предполагаемый диагноз).
Как видно из табл. 3, методы ПЦР и ВРТ обладают хорошими диагностическими показателями и высокими показателями точности теста (для ПЦР — 82,42%, для ВРТ — 69,92%). Копроскопический метод диагностики характеризовался чрезвычайно низкими диагностическими показателями (все показатели менее 1%), что ставит под сомнение целесообразность его использования для диагностики лямблиоза у детей.
При диагностике аскаридоза мы исследовали кал на яйца глист микроскопическим методом у 540 детей, аскариды обнаружены в 2,04% исследований. Методом ПЦР кала обследовано 434 ребенка, аскариды обнаружены у 1,15% детей, а методом ВРТ обследовано 135 детей, аскариды обнаружены у 7,14% детей (рис. 2).
В качестве стандарта в диагностике аскаридоза в нашем исследовании использовали ПЦР-диагностику кала.
Как известно, не существует абсолютно чувствительных и абсолютно специфичных тестов. Стопроцентные показатели получены, вероятно, из-за того, что в исследовании принимало участие относительно небольшое количество инфицированных аскаридами пациентов (табл. 4). Вероятно, с этим связаны и низкие показатели прогностической ценности положительного результата теста (12,5%). Тем не менее, полученные нами данные позволяют сделать вывод о высокой информативности ВРТ-диагностики аскаридоза у детей (чувствительность теста — 100%, специфичность — 93,96%). При оценке диагностических показателей копроскопического метода диагностики все показатели оказались менее 1%, что не позволяет рекомендовать копроскопический метод для диагностики аскаридоза у детей.
При диагностике энтеробиоза проводились однократные соскобы у 540 детей, острицы диагностированы у 0,2% детей. При исследовании кала на яйца глист у всех обследованных детей, острицы были обнаружены также у 0,2% детей. При проведении ПЦР-диагностики кала у 434 пациентов, острицы обнаружены у 9,68% детей, при вегетативно-резонансном тестировании (обследовано 135 детей) — у 12,59% (рис. 3).
В нашем исследовании стандартом в диагностике энтеробиоза являлась ПЦР-диагностика кала.
Как видно из табл. 5, копроскопический метод диагностики энтеробиоза и однократные соскобы на энтеробиоз не имеют диагностической значимости в диагностике энтеробиоза у детей. Вместе с тем метод ВРТ обладает высокой специфичностью (93,2%) и точностью теста (88,88%) в диагностике энтеробиоза.
При лечении лямблиоза процент успешной эрадикации паразита при использовании метронидазола (20 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) составил 58%, макмирора (15 мг/кг/сут в 2 приема 10 дней) — 53%, албендазола (200 мг/сут в 2 приема 7 дней) — 50%, фуразолидона (10 мг/кг/сут в 3 приема 10 дней) — 20%.
При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей были назначены биорезонансные препараты (Танаксол с Пара-уолнат-плас или инверсионный нозод лямблий — предварительно протестированные гомеопатические препараты) с положительным эффектом. Эрадикация простейших при использовании Танаксола с Пара-уолнат-плас оказалась успешной в 47,5% случаев. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза инверсионным нозодом лямблий эффективность терапии была еще выше и составила 71,95% (различия между эффективностью данных методов лечения были достоверными (p < 0,01%)).
При лечении аскаридоза — у 4 детей применялся Вермокс (мебендазол) (для детей от 2 до 10 лет 0,05 г/сут в 3 приема, детям старше 10 лет — 0,1 г в сутки в 3 приема во время еды. Курс лечения 3 дня), у 1 ребенка — Пирантел (12,5 мг/кг однократно), при лечении энтеробиоза 22 ребенка получали Вермокс, 20 детей — Пирантел. Данные препараты оказались эффективными у всех детей с нематодозами. Пациенты с сочетанной паразитарной инвазией получали терапию препаратом Немозол (альбендазол) в случае сочетанной гельминтно-протозойной инвазии (лямблиоз/аскаридоз, лямблиоз/энтеробиоз) в дозе 15 мг/кг/сут в 1 прием 10 дней; при сочетанной инвазии аскаридоз/энтеробиоз Немозол назначался в дозе 400 мг внутрь однократно.
Выводы
Для детей с паразитарной инвазией наиболее характерными клиническими проявлениями являются жалобы на тошноту и боли в околопупочной области. Головная боль и болезненность в околопупочной области достоверно более характерны для детей с сочетанной паразитарной инвазией лямблиоз/аскаридоз/энтеробиоз. Нарушение сна достоверно чаще отмечается у детей с моноинвазией аскаридозом, а боли в околопупочной области — у детей с сочетанной гельминтной инвазией аскаридоз/энтеробиоз.
Число эозинофилов в периферической крови у обследованных детей во всех возрастных группах было в пределах нормы и существенно не отличалось у детей с подтвержденной гельминтно-протозойной инвазией и у детей без паразитарной инвазии.
Метод копроовоскопии без использования консерванта для диагностики лямблиоза малоинформативен, что не позволяет использовать его в широкой практике. Наиболее информативными в диагностике лямблиоза оказались метод исследования кала с консервантом Барроуза и метод ВРТ. При исследовании кала на цисты лямблий с консервантом Барроуза лямблиоз диагностирован у 38,33% обследованных детей, методом ВРТ лямблии обнаружены у 31,62% детей.
ВРТ является неинвазивным, высокоинформативным, удобным и недорогим методом диагностики гельминтно-протозойной инвазии у детей. В диагностике энтеробиоза и аскаридоза метод ВРТ имел высокую диагностическую значимость наряду с методом ПЦР.
Стандартное медикаментозное лечение лямблиоза было эффективным лишь у 20–58% детей. При лечении хронически рецидивирующего лямблиоза у 143 детей максимальной эффективностью обладал инверсионный нозод лямблий (71,95%).
Литература
Savioli L., Gabrielli A. F., Ramsan M. et al. Soil-transmitted helminths and haemoglobin status among Afghan children in World Food Programme assisted schools // J. Helminthol. 2005. Vol. 79 (4). P. 381–384.
Chan M. S. The global burden of intestinal nematode infections — fifty years on // Parasitol. Today 1997. Vol. 13 (11). P. 438–443.
Онищенко Г. Г. О мерах по усилению профилактики паразитарных болезней в России // Медицинская паразитология. 2003. № 3. С. 3–7.
Озерецовская Н. Н., Зальнова Н. С., Тумольская Н. И. Клиника и лечение гельминтозов. М.: Медицина.1985. 183 с.
Horowicz M., Korman S., Shapiro M. et al. Asymptomatic Giardiasis in children // Pediatr. Inf. Dis. 1989. Vol. 87. P. 733–779.
Morrow A. L., Reves R. R., West M. S. et al. Protection against infection with Giardia lamblia by breast-feeding in a cohort of Mexican infants // J. Pediatr. 1992. Vol. 121. P. 363–370.
Pickering L. K., Engelkirk P. G. Giardia lamblia // Pediatr. Clin. Nort. Am. 1988. Vol. 35. P. 565–577.
Kulakova L., Singer S. M., Conrad J., Nach T. E. Epigenetic mechanisms are involved in the control of Giardia lamblia antigenic variation // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 61 (6). 1533–1542.
Nash T. E. Antigenic variation in Giardia lamblia and the host’s immune response // Philos. Trans. R. Soc. London Ser. B. 1997. Vol. 352. P. 1369–1375.
Sun C. H., McCaffery J. M., Reiner D. S., Gillin F. D. Mining the Giardia lamblia genome for new cyst wall proteins // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278 (24). P. 21701–21708.
Carnaby S., Ketelaris P. H., Neem A., Farthing M. J. G. Genotypic heterogeneity within Giardia lamblia isolates demonstrated by M13 DNA fingerprinting // Infect. Immun. 1994. Vol. 62. P. 1875–1880.
Majewska A. C., Kasprzak W., De Jonckheere J. F., Kaczmarek E. Heterogeneity in the sensitivity of stocks and clones of Giardia to metronidazole and ornidazole // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1991. Vol. 85. P. 67–69.
Тимченко В. Н., Леванович В. В., Абдукаева Н. С., Васильев В. В., Михайлов И. Б. Паразитарные инвазии в практике детского врача. СПб. ЭЛБИ 2005. С. 60–68.
Озерецовская Н. Н. Современные проблемы терапии гельминтозов // Мед. паразитология. 1975. 33. С. 271–276.
Lohiya G. S., Tan-Figueroa L. et al. Epidemiology and control of enterobiasis in a developmental center // West. J. Med. 2000. Vol. 172 (5). P. 305–308.
Saiki R. K., Scharf S., Faloona F., Mullis K. B. et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia // Science. 1985. Vol. 230 (4732). P. 1350–1354.
Mullis K., Faloona F., Scharf S. et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction // Cold. Spring. Harb. Symp. Quant. Biol. 1986. Vol. 51. P. 263–273.
Zhu X., Chilton N. B., Jacobs D. E. et al. Characterisation of Ascaris from human and pig hosts by nuclear ribosomal DNA sequences // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (3). P. 469–478.
Gasser R. B., Rossi L., Zhu X. Identification of Nematodirus species (Nematoda: Molineidae) from wild ruminants in Italy using ribosomal DNA markers // Int. J. Parasitol. 1999. Vol. 29 (11). P. 1809–1817.
Zhang L., Gasser R. B., Zhu X., McManus D. P. Screening for different genotypes of Echinococcus granulosus within China and Argentina by single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1999. Vol. 93 (3). P. 329–334.
Электропунктурный вегетативный резонансный тест. Под ред. А. М. Василенко, Ю. В. Готовскиго, Е. Е. Мейзерова, Н. А. Королевой, В. С. Каторгина. Метод. реком. № 99/96. М.: МЗ РФ, ИПЦ ТМГФ, 2000. 27 с.
В. А. Александрова, доктор медицинских наук, профессор
В. Е. Одинцева
СПб МАПО, Санкт-Петербург
4. ИНДУКЦИОННАЯ ТЕРАПИЯ ЧАСТОТАМИ ТОКОВ МОЗГА
Организм человека является открытой кибернетической системой регулирования, которая постоянно подвергается обмену информацией с внешней средой. Это означает, что регулирование смещенных частотных спектров позволяет лечить не только психические, но и физические расстройства. Таким образом, индукция (наведение) - это лишь стимул к выравниванию заданных, но нарушенных функциональных ритмов.
Вытекающий отсюда обучающий эффект, связанный с таламусом, предоставляет собой определенный признак индукционной терапии, так как он делает излишним применение внешних раздражений, инородных по отношению к системе. В классическом смысле функциональной медицины организму предлагается помощь в стимулировании саморегуляции. Далее он становится способным лечить себя своими собственными средствами. Индукционная терапия реализуется с помощью электрических или магнитных воздействий, подводимых с помощью электродов или индукторов.
• программа №1. Альфа-ритмы;
• программа №2. Бета-ритмы;
• программа №3. Тета-ритмы;
• программа №4. Дельта-ритмы;
• программа №5. Программа покоя;
• программа №6. Программа сна I;
• программа №7. Детская программа;
• программа №8. Программа стресса I;
• программа №9. Программа стресса II;
• программа №10. Программа стресса III;
• программа №11. Программа стресса IV;
• программа №“12. Программа депрессии I;
• программа №13. Программа депрессии II;
• программа №“14. Программа депрессии III;
• программа №“15. Церебральная программа;
• программа №“16. Программа обучения;
• программа №“17. Программа запоминания;
• программа №“18. Программа сна II;
• программа №“20. Программа мышечной релаксации;
• программа №“21. Программа прояснения разума;
• программа №“22. Программа волн Шумана;
• программа №“23. Программа управления состоянием сознания;
• программа №“24. Программа развития творческих способностей;
• программа №“25. Программа ситуационного моделирования;
• программа №“26. Программа развития созерцательности;
• программа №27. Программа развития деловых способностей;
• программа №28. Программа преодоления своего страха;
• программа №30. Программы развития самоуважения;
• программа №31. Энергизирующая программа;
• программа №32. Спортивная программа;
• программа №33 Событийное регулирование 1;
• программа №34 Событийное регулирование 2;
• программа №35 Увеличение ресурсов адаптации 1;
• программа №36 Увеличение ресурсов адаптации 2;
• программа №37 Увеличение ресурсов нейрогуморальной регуляции;
• программа №38 Сексуальная регуляция 1;
• программа №39 Сексуальная регуляция 2;
• программа №40 Увеличение ресурсов иммунной адаптации 1;
• программа №41 Увеличение ресурсов иммунной адаптации 2;
• программа №42 Увеличение ресурсов адаптации селезенки и ретикулоэндотелиальной формации;
• программа №43 Увеличение ресурсов адаптации произвольного движения 1;
• программа №44 Увеличение ресурсов адаптации произвольного движения 2;
• программа №45 Увеличение ресурсов адаптивной деятельности;
• программа №46 Увеличение ресурсов адаптации чакр, при сублимации жизненной энергии;
• программа №47 Увеличение ресурсов адаптации чакр, при ресублимации жизненной энергии;
• программа №48 Увеличение ресурсов адаптации опорнодвигательного аппарата;
• программа №49 Увеличение ресурсов адаптации крови;
• программа №50 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 1;
• программа №51 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 2;
• программа №52 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани 3;
• программа №53 Увеличение ресурсов адаптации мышечной системы;
• программа №54 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани и тимуса 1;
• программа №55 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани и тимуса 2;
• программа №56 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 1;
• программа №57 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 2;
• программа №58 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 3;
• программа №59 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани при аутоиммунных заболеваниях 4;
• программа №60 Увеличение ресурсов адаптации тимуса, гипофиза и нервной ткани 24;
• программа №61 Увеличение ресурсов адаптации нервной ткани;
• программа №62 Регуляция сексуальной энергии 1;
• программа N“63 Регуляция сексуальной энергии 2;
• программа №64 Регуляция сексуальной энергии 3;
• программа №65 Регуляция сексуальной энергии 4;
• программа №66 Регуляция сексуальной энергии 5;
• программа №67 Регуляция сексуальной энергии 6;
• программа №68 Регулирование сна;
• программа №69 Хроносемантическая функциональ Солнца 1;
• программа №70 Хроносемантическая функциональ Солнца 2;
• программа №71 Хроносемантическая функциональ Луны;
• программа №72 Хроносемантическая функциональ Меркурия 1;
• программа №73 Хроносемантическая функциональ Меркурия 2;
• программа №74 Хроносемантическая функциональ Венеры 1;
• программа №75 Хроносемантическая функциональ Венеры 2;
• программа №76 Хроносемантическая функциональ Венеры 3;
• программа №77 Хроносемантическая функциональ Марса 1;
• программа №78 Хроносемантическая функциональ Марса 2;
• программа №79 Хроносемантическая функциональ Юпитера 1;
• программа №80 Хроносемантическая функциональ Юпитера 2;
• программа №81 Хроносемантическая функциональ Сатурна;
• программа №82 Хроносемантическая функциональ Урана;
• программа №83 Хроносемантическая функциональ Нептуна 1;
• программа №84 Хроносемантическая функциональ Нептуна 2;
• программа N“85 Хроносемантическая функциональ Плутона 1;
• программа Ns86 Хроносемантическая функциональ Плутона 2;
• программа №87 Хроносемантическая функциональ Плутона 3.
5. ЭЛЕКТРОННО-ИОННАЯ РЕФЛЕКСОТЕРАПИЯ
Электронно-ионная рефлексотерапия (ЭИРТ) - разновидность электропунктурной терапии, разработанной одним из ведущих отечественных рефлексотерапевтов Ф.Г.Портновым [11].
В отличие от зарубежных методов ЭАТ, при данном способе используется дозированный, постоянный гальванический ток, а также введение лекарственных средств в БАТ с помощью микроэлектрофореза.
Ток срабатывания системы светодиодной индикации поиска БАТ в аппаратах ЭЛАП составляет 10-25 мкА, а ток лечения 0- 500 мкА при напряжении 9 В. Сила тока лечебного воздействия подбирается в зависимости от места локализации БАТ. Так, для
БАТ, расположенных под массивным мышечным слоем, например, в ягодичной области, рекомендуется использовать величины тока порядка 350-500 мкА; для БАТ, локализованных в области спины, пояснично-крестцовой области и нижних конечностей - 250-350 мкА, в области груди и живота - 75-100 мкА, в области ушной раковины и лица - 25-50 мкА.
Для тормозного воздействия (седирования) на БАТ рекомендуется использовать электрический ток положительной полярности (30-120 сек на каждую БАТ), а для стимулирующего - ток отри-
Лекарственные препараты для электрофореза, Таблица 19 вводимые с отрицательного полюса - катода
Ион или частица лекарственного вещества | Концентрация раствора, % |
Адреналин | 0,10 |
Акрихин | 1,00 |
Амидопирин | от 1,00 до 3,00 |
Аминазин | от 0,50 до 1,00 |
Антипирин | от 1,00 до 5,00 |
Атропин | 0,10 |
Ацетилхолин | 0,10-0,50 ex temporae |
Барбамил | от 2,00 до 5,00 |
Бензогексоний | от 1,00 до 2,00 |
Витамин В1 | от 1,00 до 5,00 |
Галантамин | от 0.25 до 0,50 |
Ганглерон | от 0,20 до 0,50 |
Гексоний | 1,00 |
Гистамин | 0,01 |
Дибазол | от 0,50 до 2,00 |
Дикаин | от 0,50 до 1,00 |
Димедрол | от 0,50 до 2,00 |
Дионин | от 0,10 до 1,00 |
Дипразин | 1,00 |
Кальция хлорид (Кальций) | от 1,00 до 5,00 |
Калия хлорид, бромид (Калий) | от 1,00 до 5,00 |
Карбохолин | 1,00 |
Кодеин | от 0,10 до 0,50 |
Лития хлорид (Литий) | от 1,00 до 5,00 |
Лидокаин | от 0,25 до 0,50 |
Лобелии | 1,00 |
Магния сульфат (Магний) | от 2,00 до 10,00 |
Меди сульфат (Медь) | от 0,50 до 2,00 |
Мезатон | 1,00 |
Натрия хлорид (Натрий) | от 1,00 до 5,00 |
Новокаин | от 0,50 до 5,00 |
Но-шпа | 1,00 |
Таблица 19 (продолжение)
Ион или частица лекарственного вещества | Концентрация раствора, % |
Папаверин | от 0,50 до 1,00 |
Пахикарпин | 1,00 |
Пентамин | 5,00 |
Пилокарпин | от 0,10 до 0,50 |
Пирилен | от 0,10 до 0,50 |
Платифиллин | от 0,03 до 0,05 |
Прозерпин | 0,10 |
Резерпин | 0,10 |
Серебра нитрат (Серебро) | от 0,50 до 1,00 |
Совкаин | от 0,50 до 1,00 |
Стрихнин | 0,10 |
Строфантин | 0,05 |
Тримекаин | от 0,25 до 0,50 |
Фенамин | 0,20 |
Фенобарбитал | от 1,00 до 2,00 |
Физостигмин | 0,10 |
Хинин | от 1,00 до 4,00 |
Цинка сульфат (Цинк) | от 0,50 до 2,00 |
Эфедрин | от 0,10 до 1,00 |
цательной полярности или гальванический ток с изменяющейся полярностью в течение каждых 5-10 с.
С целью усиления лечебного эффекта в ЭИРТ используется введение лекарственных средств в БАТ с помощью микроэлектрофореза. Для его осуществления на активный электрод аппарата одевается специальная насадка, внутрь которой помещается гигроскопическая вата, смоченная соответствующим лекарственным средством.
Согласно исследованиям Ф.Г.Портнова, при электрофорезе происходит депонирование лекарственных средств в области БАТ с последующим тормозным или возбуждающим воздействием на периферические рефлекторные элементы и взаимосвязанные с ними органы и тканевые системы.
По мнению автора, данный способ введения лекарственных веществ не имеет побочных эффектов и способствует их более длительному действию, составляющему: для гепарина 1-2 суток; пенициллина - 2; пилокарпина - 3; новокаина - 3-6; адреналина - до 20 суток.
Более чем 20-летний опыт клинического применения ЭИРТ показал его высокую эффективность в лечении болевых синдромов при остеохондрозе позвоночника, бронхиальной астме, аллергической риносинусопатии, ринофарингитах, заболеваниях паро- донта, нейроциркуляторной дистонии, патологии зрительного аппарата и др.
Аурикулотерапия, осуществляемая с помощью воздействия на биологически активные точки ушной раковины электрическими и световыми сигналами с определенной частотой следования, а также постоянным магнитным полем, способна оказывать выраженный лечебный эффект при различных формах патологии.
Основоположником аурикулотерапии является П. Ножье, обнаруживший на ушной раковине 7 рефлексогенных зон, на которых проявляется одинаковая реакция к стимулу определенной частоты.
В качестве воздействующего сигнала автором использовался источник электрического тока и некогерентного светового излучения (красный светодиод), который модулировался с частотой от 1 до 200 Гц.
По степени изменения пульсовой волны на лучевой артерии при той или иной частоте электро- или фотостимуляции на определенные аурикулярные БАТ были установлены следующие резонансные частоты для различных отделов ушной раковины: зона А (подкозелковая зона) - 2,28 Гц;
зона Б (полость ушной раковины) - 4,56 Гц;
зона В (верхняя часть ушной раковины) - 9,125 Гц;
зона Г (задняя часть завитка) - 18,25 Гц;
зона Д (внешняя часть козелка) - 36,5 Гц;
зона Е (задняя часть мочки уха) - 7,3 Гц;
зона Ж (передняя часть мочки уха) - 146 Гц.
Следует отметить, что аналогичные рефлекторные зоны с различными резонансными реакциями на электро- и фотостимуляцию также были обнаружены на коже головы,
Например, кожа лба - 146 Гц; волосистая часть головы и затылка - 18,25 Гц; верхние и нижние конечности - 9,125 Гц; полость рта, мочеиспускательный канал, влагалище, анус, проекция переднего срединного меридиана - 2,28 Гц.
С целью определения диагностической ценности метода вегето – резонансного тестирования в амбулаторной практике у детей с патологией ЛОР органов проведен анализ результатов исследования 84 детей с ЛОР- патологией, в частности с острыми и хроническими синуситами, методом вегето – резонансного тестирования (ВРТ) в сравнении со стандартным объемом исследований в городской детской поликлинике. Результаты ВРТ показали, что острые синуситы в 10 случаях были вирусной этиологии: респираторно–синтициальный вирус – 4 случая, вирус герпеса – 3 случаях, аденовирус – 2, вируса ринопневмонии – 1 случай. Бактериальные причины острого синусита встречались чаще: Str. pyogenes в 6 случаях, Str. pneumonia и S. aureus – по 2 случая, S. coagulopositivus – в 1 случае, анаэробные возбудители – в 3 случаях. При хронической патологии на слизистой носа и в пазухах у детей часто тестируется полифлора, в сочетании с грибами. Микробная инфекция представлена: Str. haemolyticus 13 (28,9 %), Str. viridans 12 (26,7 %), S. aureus 8 (17,8 %), анаэробная инфекция 6 (13,3 %), Str. pneumonia 5 (11,1 %), Ps. aeurigenosa 1 (2,2 %). Возбудителями хронических грибковых синуситов были Сandida albicans 5 (50 %), Aspergilus niger 4 (40 %), Mucor mucedo 1 (10 %). Обследование показало высокую скорость получения результатов тестирования, хорошую переносимость метода пациентами, высокую информативность метода, что в некоторых случаях позволило избежать врачебной ошибки, как в диагностике, так и в лечении маленьких пациентов.
1. Готовский Ю.В. Резонансно – частотная диагностика и терапия грибков, вирусов, бактерий, простейших и гельминтов: Методические рекомендации (Дополнение) / Ю.В. Готовский, Л.Б. Косарева, Л.А. Фролова. – М.: ИМЕДИС, 2000. – 22 с.
2. Драчук А.И. Роль микробной флоры при ультразвуковой терапии воспалительных заболеваний уха / А.И. Драчук, К.И. Нестерова // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. – 1999. – № 1. – С. 39–40.
3. Надей Е.В. Использование ингаляционных провокационных тестов для определения риска развития бронхиальной астмы у больных с аллергическим ринитом / Е.В. Надей, В.И. Совалкин, К.И. Нестерова //Рос. ринология. – 2007. – № 2. – С. 20a-21.
4. Нестерова К.И. Анализ влияния метода лечения аденоидита на микробиоценоз носоглотки у детей / К.И. Нестерова, А.А. Нестерова // Вестник оториноларингологии. – 2015. – № 4. – С. 77–80.
5. Нестерова К.И. Анализ клинико-анатомических предпосылок формирования хронической инфекции верхних дыхательных путей на основе принципов современной многомерной статистики К.И. Нестерова // Российская оториноларингологии. – 2012. – № 5. – С. 95–101.
7. Нестерова К.И. Метод низкочастотной ультразвуковой интерферонопрофилактики ОРВИ у спортсменов / К.И. Нестерова, Т.А. Бакшеева, В.С. Венедиктов //Теория и практика физической культуры. – 2000. – № 1. – С. 47–48.
9. Роль изучения факторов местного иммунитета при патологии дыхательных путей/ В.И. Совалкин, Е.И. Алтынова, К.И. Нестерова и др. // Фунд. исследования. – 2011. – № 10-1. – С. 151–154.
10. Самохин А.В., Готовский Ю.В. Электропунктурная диагностика и терапия по методу Р. Фолля. 6-е изд. – М.: ИМЕДИС, 2012. – 480 с.
В детском возрасте в структуре заболеваний верхних дыхательных путей острые и хронические синуситы встречаются достаточно часто, от 18 – 30 % до 38 – 42 % по мнению разных авторов [4, 5, 8]. При этом предрасполагающими факторами формирования риносинуситов могут являться как эндогенные, так и экзогенные причины [1, 3, 5, 7, 9].
Основными методами диагностики синуситов в условиях городской поликлиники остаются рентгенография придаточных пазух носа и микробиологическое исследование отделяемого полости носа или пунктата из пазух. В общем анализе крови мы обращаем внимание на воспалительные изменения формулы, СОЭ, повышение лейкоцитов. Однако нередко и при острых синуситах, и при хронических рецидивирующих состояниях эти изменения в крови не наблюдаются.
Рентгенография придаточных пазух носа, особенно в лобно-подбородочной проекции, дает возможность оценить степень пневматизации пазух, сравнить больную и здоровую сторону в случае одностороннего поражения, увидеть уровень жидкости или дополнительные тени в области пазух, однако в детской практике мы имеем дело с недоразвитием пазух, снижением пневматизации за счет аденоидита, что подчас приводит к полипрогнозии. Кроме того этот метод не совсем безопасен для детей, особенно, если приходиться делать несколько снимков в год. Возможности неионизирующих методов обследования околоносовых пазух ограничены степенью проницаемости тканей лица для ультразвуковой волны. Компьютерная томография и магнитно–резонансная томография, конечно, более информативны, но в условиях городской поликлиники не проводятся [1, 5, 10].
Бактериологическое обследование позволяет проводить терапию синуситов с учетом этиологического фактора, эффективнее воздействовать на патогенную микрофлору, добиваться качественной санации ЛОР органов. Имеется множество работ, посвященных исследованию бактериального и вирусного фона при острых и хронических риносинуситах [2, 4, 6, 8]. К сожалению, данные микробиологического исследования можно получить только на 7 – 10 день, в лучшем случае на 3-4, поэтому они теряют свою актуальность, т.к. при острых синуситах назначается эмпирическая терапия.
Интересным диагностическим способом представляется метод вегето – резонансного тестирования (ВРТ) в сравнении со стандартным объемом исследований в городской детской поликлинике. Он имеет высокую скорость получения результатов тестирования, хорошую переносимость пациентами, высокую информативность, что в некоторых случаях позволяет избежать врачебной ошибки, как в диагностике, так и в лечении маленьких пациентов.
Обследование не инвазивно. Достаточно дотрагиваться щупом до тестируемых точек на пальцах пациента. Поэтому его можно проводить детям раннего и дошкольного возраста.
Полное обследование ЛОР-органов занимает от 10 до 20 минут рабочего времени. Проводится по карте, куда собраны частоты миндалин, носа и пазух, структур уха и гортани. Кроме того, метод фильтрации позволяет уточнить какой процесс в настоящий момент имеется у пациента – аллергический или воспалительный, острый или хронический, позволяет выяснить, что является основным этиологическим фактором – вирусы или микробы, грибы или простейшие и конкретизировать их [1, 10].
Цель исследования
Определение диагностической ценности метода вегето – резонансного тестирования в амбулаторной практике у детей с патологией ЛОР органов.
Материалы и методы исследования
Проведен анализ результатов исследования пациентов с ЛОР-патологией, в частности с острыми и хроническими синуситами, Для обследования методом ВРТ были отобраны 84 ребенка разных возрастных групп на основании добровольного согласия родителей по следующим критериям:
1. Частые (5 – 6 раз в год) или длительно текущие (месяц и более) респираторные заболевания в течение года;
2. Большое количество рентгенологических снимков в год у одного пациента. Например, мальчик 11 лет обследован педиатрами по поводу обострения хронического синусита в январе и мае 2015 г., в январе 2015 г. была сделана рентгенография легких по поводу длительного кашля, а в июне 2015 г. – рентгенография правой кисти в связи с травмой.
3. Дети, направленные к ЛОР-врачу от педиатра с кашлем без явных признаков синусита.
4. Дети в связи с часто рецидивирующими респираторными заболеваниями (в т.ч. бронхиты, пневмонии, синуситы, отиты), получившие в течение полгода от 2-х и более антибактериальных препаратов разных групп и имеющие жалобы.
Распределение по группам наблюдаемых представлена в табл. 1, один ребенок в зависимости от показаний к обследованию мог относиться к двум и более группам.
Распределение наблюдаемых детей по группам показаний для обследования методом ВРТ
Скрининговый метод выявления паразитозов у детей при массовых осмотрах.
Кадочникова Г.В., Мерзлова Н.В., Горбань Л.Я., Колесник Н.В.
(ГОУ ВПО "Пермская Государственная медицинская академия Минздрава России", г. Пермь, Россия)
Гельминты и обитатели кишечника - простейшие, продолжают оставаться наиболее распространенными паразитарными болезнями человека и занимают важное место в проблемах гастроэнтерологии, особенно у детей [5, 6, 7, 8]. В Пермском регионе среднемноголетний показатель заболеваемости паразитозами составляет 1380 на 100000 населения. По данным статистического исследования, за период с 1988 года по 2001 г. отмечается неуклонная тенденция роста этого показателя с 657,7 до 1209 на 100 тыс., населения. Основной контингент заболевших (77,1%) составляют дети до 14 лет. Одной из особенностей гельминтов является их способность паразитировать не только в организме определенного хозяина, но и избирательно локализоваться в том или ином органе, где они находят оптимальные условия для существования и размножения [5, 10]. В процессе своего жизненного цикла многие гельминты (аскарида, токсокара, эхинококк, цистицеркус, трихинелла и др.) проходят личиночную стадию развития в организме человека. Мигрирующие личинки повреждают на своем пути органы и ткани: висцеральные оболочки, мозг, глаза, легкие, нервную систему, паренхиматозные органы, их называют "личиночными мигрантами" [10, 11].
Считают, что 5-7% личиночных мигрантов попадают в головной мозг, личинки более 30 видов паразитов поражают легочную ткань [10], Локализация личинок в органах и тканях может быть как стадиоспецифической (необходимой для развития личинки), так и циклоспецифической. Постоянно поступающие в организм метаболитные и соматические антигены паразитов, вызывают аллергические реакции немедленного и замедленного типа. Кроме того, существует феномен "молекулярной (антигенной) мимикрии", когда хозяин "не распознает" антигены гельминта как "чужие" и поэтому не вырабатывает к ним антитела. Возникает супрессия иммунного ответа [3, 5]. В последнее время среди гельминтозов большое место занимают так называемые "микст-инвазии", диагностика которых особенно трудна. Известные способы диагностики глистных инвазий и протозоозов, такие как метод толстого мазка фекалий по Като, метод формалин-эфирного осаждения, перианальный соскоб, иммуноферментный анализ сыворотки крови на инвазии/инфекции, микроскопия пузырной и печеночной желчи имеют ряд определенных недостатков, связанных как с особенностями развития паразита, так и с состоянием макроорганизма и его реактивностью. Например, периодичность яйцекладки самками остриц определяет неинформативность перианального соскоба при 1-2-кратном методе обследования; периоды положительной фазы при лямблиозе, когда лямблии массивно выделяются в дуоденальное содержимое,, сменяются отрицательной фазой, длящейся от 2-3 суток до 2-3 недель, когда паразиты не будут найдены путем микроскопии дуоденального содержимого и желчи (порций А, В, и С) и в пробах фекалий; проходя сложный цикл развития от яйца до взрослого состояния, гельминты меняют свой антигенный состав [2].
Антитела в организме хозяина вырабатываются в основном в ответ на поступление экскретов и секретов гельминта, тогда как в иммунодиагностических реакциях используются соматические антитела. Возникающая неспецифическая сенсибилизация организма, общность некоторых антигенов трематод, простейших и человека создают высокий удельный вес ложноположительных серологических реакций в титрах ниже достоверно диагностических [2, 3]. Таким образом, ИФА на гельминты является высокочувствительным методом, но низкоспецифичным. В связи с отсутствием специфичных методов диагностики гельминтозов и протозоозов разработан новый скрининговый метод тестирования на наличие в организме паразитов - резонансно-частотная диагностика (РЧД). Любая форма жизни обладает своим уникальным специфическим частотным спектром электромагнитных колебаний, что успешно использовалось в разработке этого метода. В основе метода РЧД лежит электропунктурный вегетативный резонансный тест (ВРТ), разрешенный к медицинскому применению Минздравом России [1, 4, 9].
Цель данной работы - провести сравнительную оценку выявления гельминтозов у детей методом РЧД и традиционными лабораторными методами диагностики паразитарных болезней (эфир-формалиновый метод с использованием консерванта Турдыева, метод Грехеля, ИФА сыворотки крови на паразитозы). Изучить на примере аскаридоза фазы развития паразитов (фату миграции личинок, период паразитирования аскарид в кишечнике).
Материалы и методы
Метод РЧД гельминтов и простейших основан на явлении биологического резонанса, возникающего между внешним (подающимся с прибора) сигналом и изучаемым объектом (макроорганизмом). При взаимодействии волновых источников организма человека (система, орган, ткань), с одной стороны, и эталонной частотой, характеризующей частотный спектр паразита, с другой стороны, в точке измерения возникает явление волновой интерференции, проявляющейся на шкале прибора по нахождении стрелки в определенном диапазоне. Диагностические эталонные частоты, характеризующие различные паразитозы, заданы в аппарате в виде номеров программ. Экспериментальным путем определены частотные характеристики 46 видов гельминтов и 35 видов простейших. Характерно, что разные стадии развития паразитов имеют различные частотные характеристики, что позволяет распознавать заражение макроорганизма на разных этапах развития паразитов [1, 9].
Материально-техническое обеспечение метода
Аппарат электропунктурной диагностики и электро-, магнито-, цветотерапии по БАТ и БАЗ "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ" в 2-х видах исполнения:"МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ" и "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ-ПК", совместимый с ПЭВМ с программным обеспечением, регистрационный номер 95/311-121, разработанный ООО "ЦИМС ИМЕДИС", г. Москва [1].
Показания к применению РЧД: скрининговое обследование на глистные инвазии (инфекции) при массовых обследованиях населения, оценка паразитологической эффективности антигельминтных препаратов, заболевания гастродуоденохолецистопанкреатической зоны. Различными методиками традиционными методами паразитологических исследований и РЧД одновременно было обследовано 100 детей в возрасте от 3 до 6 лет.
Результаты и обсуждения
Получены следующие результаты: истинно положительные - 28 (совпадение результатов исследования РЧД и результатов лабораторных методов), ложно-положительные - 14 (результаты, положительные по РЧД, и не подтвержденные лабораторными методами), ложно-отрицательные - 2 (глистная инвазия подтверждена лабораторно, но не выявляется РЧД), истинно-отрицательные - 56 (отсутствие патологии при лабораторном обследовании и методом РЧД). Проведение сопоставления результатов различных паразитологических методов обследования выявила достаточно высокую информативность РЧД (84%). Однако, в связи с отсутствием единой, высокоспецифической методики выявления гельминтозов и протозоозов, особенно незрелых и личиночных форм, не исключается некоторая возможность гипердиагностики.
Метод РЧД нами применялся в 2001-2002 гг. в программе проведения Всероссийской диспансеризации детского населения с целью оценки зараженности гельминтозами и протозоозами. Всего было обследовано 2120 детей от 2-х до 16 лет, проживающих в Пермской области. Положительный результат получен у 395 человек, что составило 18,63%, Среди выявленных паразитозов в 33,1% (n = 131) случаев встречается энтеробиоз, у 25,2% (n = 99) детей - аскаридоз, у 2,2% (n = 9) - токсокароз. Значительно реже у детей встречается дефиллоботриоз - 1% (n = 4), эхинококкоз - 1% (n = 4), стронгилоидоз - 1% (n = 4) и тениоз - 0,5% (n = 2) случаев. Из протозоозов у 18% (n = 71) детей выявлены лямблии. Микст-инвазии диагностировались у 18% (n = 71) детей. Из них: аскаридоз и энтеробиоз составляли 7%, аскаридоз и лямблиоз - 5%, энтеробиоз и лямблиоз - 3%, токсокароз и лямблиоз - 2% и токсокароз и энтеробиоз - 1%.
При диагностике аскаридоза была проведена попытка выявления различных фаз развития паразита. Проведено тестирование по следующей схеме: РЧД через F118 и F119 указывала на заражение аскаридами (n = 99); использование специфических частот, характеризующих разные стадии развития выявили наличие личинок (т = 21), взрослые особи, самки + яйца (n = 33), взрослые особи, самцы (n = 22), взрослые особи (самки + cамцы + яйца) (n = 23). Локализация личинок определялась путем фильтрации ее частотной характеристики через частотную характеристику внутренних органов. В легких найдены личинки у 22% детей, в стенках кровеносных сосудов - у 74%, в стенке тонкого кишечника личинки тестировались у 26% обследуемых, в бронхиолах - у 58%. в лимфоузлах - у 18% детей. Также была определена локализация личинок в придаточных пазухах носа у 8%, среднем ухе - 8%, головном мозге - 3%, сердце - 16%, почках - 16%, печени - 8%, селезенке и поджелудочной железе - в 8% случаев. Использование метода РЧД при аскаридозе в зависимости от фазы развития паразита показал большую его информативность и способность уточнять особенности патогенеза этой инвазии у детей на разных этапах инвазии, а также позволяет выявить причины снижения клинического эффекта химиотерапии. Данный подход к диагностике гельминтозов позволяет дифференцированно проводить специфическую терапию антигельминтными средствами, а также выявить патогенетическое звено в случаях плохо поддающихся лечению бронхитов, трахеитов, синуситов, аллергических синдромов, патологии гепатобилиарной системы и заболеваний желудочно-кишечного тракта, сомато-вегетативных нарушений со стороны внутренних органов,
Таким образом, проведенные исследования и опыт применения метода РЧД подтверждают его высокую диагностическую эффективность, безопасность, специфичность, неинвазивность и экономическую эффективность при скрининговых обследованиях детского и взрослого населения.
Читайте также: